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        豬血多肽對(duì)建鯉抗氧化能力和免疫功能的影響

        2014-12-21 05:33:06王加豪劉英娟杜金梁曹麗萍殷國(guó)俊
        關(guān)鍵詞:豬血多肽抗氧化

        王加豪 賈 睿, 劉英娟 杜金梁 曹麗萍 殷國(guó)俊,*

        (1.南京農(nóng)業(yè)大學(xué)無(wú)錫漁業(yè)學(xué)院,無(wú)錫 214081;2.中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)研究院淡水漁業(yè)研究中心,農(nóng)業(yè)部淡水漁業(yè)和種質(zhì)資源利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室/魚(yú)類(lèi)免疫藥理學(xué)國(guó)際聯(lián)合實(shí)驗(yàn)室,無(wú)錫 214081)

        生物活性肽是一類(lèi)在生物體內(nèi)對(duì)生物活動(dòng)具有調(diào)節(jié)作用的肽類(lèi)化合物[1],具有易吸收、促進(jìn)免疫、抗菌、抗病毒等優(yōu)點(diǎn),其種類(lèi)繁多,主要有乳肽、玉米肽、畜產(chǎn)肽等,是當(dāng)前國(guó)際研究最熱門(mén)以及最有發(fā)展前景的功能因子。目前,國(guó)內(nèi)外研究人員已從不同來(lái)源的蛋白質(zhì)中提取到各種具有抗氧化活性的肽類(lèi)物質(zhì)[2],Hattori等[3]、Suetsuna等[4]、Suetsuna 等[5]分別從不溶性的彈性蛋白、酪蛋白和沙丁魚(yú)中分離得到了抗氧化肽。豬血在我國(guó)是很好的蛋白質(zhì)源,具有很高的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值[6],但由于其自身具有分子質(zhì)量大、難消化等缺點(diǎn),嚴(yán)重影響了豬血在我國(guó)養(yǎng)殖業(yè)的應(yīng)用[7]。而豬血多肽(peptides from swine blood,PSB)的出現(xiàn),則彌補(bǔ)了豬血的這些缺點(diǎn),豬血多肽是利用微生物發(fā)酵豬血而分離獲得的一類(lèi)具有多種生物活性的短肽,它具有易吸收、利用率高等優(yōu)點(diǎn),是當(dāng)前研究的熱點(diǎn)。方俊等[8]研究發(fā)現(xiàn),豬血多肽對(duì)于機(jī)體中的自由基具有明顯的清除作用,顯示其具有較強(qiáng)的抗氧化能力。關(guān)于豬血多肽在水產(chǎn)養(yǎng)殖業(yè)中的應(yīng)用未見(jiàn)相關(guān)報(bào)道。

        本研究以建鯉(Cyprinus carpio var.Jian)為試驗(yàn)對(duì)象,用豬血多肽和飼料混合喂養(yǎng)健康無(wú)傷的建鯉,在不同階段取血樣、頭腎,通過(guò)檢測(cè)血清中各種抗氧化酶活性的變化以及蛋白質(zhì)濃度的變化,并結(jié)合體外試驗(yàn)測(cè)定的指標(biāo)變化來(lái)評(píng)價(jià)豬血多肽對(duì)建鯉抗氧化能力和免疫功能的影響,為豬血蛋白質(zhì)源生物活性肽在魚(yú)類(lèi)飼料中的應(yīng)用研究提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 試驗(yàn)動(dòng)物

        試驗(yàn)用建鯉取自中國(guó)水產(chǎn)科學(xué)院淡水漁業(yè)研究中心漁場(chǎng),所選建鯉健康無(wú)傷、平均體重在100 g左右,飼養(yǎng)于循環(huán)水系統(tǒng)中,水溫27℃,每天投喂配制的飼料2次。

