馮立娟，苑兆和，尹燕雷，招雪晴

(1.山東省果樹研究所，山東 泰安 271000；2.南京林業(yè)大學森林資源與環(huán)境學院，江蘇 南京 210037)

大麗花(Dahliapinnata)是菊科大麗花屬多年生宿根草本花卉，原產于墨西哥和危地馬拉地帶，花姿優(yōu)美、花型多樣、色彩絢麗、花期長、品種繁多，是全世界栽培最廣的觀賞植物之一[1]。生產中適于盆栽且花色豐富、花型美觀、花期不同的矮生型品種較少，而中生和高生型品種易出現(xiàn)倒伏現(xiàn)象，嚴重影響其觀賞價值[2]。植物生長延緩劑多效唑能使植株矮化，根系發(fā)達，莖干增粗，防止徒長和倒伏，增強抗性[3-5]，在核桃(Juglansregia)[6]、水仙(Narcissustazetta)[7]和甜瓜(Cucumismelo)[8]等作物上的應用已有相關報道，在大麗花植株矮化方面的研究較少。因此，運用外源生長調節(jié)劑增強大麗花植株抗逆性對大麗花露地栽培具有重要的現(xiàn)實意義。

植物生長發(fā)育與其光合能力密切相關，光合能力強，開花數(shù)量多、質量高、花期長，觀賞價值高[9]。葉綠體是光合作用的場所，其大小、多少、基粒數(shù)、基粒厚度、基粒片層數(shù)等都會對光合作用有一定的影響[10-11]。多效唑處理能提高植物生長發(fā)育各時期葉片葉綠素含量和光合能力，顯著影響植物光合作用和超微結構，普遍用于提高植物生產率[12]。因此，研究多效唑對大麗花葉片光合特性和超微結構的影響，對探討其光合作用機理具有重要意義。目前，有關大麗花抗旱機理[13]、組培快繁[14]、花青苷合成代謝[15]和病蟲害防治[16-17]等方面的研究已被進行過有益的探索，但多效唑對大麗花生長發(fā)育、光合特性和超微結構的影響尚未見報道。因此，本研究以不同濃度多效唑處理大麗花植株，明確其對大麗花生長發(fā)育、光合特性和超微結構的影響，從而確定其是否對大麗花植株生長具有調節(jié)作用，篩選出較理想的藥劑濃度值，并為生產中大麗花植株抗倒伏、觀賞價值提高提供理論依據。

1 材料與方法

1.1 試驗材料與處理

試驗于2010-2012年在山東省果樹研究所觀賞園藝室進行，試材為高生型大麗花品種‘隴上雄鷹’。4月份開始對貯藏的大麗花塊根進行分根、催芽、扦插，扦插苗生根后選生長健壯，株高一致(10 cm左右)的幼苗定植于直徑為30 cm的塑料盆內，盆土配制為園土∶沙∶草炭∶羊糞=5∶3∶2∶1，常規(guī)管理。

待幼苗長至株高20 cm時，根灌1次，每株約1000 mL。采用單因素隨機試驗設計，多效唑濃度梯度分別為：25，50，75，100，125 mg/L，共5個處理，每處理3個重復，以清水為對照。多效唑是四川國光農化有限公司生產的質量分數(shù)為15%可濕性粉劑。處理后每隔7 d(從第1 次處理算)進行1次葉綠素和光合參數(shù)的測定，直至花謝；30 d 后進行形態(tài)指標的調查和超微結構的觀測。每個處理設15 次(株)重復。

1.2 相關指標的測定

形態(tài)指標采用常規(guī)測量和計數(shù)法；葉片光合參數(shù)采用英國PP-Systems公司生產的TPS-1型便攜式光合作用測定系統(tǒng)測定；葉綠素含量測定采用丙酮法，按照鄒琦[18]的方法測定。各重復3次。

