陳紅梅,謝翎
(安慶師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,安徽安慶,246011)
茯苓,俗稱松苓、云苓,為擔(dān)子菌綱多孔菌科茯苓屬(Poria cocos(Schw.)Wolf),大多寄生于松科植物馬尾松或赤松根部,為傳統(tǒng)中藥,具有利水滲濕、益脾健胃、寧心安神,增強(qiáng)機(jī)體免疫等功能[1]。茯苓富含茯苓多糖、茯苓酸、三萜羧酸、月桂酸等成分[2-3],具有很高的藥用和營養(yǎng)價(jià)值。安徽省安慶市岳西縣隸屬于大別山區(qū),是茯苓主要栽培基地[4],年產(chǎn)茯苓達(dá)100多萬kg。茯苓深加工產(chǎn)業(yè)帶動(dòng)了地方經(jīng)濟(jì)的發(fā)展,但是,茯苓在加工過程中,較易發(fā)生褐變,從而影響了茯苓的外觀品質(zhì)。
多酚氧化酶(polyphenol oxidase,PPO,E.C.1.10.3.1)是一種含銅的末端氧化還原酶,廣泛存在于植物、動(dòng)物和微生物體內(nèi)[5]。多酚氧化酶因能作用于酚,使之轉(zhuǎn)化為醌類物質(zhì),醌類物質(zhì)之間相互聚合生成褐色素,而使植物組織呈現(xiàn)褐色[6-7],這樣,PPO成為植物體內(nèi)引起酶促褐變的重要因素之一。酶促褐變往往因會(huì)影響蔬果的感官品質(zhì),而使蔬果的經(jīng)濟(jì)價(jià)值降低,從而引起了人們對(duì)PPO的關(guān)注。不同植物,可能因?yàn)槠淦贩N或生長環(huán)境的差異,PPO對(duì)酶促褐變的影響也不同。目前,對(duì)于馬鈴薯、蓮藕、蘋果、香蕉等蔬果中PPO的酶學(xué)特性研究較多[8-11],而關(guān)于茯苓PPO的研究卻未見詳細(xì)報(bào)道。本研究以茯苓為原料,對(duì)茯苓PPO的部分酶學(xué)性質(zhì)包括最適pH值,最適反應(yīng)溫度和底物濃度等進(jìn)行研究,并探討抑制劑對(duì)PPO活性的影響。通過對(duì)茯苓PPO動(dòng)力學(xué)特性的研究,采取有針對(duì)性的措施以減少茯苓加工過程中酶促褐變的發(fā)生,為優(yōu)良品質(zhì)茯苓的深加工提供依據(jù)和技術(shù)支持。
茯苓,取自安徽省安慶市岳西縣茯苓種植基地。
丙酮、NaH2PO4、Na2HPO4、鄰苯二酚、NaCl、抗壞血酸、L-半胱氨酸、檸檬酸等均為分析純。
UV-2000紫外可見分光光度計(jì),上海尤尼柯公司;TGL-16G高速冷凍離心機(jī),上海精密儀器有限公司;FA2004A電子天平,上海精天有限公司,數(shù)顯恒溫水浴鍋,常州國華電器有限公司。
1.2.1 粗酶液的制備
將茯苓用清水洗凈,風(fēng)干,切成小塊,準(zhǔn)確稱取5 g置于組織搗碎機(jī)中,加入預(yù)冷的丙酮,打成勻漿,抽濾,濾渣經(jīng)丙酮反復(fù)抽濾,得丙酮粉。丙酮粉經(jīng)風(fēng)干后,加入pH 7.0的經(jīng)預(yù)冷的磷酸鹽緩沖液,在冰浴條件下研成勻漿。勻漿液轉(zhuǎn)入離心管中,于4℃,12 000 r/min離心20 min,上清液即為茯苓PPO粗酶液,備用。
1.2.2 PPO酶活性測定
分別取0.1 mol/L鄰苯二酚溶液0.5 mL、pH 5.5的磷酸鹽緩沖液3mL置于小試管中,充分混勻后再加入0.5 mL茯苓PPO粗酶液,用分光光度計(jì)測定其在420 nm下的吸光度值A(chǔ)。以蒸餾水為對(duì)照,每隔5 s讀取1次,連續(xù)記錄2 min。每克樣品單位時(shí)間內(nèi)吸光度值增加0.001為1個(gè)酶活力單位U。最大酶活力為100%。
1.2.3 PPO最適反應(yīng)pH值
取0.1 mol/L鄰苯二酚溶液0.5 mL于小試管中,再分別加入 pH 分別為 3.5、4、4.5、5、5.5、6、6.5、7、7.5、8、8.5、9 的磷酸鹽緩沖液 3 mL,充分混勻后,加入0.5 mL茯苓PPO粗酶液,用分光光度計(jì)測定其在420 nm下的吸光度變化值。
1.2.4 PPO最適反應(yīng)溫度