        1.2 藥品和試劑

        豬血多肽購(gòu)自北京漁經(jīng)生物技術(shù)有限公司,為分子質(zhì)量<1 ku的小肽混合物。

        細(xì)菌脂多糖(LPS)、L-15培養(yǎng)基、杜氏磷酸鹽緩沖液(D-PBS)、二甲基亞砜(DMSO)、氯化硝基四氮唑藍(lán)(NBT)、佛波豆寇乙酸酯(PMA)、Hank’s平 衡 鹽 溶 液 (HBSS)、鏈 霉 素/青 霉 素(streptomycin/penicillin,S/P)、肝素(heparin)購(gòu)于美國(guó)Sigma公司;胎牛血清(FCS)和細(xì)胞培養(yǎng)板購(gòu)于GIBCO生物技術(shù)有限公司;超氧化物歧化酶(SOD)、堿性磷酸酶(AKP)、谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH-Px)、過(guò)氧化氫酶(CAT)活性及總蛋白(TP)、白蛋白(ALB)含量等測(cè)定試劑盒購(gòu)自于南京建成生物工程研究所;白介素-1β(IL-1β)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)、補(bǔ)體 3(C3)、補(bǔ)體 4(C4)含量測(cè)定試劑盒購(gòu)自于上海朝瑞生物科技有限公司,WST-1試劑盒購(gòu)自于碧云天生物技術(shù)研究。

        1.3 體外試驗(yàn)

        1.3.1 建鯉頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞的分離

        采用 Bayne[9]和曹麗萍等[10]的方法分離建鯉頭腎巨噬細(xì)胞和外周血白細(xì)胞。將分離的細(xì)胞濃度調(diào)整為 107個(gè)/mL。接種到 96孔板上,每孔100μL,27℃培養(yǎng)2 h后,洗去未貼壁細(xì)胞,加入100μL L-15培養(yǎng)基(含1%S/P和5%FCS),27℃培養(yǎng)備用。

        將培養(yǎng)備用的白細(xì)胞和巨噬細(xì)胞在96孔細(xì)胞培養(yǎng)板中培養(yǎng)24 h后,吸棄培養(yǎng)基,再加入含有不同濃度 (10、20、40、80 μg/mL)豬血多肽的L-15培養(yǎng)基100μL,同時(shí)設(shè)空白對(duì)照(加入等量L-15培養(yǎng)基)和陽(yáng)性對(duì)照(加入等量含500μg/mL LPS的L-15培養(yǎng)基),作用24 h后,分別檢測(cè)白細(xì)胞增殖能力和巨噬細(xì)胞呼吸爆發(fā)活性。

        1.3.2 外周血白細(xì)胞增殖能力的測(cè)定

        白細(xì)胞增殖能力通過(guò)WST-1(是一種高度水溶性的四唑鹽)試劑盒檢測(cè)。將細(xì)胞以每孔1×104個(gè)/mL的量接種于96孔板中,培養(yǎng)24 h后,分別用含不同濃度豬血多肽(10、20、40、80 μg/mL)的L-15培養(yǎng)基進(jìn)行處理,每孔加入100μL,然后每孔加入10μL WST-1孵育2 h,每孔混合均勻后選擇450 nm波長(zhǎng),在酶聯(lián)免疫檢測(cè)儀上測(cè)定各孔的吸光度值,記錄結(jié)果。共測(cè)定8尾魚(yú),每尾魚(yú)為1個(gè)重復(fù)。

        1.3.3 頭腎巨噬細(xì)胞呼吸爆發(fā)活性的測(cè)定

        氧呼吸爆發(fā)和氮呼吸爆發(fā)活性均根據(jù)Yin等[11]的方法進(jìn)行檢測(cè),其結(jié)果用吸光度值表示,共測(cè)定8尾魚(yú),每尾魚(yú)為1個(gè)重復(fù)。

        1.4 體內(nèi)試驗(yàn)

        1.4.1 試驗(yàn)設(shè)計(jì)

        將初始體重為(100±2)g的建鯉隨機(jī)分為5組,即1個(gè)對(duì)照組和4個(gè)試驗(yàn)組,每組20尾。對(duì)照組飼喂基礎(chǔ)飼料(表1),基礎(chǔ)飼料中不添加豬血多肽;4個(gè)試驗(yàn)組分別飼喂在基礎(chǔ)飼料中添加0.5(PSB0.5 組)、1.0(PSB1 組)、2.0(PSB2 組)和5.0 g/kg(PSB5組)豬血多肽的試驗(yàn)飼料。飼養(yǎng)8周,期間分4次采集血液,采集時(shí)間分別在試驗(yàn)第1、2、4、8 周。

