張成玲, 趙永強, 楊冬靜, 孫厚俊, 徐 振, 謝逸萍
(江蘇徐淮地區(qū)徐州農(nóng)業(yè)科學研究所,江蘇 徐州221131)
蕪菁花葉病毒(Turnip mosaic virus,TuMV)屬于馬鈴薯Y 病毒屬(Potyvirus)成員,其寄主范圍廣,可侵染43 科156 屬的300 多種植物[1-3],是蔬菜上僅次于黃瓜花葉病毒(Cucumber mosaic virus,CMV)的第2 大病毒[4-5],對蘿卜、白菜、花椰菜等十字花科蔬菜危害嚴重,造成巨大經(jīng)濟損失。
從1941 年凌立和楊演首先報道四川油菜花葉病是由TuMV 引起以來,許多學者開展了一系列檢測、鑒定、分子變異等研究[6-8]。近10 年來,有關(guān)TuMV 病毒的分子變異與進化等研究有了突飛猛進的發(fā)展,尤其是對TuMV 分離物的寄主致病性和序列重組的研究[8-10]。Ohshima 等[11]用生物學與分子生物學相結(jié)合的方法將來自不同地域的76個TuMV 分離物劃分為2 個致病型:B 型(只侵染Brassica)和BR 型(既侵染Brassica,又侵染Raphanus)。根據(jù)cp等基因進行系統(tǒng)發(fā)育分析,將76 個分 離 物 分 成 了Basal-B、Basal-BR、Asian-BR 和World-B 組,Basal-BR 組中沒有中國分離物。Tian等[12]將中國的TuMV 分離物分為3 個組:Asian-BR、World-B 和Basal-BR 組,其中Basal-BR 組分離物出現(xiàn)在2004 年,是中國有關(guān)TuMV Basal-BR 組的首次報道。除了對類群劃分外,對基因組的重組研究發(fā)現(xiàn),TuMV 重組普遍存在,多集中在P1 和NIa-VPg 之間[9,13]。本研究將利用分子生物學手段對3 個不同寄主植物上的TuMV 分離物進行類群劃分,確定它們的歸屬地位,為抗病育種工作提供分子生物學依據(jù)。
3 個TuMV 分離物XZLB、XZYC、XZBOC 分別采自江蘇徐州表現(xiàn)花葉癥狀的蘿卜、上海青油菜和菠菜上,經(jīng)莧色藜3 次單斑分離獲得,并保存于普通煙草(Nicotiana tabacumL.)上。
大腸桿菌為DH5α、DNA 分子量標準DL2000、RNA 提取試劑盒均購自北京百泰克生物技術(shù)有限公司,pMD18-T 載體、反轉(zhuǎn)錄酶(MLV)購自寶生物工程(大連)有限公司。PCR 所用Taq酶購自美國Invitrogen 公司。其他生化試劑及普通化學試劑均為進口或國產(chǎn)生化級或分析純級試劑。
根據(jù)GenBank 中報道的TuMV 的cp基因序列,參考宋云枝[1]等文獻合成特異引物:上游引物TuMV-CPF:5'-CAGGTGAAACGCTTGACGCA-3';下游引物TuMV-CPR:5'-TCATAACCCCTGAACGCCAAG-3',由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。利用RNA 提取試劑盒提取植物樣品總RNA。以總RNA 為模板,MLV酶進行反轉(zhuǎn)錄,RT-PCR 擴增cp基因的cDNA。PCR 反應(yīng)條件為:94 ℃預(yù)變性3 min;94 ℃變性1 min,58 ℃退火45 s,70 ℃延伸1 min,30 個循環(huán);70 ℃延伸10 min。
PCR 擴增產(chǎn)物經(jīng)1%的瓊脂糖電泳分離目的片段,并連接到pMD18-T 載體中,提取質(zhì)粒并進行PCR 鑒定[14],鑒定為陽性的克隆送交生工生物工程(上海)股份有限公司進行核苷酸序列測定,每個分離物選取3 個重組子進行序列測定,比較后,確定其核苷酸序列。
利用Clustal X1.81 軟件,將3 個分離物的cp基因序列與GenBank 中的36 個分離物cp基因序列進行序列比對,利用RDP 4 軟件包軟件進行重組分析,DnaSP5進行基因交流等分析[15-16]。利 用MEGA5.0 等軟件以鄰接法構(gòu)建系統(tǒng)樹。本研究所用分離物包含在 Asian-BR、Basal-B、Basal-BR、World-B 4 個組內(nèi)。
經(jīng)RT-PCR 擴增后電泳的結(jié)果顯示,在分子量為850 bp 左右處呈現(xiàn)電泳條帶,沒有其他非特異性DNA 條帶,其大小與已報道的TuMVcp基因分子量相似,說明此條帶即為TuMV 江蘇分離物cp基因的擴增產(chǎn)物。經(jīng)連接、轉(zhuǎn)化、提取質(zhì)粒鑒定后,送陽性克隆測序,3 個分離物cp大小均為867 bp。經(jīng)DNAMAN 比對,3 個不同寄主植物上的TuMV 分離物之間cp基因的核苷酸序列的一致率較高,XZYC 與XZLB 和XZBOC 的一致率均為99.9%,XZLB 與XZBOC 一致率為99.8%,氨基酸一致率均為100.0%。3 個分離物分別與GenBank中36 個分離物的序列進行比對,結(jié)果表明,3 個分離物與GU167976 等分離物一致率最高,為99.0%。