取0.1 mol/L鄰苯二酚溶液0.5mL于小試管中,再加入最適pH的磷酸鹽緩沖液3 mL,充分混勻后,加入0.5 mL茯苓PPO粗酶液,分別置于20、25、30、35、40、45、50、55、60、65、70、75 ℃ 水浴鍋中保溫 5 min,冷卻,用分光光度計(jì)測定其在420 nm下的吸光度變化值。
1.2.5 底物濃度對(duì)PPO酶活性的影響
分別取濃度為 0.01、0.02、0.03、0.04、0.05、0.06、0.07、0.08、0.09 mol/L 的鄰苯二酚溶液 0.5 mL于小試管中,再加入最適pH的磷酸鹽緩沖液3 mL,充分混勻后,加入0.5 mL茯苓PPO粗酶液,在最適溫度下保溫5 min,冷卻,用分光光度計(jì)測定其在420 nm下的吸光度變化值。
1.2.6 PPO熱穩(wěn)定性分析
取最適pH的磷酸鹽緩沖液3 mL,加入0.5 mL茯苓 PPO 粗酶液,分別在35、45、55、65、75 ℃保溫 0、4、8、12、16、20、24 min,置于冰浴中迅速冷卻,用分光光度計(jì)測定其在420 nm下的吸光度變化值。
1.2.7 抑制劑對(duì)PPO酶活性的影響
取鄰苯二酚溶液0.5 mL于小試管中,再加入最適pH的磷酸鹽緩沖液3 mL,充分混勻后,加入0.5 mL茯苓PPO粗酶液,分別加入不同質(zhì)量濃度的NaCl、抗壞血酸、L-半胱氨酸和檸檬酸溶液1 mL,依次用分光光度計(jì)測定在420 nm下的吸光度變化值。
pH值對(duì)茯苓PPO酶活性的影響如圖1所示。茯苓PPO酶活性的最適pH值為6.5,高于或低于此值,酶活力均下降。當(dāng)pH值小于6.5時(shí),隨著pH值的增加,酶活性也隨之增強(qiáng);而當(dāng)pH值大于6.5時(shí),酶活性又隨著pH值的升高而下降。PPO酶活性在強(qiáng)酸性和強(qiáng)堿性環(huán)境中,酶活性均較低,這主要是因?yàn)镻PO是一種含銅蛋白,位于PPO酶活性中心部位的輔基Cu2+,在極端酸堿性環(huán)境中容易發(fā)生解離。當(dāng)在強(qiáng)酸性環(huán)境中,Cu2+發(fā)生解離,使酶活性大大下降或失活;當(dāng)處于強(qiáng)堿性環(huán)境中時(shí),解離下的Cu2+容易形成Cu(OH)2沉淀,從而使得酶活性顯著降低甚至失活[12]。因此,PPO在酸性或堿性環(huán)境中,酶活性受到很大抑制,在一定程度上也能減少酶促褐變的發(fā)生。
圖1 pH值對(duì)茯苓PPO酶活性的影響Fig.1 Effect of pH on PPO activity of Poria cocos
溫度對(duì)茯苓PPO酶活性的影響如圖2所示。在20~35℃,隨著溫度的升高,酶活性呈增長趨勢,當(dāng)溫度達(dá)到35℃時(shí),茯苓PPO酶活性達(dá)到最高,茯苓PPO的最適反應(yīng)溫度為35℃。此后繼續(xù)升高溫度,酶活性呈下降趨勢。當(dāng)溫度達(dá)到75℃時(shí),酶相對(duì)活性僅有19.4%。這是因?yàn)闇囟壬?,分子碰撞加劇,酶促反?yīng)速率也隨之加快,但酶的本質(zhì)是蛋白質(zhì),蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)與功能是密切相關(guān)的。溫度稍高會(huì)引起蛋白質(zhì)空間構(gòu)象發(fā)生一定程度的改變,酶活性中心破壞,酶蛋白變性,致使其活性下降甚至引起失活。
圖2 溫度對(duì)茯苓PPO酶活性的影響Fig.2 Effect of temperature on PPO activity of Poria cocos
底物濃度對(duì)茯苓PPO酶活性的影響如圖3所示,符合典型的米氏方程曲線。由圖3可知,當(dāng)?shù)孜餄舛容^低時(shí),隨著底物濃度的增高,酶活性也隨之增高,二者呈一級(jí)反應(yīng)。這是因?yàn)榈孜餄舛容^低時(shí),只有一部分酶與底物結(jié)合,底物濃度決定了反應(yīng)速率;當(dāng)?shù)孜餄舛冗_(dá)到0.06 mol/L時(shí),酶活力幾乎保持不變,繼續(xù)增加底物濃度,反應(yīng)也趨于穩(wěn)定狀態(tài),二者呈零級(jí)反應(yīng)。這是因?yàn)楫?dāng)?shù)孜镞_(dá)到一定濃度時(shí),全部跟酶的活性部位結(jié)合,酶已經(jīng)達(dá)到飽和,即使再增加底物濃度,也不會(huì)使反應(yīng)速率增加。