        1.4.2 血清制備

        每組選8尾建鯉,從尾靜脈采血,血樣在4℃冰箱中靜置4 h后,4℃下4 000 r/min離心10 min制備血清,每尾魚(yú)均單獨(dú)制備血清,-20℃凍存?zhèn)溆谩?/p>

        1.4.3 血清生化指標(biāo)及抗氧化指標(biāo)測(cè)定

        按照試劑盒操作說(shuō)明,分別測(cè)定血清中SOD、CAT、AKP、GSH-Px活性以及TP和ALB含量。

        表1 基礎(chǔ)飼糧組成及營(yíng)養(yǎng)水平(風(fēng)干基礎(chǔ))Table 1 Composition and nutrient levels of the basal diet(air-dry basis)%

        1.4.4 血清免疫指標(biāo)測(cè)定

        參照試劑盒操作說(shuō)明,分別測(cè)定血清中IL-1β、TNF-α、C3、C4 含量。

        1.5 數(shù)據(jù)分析

        試驗(yàn)數(shù)據(jù)采用平均值±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SD)表示,數(shù)據(jù)分析采用SPSS 16.0軟件包中的單因素方差分析(one-way ANOVA)和Duncan氏法多重化比較處理,對(duì)樣本(空白對(duì)照組與試驗(yàn)組之間)進(jìn)行t檢驗(yàn)。P<0.05為差異顯著。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 豬血多肽對(duì)體外培養(yǎng)建鯉細(xì)胞性能的影響

        由表2可知,LPS能顯著提高建鯉外周血白細(xì)胞的增殖能力,同時(shí)也可以增強(qiáng)頭腎巨噬細(xì)胞的氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性,說(shuō)明經(jīng)檢測(cè)的離體培養(yǎng)的細(xì)胞狀態(tài)是正常的。當(dāng)用不同濃度的豬血多肽處理白細(xì)胞后,白細(xì)胞的增值能力隨著濃度的提高出現(xiàn)了不同的變化。與空白對(duì)照組相比,各濃度豬血多肽組的細(xì)胞增殖能力均有所提高,濃度為20和 40μg/mL的組提高顯著(P<0.05),濃度為 80μg/mL的組提高極顯著(P<0.01)。與空白對(duì)照組相比,添加40和80μg/mL豬血多肽顯著增強(qiáng)了建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氮呼吸爆發(fā)活性(P<0.05)。與空白對(duì)照組相比,添加40μg/mL豬血多肽顯著增強(qiáng)了建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活性(P<0.05),添加 80μg/mL豬血多肽極顯著增強(qiáng)了建鯉巨噬細(xì)胞氧呼吸爆發(fā)活性(P<0.01)。

        2.2 豬血多肽對(duì)建鯉血清生化指標(biāo)及抗氧化指標(biāo)的影響

        豬血多肽對(duì)建鯉血清生化指標(biāo)的影響結(jié)果見(jiàn)表3。與對(duì)照組對(duì)比,在第1周,PSB2和PSB5組血清中 TP含量顯著增加(P<0.05);在第2周,PSB5組血清中TP含量顯著增加(P<0.05);在第4和8周,PSB1、PSB2和 PSB5組血清中 TP含量均顯著增加(P<0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1、2和4周,各試驗(yàn)組血清中ALB含量沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第8周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中ALB含量均顯著增加(P<0.05)。此外,在第 4周,PSB2和 PSB5組血清中 ALB含量顯著高于 PSB0.5組(P<0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1周,PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05);在第 2周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05);在第4周,各試驗(yàn)組血清中AKP活性均顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中AKP活性顯著升高(P<0.05)。

        表2 豬血多肽對(duì)體外培養(yǎng)建鯉細(xì)胞性能的影響(以O(shè)D值計(jì))Table 2 Effects of PSB on properties of Jian carp cells cultured in vitro(as expressed by OD value)

        表3 豬血多肽對(duì)建鯉血清生化指標(biāo)的影響Table 3 Effects of PSB on serum biochemical indices of Jian carp