將本研究的3 個分離物與GenBank 中36 個分離物進行重組分析,結(jié)果表明,只有KGD851J、CHZJ26 兩個分離物LARD 軟件支持其重組,其余軟件都不支持,因此,所分析的所有分離物在cp基因上無明顯重組。通常利用Ks*、Z和Snn值的P值判定基因之間的遺傳分化顯著性。假設(shè)i和l代表2 個地區(qū),j和k分別為這2 個地區(qū)的序列,那么dij,lk代表i地區(qū)的第j條序列和l地區(qū)的第k條序列之間的差異(限制性位點或核苷酸位點)數(shù)量。Ks*是衡量i地區(qū)內(nèi)的序列差異數(shù)量的平均值Ki,i=1,2;Z是“rank statistics”,是Zi的加權(quán)和,Zi是i地區(qū)內(nèi)的序列對dij,lk和的平均值;Snn,為近鄰統(tǒng)計,是在相同的地理學空間上近鄰序列出現(xiàn)的頻率。表1 顯示江蘇分離物和山東分離物之間遺傳分化顯著,而兩個組內(nèi)的遺傳分化不顯著。Nm是研究群體是否發(fā)生遺傳漂變的主要參數(shù),當Nm<1 時,群體之間很容易發(fā)生遺傳漂變,因此遺傳漂變是促使江蘇和山東分離物之間發(fā)生遺傳分化的主要原因。FST是測定分離物之間的基因流,若FST絕對值均小于0.330 00,說明兩地區(qū)之間基因交流頻繁;反之,則不頻繁。基因流結(jié)果表明,山東分離物之間、江蘇分離物之間、山東和江蘇分離物之間的FST絕對值均小于0.330 00,說明兩地區(qū)之間基因交流頻繁(表1)。
圖1 顯示,蕪菁花葉病毒的分離物分為4 個組,分別為Basal-BR、World-B、Asian-BR、Basal-B;Basal-BR 組又分為了2 個亞組,日本的2 個分離物聚為一簇為日本亞組,中國的Basal-BR 分離物聚為一簇,為中國亞組;本研究所得的3 個分離物與Taigu、HZLB2 兩個分離物單獨聚為一簇。
表1 TuMV 江蘇和山東分離物遺傳分化和基因流Table 1 Genetic differentiation and gene flow of isolates from Jiangsu and Shandong province
本研究通過RT-PCR 獲得了不同寄主植物上的3 個TuMV 分離物,通過分子生物學方法分析了中國和日本的部分TuMVcp基因序列。結(jié)果表明,3 個分離物一致率較高,在99.8% 以上。構(gòu)建系統(tǒng)進化樹結(jié)果表明,日本Basal-BR 組的2個分離物單獨成一個亞組(日本亞組),而中國Basal-BR 組分離物為中國亞組,本研究的3 個分離物均位于Basal-BR 組,且聚為一簇,無明顯寄主特異性。自Tian 等[12]發(fā)現(xiàn)中國存在Basal-BR組分離物以來,中國Basal-BR 組分離物數(shù)量迅速增多。
遺傳重組是馬鈴薯Y 病毒屬病毒變異的一個重要因素,TuMV 含有多個重組熱點,多數(shù)重組發(fā)生在P1基因和CI/6K2/VPg基因區(qū)域[13],只有極少數(shù)重組發(fā)生在CP 和3'-UTR 區(qū)域[7,10,12]。本研究所分析的cp基因無明顯重組,TuMV 不同分離物cp基因之間存在著地域差異,江蘇和山東分離物之間基因交流頻繁,可能與地區(qū)之間引種頻繁有關(guān);但兩地區(qū)之間遺傳分化顯著,可能是中國地域廣闊,環(huán)境差異明顯,病毒需適應(yīng)新的環(huán)境造成。江蘇分離物寄主為白菜、蘿卜和菠菜等,但這些寄主分離物間遺傳差異不顯著。
研究病毒的遺傳變異,有助于我們了解寄主植物、環(huán)境和對病毒變異的影響,通過這些遺傳變異信息便于我們設(shè)計病毒防治策略[16-18]。隨著對TuMV 分子遺傳結(jié)構(gòu)和種群變異研究的深入,我們能更好地了解不同國家、地區(qū)及不同寄主間TuMV種群特點,標記不同的TuMV 抗性基因[19-21],或針對某一類群(如中國TuMV Basal-BR 分離物發(fā)生普遍、擴展迅速)培育抗性持久的抗TuMV Basal-BR 種群的蔬菜品種或利用交叉保護來有效控制TuMV 的發(fā)生。
圖1 基于蕪菁花葉病毒部分分離物的cp 基因構(gòu)建的系統(tǒng)進化樹Fig.1 Phylogenetic trees constructed using the neighbour-joining based on cp gene nucleotide sequences of turnip mosaic virus isolates
[1] 宋云枝,李玲玲,朱常香,等.蕪菁花葉病毒山東分離物外殼蛋白基因的克隆及序列分析[J].中國農(nóng)業(yè)科學,2005,38(3):504-510.