圖3 底物濃度對(duì)茯苓PPO酶活性的影響Fig.3 Effect of substrate concentration on PPO activity of Poria cocos
根據(jù)Line weaver-Burk方程,利用雙倒數(shù)作圖法,以1/[S]為橫坐標(biāo),1/V為縱坐標(biāo)作圖,如圖4所示,擬合得到動(dòng)力學(xué)方程。根據(jù)方程,求得茯苓PPO動(dòng)力學(xué)參數(shù),其中米氏常數(shù)Km=0.024 4 mol/L,最大反應(yīng)速率Vmax=121.95 U/min。
圖4 茯苓PPO酶促反應(yīng)雙倒數(shù)曲線Fig.4 Double reciprocal plot of enzyme-catalyzed reaction of PPO from Poria cocos
將茯苓PPO酶置于不同溫度下分別處理一段時(shí)間,測定其酶活,對(duì)其熱穩(wěn)定性分析,結(jié)果如圖5所示。茯苓PPO酶在35℃時(shí),酶活性較為穩(wěn)定,隨著作用時(shí)間的延長,酶活性呈緩慢下降趨勢;其次為45℃。而當(dāng)繼續(xù)增高至55、65、75℃時(shí),酶活性呈急劇下降趨勢。在75℃下作用8 min,PPO已經(jīng)大部分失活。
圖5 茯苓PPO酶熱穩(wěn)定性Fig.5 Thermal stability of PPO from Poria cocos
在酶的反應(yīng)體系中,分別加入不同質(zhì)量濃度的NaCl、抗壞血酸、L-半胱氨酸和檸檬酸溶液,這4種抑制劑對(duì)茯苓PPO酶活性的影響如圖6所示。NaCl、抗壞血酸、L-半胱氨酸和檸檬酸溶液均對(duì)茯苓PPO酶活性具有一定的抑制作用,且抑制效果與抑制劑的質(zhì)量濃度呈正比關(guān)系。在同等質(zhì)量濃度下,L-半胱氨酸對(duì)茯苓PPO酶的活性抑制程度最大,其次是抗壞血酸、檸檬酸,最后是NaCl。L-半胱氨酸質(zhì)量濃度為0.6 mmol/L時(shí),此時(shí)茯苓PPO酶相對(duì)酶活只有7%。L-半胱氨酸抑制茯苓PPO酶的活性,可能是因?yàn)樗梢耘c醌類物質(zhì)結(jié)合生成硫氫化合物,從而抑制酶促褐變[13]。抗壞血酸對(duì)茯苓PPO酶活性也具有較強(qiáng)的抑制作用,可能是因?yàn)樗哂羞€原性,可以將PPO酶的輔基Cu2+還原,將醌類還原成酚醛結(jié)構(gòu),抑制醌類物質(zhì)相互聚合[14-15]。檸檬酸和NaCl對(duì)PPO活性也有一定的抑制作用,但較L-半胱氨酸和抗壞血酸來說,抑制效果相對(duì)較差。
圖6 不同抑制劑對(duì)茯苓PPO酶活性的影響Fig.6 Effect of different inhibitors on PPO activity of Poria cocos
通過對(duì)茯苓PPO酶學(xué)特性的研究,茯苓PPO酶的最適pH為6.5,最適溫度為35℃,最適底物濃度為0.06 mol/L。PPO酶促反應(yīng)動(dòng)力學(xué)符合米氏方程,米氏常數(shù)Km=0.024 4 mol/L,最大反應(yīng)速率Vmax=121.95 U/min。PPO的耐熱性較差,75℃下熱處理8 min,可以使酶活性基本失活。NaCl、抗壞血酸、L-半胱氨酸和檸檬酸溶液對(duì)茯苓PPO酶活性有一定的抑制作用,在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi),抑制效果與質(zhì)量濃度呈線性關(guān)系。其中以L-半胱氨酸抑制效果最好,其次是抗壞血酸,再次是檸檬酸,最后是NaCl。