超微結構觀察：在葉片中部主脈兩側切取1～2 mm2的葉片組織小塊，用4% 戊二醛前固定，pH 7.2 磷酸緩沖液沖洗，1% 鋨酸后固定，梯度乙醇-丙醇脫水，Epon-812 環(huán)氧樹脂包埋，LKB-5型超薄切片機切片，后經醋酸雙氧鈾、檸檬酸鉛雙重染色，JGE-1200 EX 型透射電鏡觀察、測量并照相。每處理觀測20～40 個視野，取平均值。

1.3 數(shù)據分析

采用DPS 7.05 軟件進行統(tǒng)計分析，數(shù)據顯著性差異運用Duncan’s 新復極差法進行多重比較(P<0.05)，Excel 軟件作圖。

2 結果與分析

2.1 多效唑對大麗花生長發(fā)育指標的影響

不同濃度多效唑處理對大麗花生長發(fā)育指標的影響如表1所示。不同多效唑處理的大麗花葉長、葉寬、葉柄長和株高均隨著處理濃度的增加先降低后略有升高，均極顯著低于對照。不同濃度多效唑處理的花徑隨處理濃度的增加先升高后降低，均極顯著高于對照。75 mg/L多效唑處理的花徑最大，為19.8 cm。

表1 多效唑對大麗花生長發(fā)育指標的影響

注：表中大寫字母表示0.01水平極顯著，小寫字母表示0.05水平顯著。下同。Note: The capital letter means significantly different at 0.01 level, the small letter means significantly different at 0.05 level. The same below.

2.2 多效唑對大麗花葉片葉綠素含量的影響

如圖1所示，不同濃度多效唑處理條件下，大麗花葉片中葉綠素含量隨著天數(shù)的增加均呈現(xiàn)先升高后降低的變化趨勢，在24 d左右時出現(xiàn)峰值，與對照變化趨勢一致。不同濃度多效唑處理的葉綠素含量均高于對照，以75 mg/L處理的葉綠素含量最高，為3.03 mg/g。

2.3 多效唑對大麗花葉片光合特性的影響

不同濃度多效唑處理對大麗花葉片凈光合速率、蒸騰速率、氣孔導度和細胞間CO2濃度的影響如圖2所示。不同濃度多效唑處理條件下，大麗花葉片中凈光合速率隨著天數(shù)的增加先升高后降低，在24 d時出現(xiàn)峰值，與對照變化趨勢一致。不同濃度多效唑處理大麗花葉片凈光合速率均高于對照水平，以75 mg/L多效唑處理的凈光合速率最高，為19.8 μmol/(m2·s)。

不同濃度多效唑處理條件下，大麗花葉片中蒸騰速率均隨著天數(shù)的增加呈升→降→升→降的變化趨勢，分別在12和24 d左右出現(xiàn)峰值，與對照變化趨勢一致。

圖1 多效唑對大麗花葉綠素含量的影響

不同濃度多效唑處理條件下，大麗花葉片中氣孔導度隨著天數(shù)的增加也呈升→降→升→降的變化趨勢，分別在6和30 d左右出現(xiàn)峰值，與對照變化趨勢一致。

大麗花葉片中細胞間CO2濃度隨著天數(shù)的增加呈現(xiàn)不同的變化趨勢，總體在300～430 μmol/mol范圍內變化。對照、50和100 mg/L處理條件下，葉片中細胞間CO2濃度隨著天數(shù)的增加呈現(xiàn)降→升→降→升→降的變化趨勢，出現(xiàn)峰值的時間不同。25，75和125 mg/L處理條件下，葉片中細胞間CO2濃度呈現(xiàn)降→升→降的變化趨勢，出現(xiàn)峰值的時間不同。