[2] SHATUCK V I,BROLLEY B,STOBBS L W,et al.The effect of turnip mosaic virus infection on the mineral content and storability of field-grown rutabaga[J].Communications in Soil Science and Plant Analysis,1989,20:581-595.
[3] 潘熙萍,林 芳,鄭思文,等.蕪菁花葉病毒的分離鑒定及其多克隆抗體的制備與應(yīng)用[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學,2013,41(1):26-28.
[4] TOMLINSON J A.Epidemiology and control of virus diseases of vegetables[J].Annals of Applied Biology,1987,110:661-681.
[5] WALSH J A,JENNER C E.Turnip mosaic virus and the quest for durable resistance[J].Molecular Plant Pathology,2002,3:289-300.
[6] 曾 鋼,葉艷英,閆曉紅,等.簡化一步多重RT-PCR 法快速檢測蕪菁花葉病毒[J].華北農(nóng)學報,2012,27(3):102-107.
[7] 潘熙萍,林 芳,鄭思文,等.蕪菁花葉病毒的分離鑒定及其多克隆抗體的制備與應(yīng)用[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學,2013,41(1):26-28.
[8] CHEN J,CHEN J P,ADAMS M J.Variation between turnip mosaic virus isolates in Zhejiang province,China and evidence for recombination[J].J Phytopathology,2002,150:142-145.
[9] TOMIMURA K,GIBBS A J,JENNER C E,et al.The phylogeny of turnip mosaic virus:comparisons of 38 genomic sequences reveal a Eurasian origin and a recent‘emergence’in East Asia[J].Molecular Ecology,2003,12:2099-2111.
[10] TAN Z,ADRIAN J G,TOMITAKA Y,et al.Mutations in turnip mosaic virus genomes that have adapted toRaphanus sativus[J].Journal of General Virology,2005,86:501-510.
[11] OHSHIMA K,YAMAGUCHI Y,HIROTAR,et al.Molecular evolution of turnip mosaic virus:evidence of host adaptation,genetic recombination and geographical spread[J].Journal of General Virology,2002,83:1511-1521.
[12] TIAN Y P,ZHU X P,LIU J L,et al.Molecular characterization of the 3’-terminal region of turnip mosaic virus isolates from Eastern China[J].J Phytopathology,2007,155:333-341.
[13] TAN Z Y,WADA Y,CHEN J,et al.Inter-and intra-lineage recombinants are common in natural populations of turnip mosaic virus[J].Journal of General Virology,2004,85:2683-2696.
[14] 薩姆布魯克J,拉塞爾著D W.分子克隆實驗指南[M].3 版.黃培堂,譯.北京:科學出版社,2002:492-509.
[15] ROOSSINCK M J.Mechanisms of plant virus evolution[J].Annual Review of Phytopathology,1997,35:191-209.
[16] ROOSSINCK M J.Plant virus evolution[M].Berlin:Springer-Verlag,2008:53-76.
[17] TOMITAKA Y,OHSHIMA K.A phylogeographical study of the turnip mosaic virus population in East Asia reveals an‘emergent’lineage in Japan[J].Molecular Ecology,2006,15(14):4437-4457.
[18] ZHANG C L,GAO R,WANG J,et al.Molecular variability of tobacco vein banding mosaic virus population[J].Virus Research,2011,158:188-198.
[19] WALSH J A.Genetic control of immunity to turnip mosaic virus in winter oilseed rape (Brassica napusssp.oleifera)and the effect of foreign isolates of the virus[J].Annals of Applied Biology,1989,115(1):89-99.
[20] WALSH J A,SHARPE A G,JENNER C E,et al.Characterisation of resistance to turnip mosaic virus in oilseed rape(Brassica napus)and genetic mapping of TuRBO[J].Theoretical and Applied Genetic,1999,99:1149-1154.
[21] WALSH J A,RUSHOLME R L,HUGHES S L,et al.Different classes of resistance to turnip mosaic virus inBrassica rapa[J].European Journal of Plant Pathology,2000,108(1):15-20.