        2.3 豬血多肽對(duì)建鯉血清抗氧化指標(biāo)的影響

        豬血多肽對(duì)建鯉血清抗氧化指標(biāo)的影響結(jié)果見(jiàn)表4。

        與對(duì)照組相比,在第1和2周,PSB2和PSB5組血清中 CAT活性顯著升高(P<0.05);在第4周,PSB5組血清中CAT活性顯著升高(P<0.05);在第8周,PSB1、PSB2和PSB5組血清中CAT活性顯著升高(P<0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1周,PSB2和PSB5組血清中SOD活性顯著升高(P<0.05);在第2、4和8周,僅 PSB5組血清中SOD活性顯著升高(P<0.05),其他試驗(yàn)組沒(méi)有顯著變化(P>0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1和2周,各試驗(yàn)組血清中GSH-Px活性沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第4和8周,僅PSB5組血清中GSH-Px活性顯著升高(P<0.05),其他試驗(yàn)組沒(méi)有顯著變化(P>0.05)。

        表4 豬血多肽對(duì)建鯉血清抗氧化指標(biāo)的影響Table 4 Effects of PSB on serum antioxidant indices of Jian carp U/mL

        2.4 豬血多肽對(duì)建鯉血清免疫指標(biāo)的影響

        豬血多肽對(duì)建鯉血清免疫指標(biāo)的影響結(jié)果見(jiàn)表5。

        與對(duì)照組相比,在第1周,各試驗(yàn)組血清中IL-1β含量沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第 2周,PSB2和PSB5組血清中IL-1β含量顯著升高(P<0.05);在第4周,PSB5組血清中 IL-1β含量顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中 IL-1β 含量顯著升高(P<0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1周,PSB0.5組血清中TNF-α 含量顯著降低(P<0.05);在第 2 周,各試驗(yàn)組血清中TNF-α含量沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第4和8周,PSB2和PSB5組血清中TNF-α含量顯著升高(P<0.05)。

        與對(duì)照組相比,在第1周,PSB0.5和PSB1組血清中C3含量顯著降低(P<0.05),隨著豬血多肽添加量的升高,血清中C3含量是逐漸升高的;在第2和4周,各試驗(yàn)組血清中C3含量沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第 8周,PSB2和 PSB5組血清中 C3 含量顯著升高(P<0.05)。

        與對(duì)照組對(duì)比,在第1和2周,各試驗(yàn)組血清中C4含量沒(méi)有顯著變化(P>0.05);在第4周,PSB2和PSB5組血清中 C4含量顯著升高(P<0.05);在第 8周,PSB1、PSB2和 PSB5組血清中C4 含量顯著升高(P<0.05)。

        3 討論

        3.1 豬血多肽對(duì)體外培養(yǎng)建鯉細(xì)胞性能的影響

        巨噬細(xì)胞被認(rèn)為是宿主防御系統(tǒng)的重要組成部分,是魚(yú)類(lèi)最重要的免疫活性細(xì)胞之一,在識(shí)別、吞噬外來(lái)病原體,處理和呈遞抗原,激活淋巴細(xì)胞啟動(dòng)特異性免疫應(yīng)答以及分泌淋巴因子等方面發(fā)揮重要作用[12-14],其活性與功能是反映和評(píng)價(jià)魚(yú)類(lèi)免疫水平的重要指標(biāo)[15]。巨噬細(xì)胞有助于內(nèi)部環(huán)境穩(wěn)態(tài)免受外部環(huán)境的干擾,活化的巨噬細(xì)胞可以釋放多種免疫因子,如一氧化氮(NO)、IL-1β、TNF-α和活性氧中間體等物質(zhì),在宿主防御病原體和任何類(lèi)型的浸潤(rùn)細(xì)胞(包括癌細(xì)胞)中發(fā)揮重要作用[15]。Kim 等[16]認(rèn)為 NO 是由巨噬細(xì)胞分泌的,可以通過(guò)格里斯(Griess)反應(yīng)測(cè)定亞硝酸鹽濃度。需特別指出的是,由巨噬細(xì)胞釋放的NO是一種高反應(yīng)性的自由基,在調(diào)節(jié)各種免疫應(yīng)答中起重要作用。