圖2 多效唑對大麗花葉片光合特性的影響

2.4 多效唑對大麗花葉片超微結構的影響

透射電鏡觀察表明(表2)，大麗花葉片柵欄組織內每細胞葉綠體數(shù)為19.73～24.88 個。不同濃度多效唑處理的葉綠體數(shù)與對照差異不顯著，75 mg/L處理的葉綠體數(shù)與100和125 mg/L處理差異極顯著。75 mg/L處理的葉綠體大小高于對照，其他多效唑濃度處理的葉綠體大小低于對照，與對照差異均不顯著。在25，50和75 mg/L處理條件下，大麗花葉片基粒數(shù)和基粒片層數(shù)均高于對照，其他處理低于對照。25，50，75和100 mg/L處理的葉綠體基粒數(shù)和基粒片層數(shù)與對照差異不顯著，125 mg/L處理的基粒片層數(shù)與對照差異極顯著。以75 mg/L多效唑處理的葉綠體基粒數(shù)和基粒片層數(shù)最多，分別為29.90和14.80個，比對照增加18.42%和19.35%?？梢?，不同濃度多效唑處理均會導致大麗花葉片類囊體垛疊程度的增加，以75 mg/L多效唑處理表現(xiàn)尤其明顯。

單個細胞內的淀粉數(shù)為15.55～18.88個，25和50 mg/L多效唑處理的淀粉數(shù)分別為18.71和18.75個，與對照差異不顯著，淀粉粒稍小于對照。75 mg/L多效唑處理的淀粉數(shù)為18.88個，與對照差異不顯著，淀粉粒長和寬分別為4.60和2.59 μm，比對照增加2.05%和14.44%。100 和125 mg/L多效唑處理的淀粉數(shù)少于對照，且淀粉粒明顯變小，說明這兩種處理條件下，合成和積累的碳水化合物明顯減少。

不同濃度多效唑處理對大麗花葉片光合器官葉綠體超微結構的影響不同。在對照(圖3-1)、25 mg/L(圖3-2)，50 mg/L(圖 3-3)和75 mg/L(圖 3-4)多效唑處理條件下，葉綠體形狀差異不明顯，均是長橢圓形。葉綠體超微結構正常，基粒和基質類囊體排列整齊。葉綠體中含有大淀粉粒，平均1個葉綠體含1個淀粉粒。在100 mg/L(圖3-5)和125 mg/L(圖3-6)多效唑處理條件下，葉綠體形狀由橢圓形變腫脹或成球狀。

在對照(圖4-1)、25 mg/L(圖4-2)，50 mg/L(圖4-3)和75 mg/L(圖4-4)多效唑處理下生長的大麗花葉片中，大部分葉綠體有一個典型的膜結構，如葉綠體被膜是雙層膜。在上述處理條件下，葉綠體膜和液泡膜清晰，連續(xù)不斷。在100 mg/L(圖4-5)多效唑處理條件下，一些細胞中葉綠體膜和液泡膜模糊不清。在125 mg/L(圖4-6)多效唑處理條件下，葉綠體外膜、液泡膜和線粒體遭到破壞。

圖3 多效唑處理對大麗花葉片葉綠體全貌的影響

圖4 多效唑處理對大麗花葉片葉綠體膜和液泡膜的影響

在25 mg/L(圖5-2)，50 mg/L(圖5-3)和75 mg/L(圖5-4)多效唑處理條件下，線粒體結構和膜正常，與對照(圖5-1)差異不顯著，細胞膜清晰，連續(xù)不斷。在100 mg/L(圖5-5)和125 mg/L(圖5-6)多效唑處理條件下，線粒體結構不正常，部分線粒體膜斷裂或破壞，細胞膜也遭到破壞。在125 mg/L多效唑處理條件下，線粒體結構受損程度較100 mg/L多效唑處理嚴重。

與對照(圖6-1)相似，在25 mg/L(圖6-2)，50 mg/L(圖6-3)和75 mg/L(圖6-4)多效唑處理條件下，葉綠體基質類囊體相互平行排列，堆積成堆，液泡膜和葉綠體膜結構正常且連續(xù)不斷。隨著多效唑處理濃度的增加，基粒和基粒片層數(shù)不斷增多。在100 mg/L(圖6-5)多效唑處理條件下，葉綠體膜、液泡膜、基粒、基粒片層和細胞膜遭到輕度破壞，并引起輕度質壁分離現(xiàn)象。在125 mg/L(圖6-6)多效唑處理條件下，質壁分離現(xiàn)象較嚴重，液泡和葉綠體膜遭到嚴重破壞，基粒發(fā)育不完全，老的葉綠體遭到破壞，新的葉綠體發(fā)育不完全，從而使葉片中凈光合速率降低。