今后,在茯苓深加工過程中,可以采取一些措施避開PPO酶的最佳反應(yīng)條件。諸如可以在偏酸性或是偏堿性的環(huán)境中,低溫下進(jìn)行操作,抑制PPO活性,延緩褐變;PPO熱穩(wěn)定性較差,熱處理一定時(shí)間可以使酶活性部分或完全失活,但熱處理過程中也容易使茯苓其他的有效成分分解,影響品質(zhì),因此不建議使用。另外,在加工過程中可以加入L-半胱氨酸、抗壞血酸等,這些物質(zhì)都可以抑制PPO的活性,從而減少酶促褐變的發(fā)生。在植物加工過程中,這些物質(zhì)常作為護(hù)色劑加入防止褐變的發(fā)生[16-17],均取得了一定的效果。對(duì)于抑制劑,有研究表明具有協(xié)同作用,同時(shí)將幾種抑制劑結(jié)合使用與只加入其中一種相比較,可能對(duì)酶促褐變起到更好的抑制作用,但是,對(duì)于茯苓是否不能同樣如此,本文并沒有作進(jìn)一步研究。
[1] 中國藥典.一部[S].2010:224.
[2] 張揚(yáng),胡高升,韓志福,等.茯苓發(fā)酵菌絲體中3種主要三萜酸類成分積累動(dòng)態(tài)研究[J].中國中藥雜志,2013,9(38):1 355-1 359.
[3] 胡斌,楊益平,葉陽.茯苓化學(xué)成分研究[J].中草藥,2006,5(37):655-658.
[4] SONG X W,WANG D Q.大別山茯苓產(chǎn)地的形成與發(fā)展[J].安徽中醫(yī)學(xué)院學(xué)報(bào),2011,30(5):65-67.
[5] 李忠光,龔明.植物多酚氧化酶活性測定方法的改進(jìn)[J].云南師范大學(xué)學(xué)報(bào),2005,25(1):44-45.
[6] 李超,鄭義,王乃馨,等.牛蒡多酚氧化酶的特性及酶促褐變的抑制[J].食品工業(yè)科技,2011,32(6):121-124.
[7] 何國慶,丁立孝.食品酶學(xué)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2006:130-134.
[8] 王磊,阮征,駱成堯,等.馬鈴薯多酚氧化酶酶學(xué)特性及熱穩(wěn)定性模型的研究[J].食品工業(yè)科技,2012,33(19):92-96.
[9] 高夢祥,胡翠翠,嚴(yán)奉偉,等.磁場和抑制劑對(duì)蓮藕多酚氧化酶反應(yīng)動(dòng)力學(xué)的影響[J].農(nóng)業(yè)機(jī)械學(xué)報(bào),2008,39(1):78-81.
[10] 乜蘭春,孫建設(shè),辛蓓,等.蘋果果實(shí)酶促褐變底物及多酚氧化酶活性的研究[J].園藝學(xué)報(bào),2004,31(4):502-504.
[11] 柳素潔,杜金華,單玲克,等.香蕉中多酚氧化酶性質(zhì)及褐變控制[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2012,38(2):126-130.
[12] 王向陽,姜麗佳,王忠英.蓮藕的酶促褐變及其貯藏中褐變的控制[J].農(nóng)業(yè)工程學(xué)報(bào),2009,25(4):276-280.
[13] 孔維寶,陸健,趙海鋒,等.L-半胱氨酸抑制多酚氧化酶的機(jī)制研究[J].食品科學(xué),2007,28(11):66-70.
[14] 劉靜,錢建亞,李成良,等.芡實(shí)多酚氧化酶的酶學(xué)性質(zhì)[J].食品科學(xué),2012,33(7):176-181.
[15] Yoruk R,Marshall M R.Physicochemical properties and function of plant polyphenol oxidase:A review[J].J Food Bio chem,2003,27(5):361-422.
[16] 黃紹華,胡曉波,王震宙.山藥中多酚氧化酶的活性測定及其護(hù)色研究[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2005,31(6):27-29.
[17] 羅志剛,楊連生,姜紹通,等.抗壞血酸和亞硫酸鈉在甘薯破碎中抗褐變的研究[J].食品工業(yè)科技,2002,23(5):52-53.