        本研究試驗(yàn)結(jié)果顯示,添加40和80μg/mL豬血多肽可以顯著或極顯著增強(qiáng)建鯉頭腎巨噬細(xì)胞氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性。Matar等[17]、Meisel等[18]研究均表明,乳酸菌發(fā)酵釋放的多肽有助于調(diào)節(jié)淋巴細(xì)胞的增殖,調(diào)節(jié)某些細(xì)胞因子的生產(chǎn),刺激巨噬細(xì)胞的吞噬活動(dòng)。Migliore-Samour等[19]研究表明,由酪蛋白衍生的免疫肽,在對(duì)抗由肺炎克雷伯氏菌(Klebsiella pneumoniae)引起的微生物感染中起顯著作用,這種作用已經(jīng)在小白鼠試驗(yàn)中得到證實(shí)。這與本試驗(yàn)結(jié)果一致,表明豬血多肽有助于提高頭腎巨噬細(xì)胞的免疫活性,從而增強(qiáng)建鯉自身的非特異性免疫機(jī)能。

        表5 豬血多肽對(duì)建鯉血清免疫指標(biāo)的影響Table 5 Effects of PSB on serum immune indices of Jian carp ng/mL

        3.2 豬血多肽對(duì)建鯉血清生化指標(biāo)的影響

        建鯉血清中ALB和TP含量反映魚(yú)體健康、營(yíng)養(yǎng)以及代謝狀況,同時(shí)也間接反映機(jī)體非特異性免疫水平的高低[20]。TP主要是由ALB和球蛋白(GLB)組成的,血清TP含量高表明機(jī)體蛋白質(zhì)代謝旺盛,有利于機(jī)體對(duì)蛋白質(zhì)的吸收和利用,同時(shí)可以降低飼料消耗。ALB是脊椎動(dòng)物血漿中含量豐富且容易純化的一種蛋白質(zhì),是血液系統(tǒng)的重要成分,能夠結(jié)合和運(yùn)輸多種內(nèi)源性以及外源性物質(zhì),清除自由基,并在抗凝血以及抑制血小板功能等生理過(guò)程中發(fā)揮一定功能[21]。本試驗(yàn)中,用添加豬血多肽的飼料飼喂建鯉后,測(cè)定結(jié)果表明血清TP和ALB含量隨著豬血多肽添加量的升高而升高,表明豬血多肽對(duì)建鯉機(jī)體的新陳代謝是有積極影響的,對(duì)建鯉抗氧化能力的提升也具有一定的促進(jìn)作用。趙紅霞等[22]研究發(fā)現(xiàn),在飼料中添加谷胱甘肽(GSH)能夠增強(qiáng)草魚(yú)蛋白質(zhì)的合成作用。李清等[23]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加生物活性肽可以顯著降低建鯉血清中尿素氮含量,有利于提高蛋白質(zhì)的合成效率。葉均安等[24]研究發(fā)現(xiàn),谷氨酰胺二肽對(duì)于日本對(duì)蝦TP合成也具有一定促進(jìn)作用。

        AKP是一種在生物體代謝調(diào)控中起重要作用的代謝調(diào)控酶,直接參與磷酸基團(tuán)的轉(zhuǎn)移和鈣、磷代謝,在吸收和利用營(yíng)養(yǎng)物質(zhì)的過(guò)程中起重要作用,AKP可以改變病原體表面結(jié)構(gòu),從而增強(qiáng)機(jī)體對(duì)病原體的識(shí)別和吞噬能力[25]。本試驗(yàn)中,與對(duì)照組相比,飼料中添加5.0 g/kg豬血多肽對(duì)建鯉血清中AKP活性有顯著的增強(qiáng)作用。鋅是合成AKP必需的金屬離子,豬血多肽有助于促進(jìn)AKP活性的增強(qiáng)可能與豬血多肽中含有鋅離子有關(guān)。郭存榮等[26]研究發(fā)現(xiàn),飼料中添加不同濃度的魚(yú)蛋白多肽-鋅配合物可以增加羅非魚(yú)血清中AKP活性,并有隨著濃度增加而增加的趨勢(shì),從而增強(qiáng)其免疫力。