圖5 多效唑處理對大麗花葉片線粒體和細胞膜的影響

圖6 多效唑處理對大麗花葉片基粒、基粒片層、液泡膜和葉綠體膜的影響

3 討論

多效唑通過影響光合作用、內源激素合成、水分和礦質元素的吸收，達到控制株高、調整株型和調節(jié)花期等多種效果，從而調控植物生長發(fā)育[19-21]。本試驗結果表明，根灌多效唑能有效抑制大麗花生長，對其株高和葉片有顯著矮化作用，施用的濃度越高，矮化效果越明顯，這是由于多效唑主要通過抑制赤霉素的生物合成，使植物內源赤霉素數(shù)量減少，植物體細胞伸長受抑，細胞長度變小，從而引起株高降低，節(jié)間縮小，葉片變短，植株矮化[22]。多效唑處理能促進大麗花花徑增加，以75 mg/L多效唑處理的花徑最大，較對照增加29.80%，這可能與多效唑促進干物質在花、莖和根器官中的積累有關[23]。

葉綠素是光合作用過程中最重要的光合色素，是植物進行光合作用的催化劑，其含量高低是反映植物光合能力的重要指標之一[24-25]。多效唑處理能顯著提高葉片葉綠素含量，增強光合能力[26]。葉綠體結構與光合作用密切相關，葉綠體基粒數(shù)和基粒片層數(shù)越多，基粒片層排列越致密，光合能力越強[27-28]。本試驗結果表明，適當濃度(25，50和75 mg/L)多效唑處理使大麗花葉片中葉綠素含量和凈光合速率顯著增加，以75 mg/L多效唑處理效果最佳，葉綠素含量和凈光合速率較對照分別增加56.8%和29.8%。超微結構觀察表明，適當濃度(25，50和75 mg/L)多效唑處理條件下，大麗花葉片細胞內葉綠體、線粒體結構完整，基粒數(shù)和基粒片層數(shù)隨著處理濃度的增加而增加，葉綠體數(shù)和淀粉粒數(shù)多。這說明，一定濃度的多效唑處理有助于保護葉綠體膜，保持其結構的穩(wěn)定性，從而維持大麗花葉片較高的光合速率[27]。

通常影響植物光合作用的因素可分為氣孔因素和非氣孔因素，前者指氣孔導度下降時，細胞間CO2進入葉片受阻而使光合下降，后者指葉肉細胞的光合活性下降[29-30]。本試驗結果表明，不同多效唑濃度處理條件下，隨著處理天數(shù)的增加，當大麗花葉片凈光合速率下降時，氣孔導度降低，細胞間CO2濃度降低或升高，這說明，多效唑處理過程中，大麗花葉片凈光合速率的降低是氣孔因素和非氣孔因素共同作用的結果，這與Frederick和Camberato[31]的研究結果一致。

適宜濃度的多效唑處理具有抑制大麗花植株生長，提高光合性能的作用，最終提高觀賞價值。因此，生產中采取根灌多效唑控制大麗花株高的措施是可行的。75 mg/L多效唑處理使大麗花植株矮化、花徑最大，葉綠體結構完整，葉綠素含量和凈光合速率最高，是最佳的使用濃度。大麗花多效唑使用的最佳濃度低于高羊茅(Festucaarundinacea)[26,32]和金錢樹(Zamioculcaszamiifolia)[33]，高于水仙(Narcissustazettavar.chinensis)[34]和康乃馨(Dianthuscaryophyllus)[35]，這可能與多效唑的生產廠家和不同作物對多效唑的反應敏感性不同有關。

4 結論

綜上所述，75 mg/L多效唑處理大麗花植株效果最佳，可使其矮化、增加開花產量和質量，葉綠體、線粒體結構完整，基粒和基粒片層排列整齊，數(shù)目較多，葉綠素含量高，光合作用強，觀賞價值佳。