        3.3 豬血多肽對(duì)建鯉血清中抗氧化酶活性的影響

        抗氧化劑包括酶促和非酶促2個(gè)部分,在當(dāng)前科學(xué)研究中,SOD、CAT、谷胱甘肽巰基轉(zhuǎn)移酶(GST)、GSH-Px等逐漸引起重視[27]。機(jī)體中由SOD、GSH-Px和CAT等組成的抗氧化酶系統(tǒng),是防自由基損傷的第1道防線,其活性變化能準(zhǔn)確反映機(jī)體內(nèi)的抗氧化狀態(tài)[28-30]。豬血蛋白經(jīng)菌株發(fā)酵,發(fā)酵液過(guò)濾后可以得到分子質(zhì)量在2 ku以下的豬血多肽混合物,這種混合物對(duì)部分活性氧自由基具有強(qiáng)力的清除作用。有研究表明,經(jīng)D-半乳糖誘導(dǎo)衰老ICR小鼠,口服攝入水母復(fù)合蛋白酶水解制備的膠原蛋白,可增加小鼠血清SOD和GSH-Px活性,同時(shí)伴隨血清和肝臟中丙二醛(MDA)含量的大量減少[31]。這與本試驗(yàn)的結(jié)果是一致的。在本試驗(yàn)中,用含豬血多肽的飼料飼喂建鯉后,建鯉血清中SOD和CAT活性隨著豬血多肽添加量的升高呈逐漸升高的趨勢(shì),且PSB5組較對(duì)照組顯著升高,GSH-Px活性也有不同程度的升高,表明豬血多肽能夠提高建鯉體內(nèi)一些抗氧化酶的活性,有助于提高建鯉的抗氧化能力。

        3.4 豬血多肽對(duì)建鯉血清中免疫因子含量的影響

        血清中存在多種的免疫因子,如白介素、腫瘤壞死因子、C3和C4等,測(cè)量血清免疫指標(biāo)是對(duì)機(jī)體免疫水平的體現(xiàn)[32-34]。巨噬細(xì)胞可以釋放多種細(xì)胞因子,如 NO、IL-1β、TNF-α 和活性氧中間體等物質(zhì);C3是血清中含量最高的補(bǔ)體成分,主要由巨噬細(xì)胞和肝臟合成;C4是一種多功能β1-球蛋白,在活化補(bǔ)體、促進(jìn)吞噬、防止免疫復(fù)合物沉著和中和病毒等方面發(fā)揮作用[35]。TNF-α、IL-1β對(duì)于宿主受損或非正常細(xì)胞和組織的恢復(fù)起一定重要作用。方俊等[36]研究表明,豬血多肽能夠提高正常小鼠以及環(huán)磷酸酰胺所致免疫功能低下小鼠的免疫功能,并認(rèn)為豬血多肽能夠從多個(gè)方面增強(qiáng)小鼠的免疫功能,其中最主要的是增強(qiáng)小鼠巨噬細(xì)胞的機(jī)能。劉清海等[37]研究表明,黑鯛口服微生物多肽后,血清中C3和C4含量顯著升高,多種免疫球蛋白的含量也顯著增加。李清等[23]研究也表明,隨著生物活性肽用量的增加,鯉魚(yú)血清中免疫球蛋白M(IgM)和C4的含量顯著增加。這與本試驗(yàn)的研究結(jié)果是一致的,表明豬血多肽可以促進(jìn)細(xì)胞因子的釋放,提高建鯉的免疫功能。

        4 結(jié)論

        ① 在體外試驗(yàn)中,豬血多肽濃度在40和80μg/mL時(shí),建鯉外周血白細(xì)胞的增殖能力顯著提高,頭腎巨噬細(xì)胞的氮呼吸爆發(fā)和氧呼吸爆發(fā)活性也顯著增強(qiáng)。

        ② 在體內(nèi)試驗(yàn)中,飼料中添加5.0 g/kg豬血多肽對(duì)提高建鯉的抗氧化能力和免疫功能具有很好的效果。

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