岳潤清, 鐵雙貴, 韓小花, 齊建雙, 燕樹鋒, 林 鴻, 徐玉隔, 劉 芳
(1.河南省農(nóng)業(yè)科學院糧食作物研究所,河南省玉米生物學重點實驗室,河南 鄭州 450002;2.鄭州大學生物工程系,河南鄭州 450001;3.河南師范大學生命科學學院,河南 新鄉(xiāng) 453007)
土壤鹽漬化是嚴重影響農(nóng)業(yè)生產(chǎn)和生態(tài)環(huán)境的因素之一,全球約20%的耕地和將近一半的灌溉土地遭受鹽漬化影響[1]。中國現(xiàn)有鹽堿地9.913×108hm2,每年因鹽堿地造成的農(nóng)業(yè)直接損失達數(shù)百億元[2]。玉米是中國第二大作物,可以用作糧食、飼料和工業(yè)原料等,是中國畜牧養(yǎng)殖業(yè)的支柱。然而,玉米對鹽分中度敏感,耐鹽性相對較差,這極大地限制了其種植面積的擴大。由于缺乏耐鹽玉米種質(zhì),嚴重限制了玉米耐鹽性的遺傳研究和耐鹽玉米新品種的選育。
基因工程的迅速發(fā)展與完善,為人類進一步提高作物的抗逆性提供了新的策略和強有力工具[3-4]。而利用基因工程遺傳轉(zhuǎn)化技術(shù)對作物進行改良,培育耐鹽性轉(zhuǎn)基因玉米新品種已經(jīng)成為在鹽堿地上種植玉米的有效途徑之一[5]。國內(nèi)外學者克隆了一些和耐鹽相關(guān)的基因,并進行遺傳轉(zhuǎn)化,獲得了一些耐鹽性較高的轉(zhuǎn)基因玉米新材料。Zhang等[6]和 Li等[7]將TsCBF1基因?qū)胗衩鬃越幌抵校@著提高了玉米抗旱或耐鹽能力。Chen等[8]將OsNHX1基因成功轉(zhuǎn)入玉米中,轉(zhuǎn)基因玉米耐鹽性得到提高。楊愛芳等[9]將來自大腸桿菌膽堿脫氫酶基因betA轉(zhuǎn)入玉米骨干自交系中,批量獲得了轉(zhuǎn)基因植株,從其后代中選育出耐鹽性大幅度提高的抗除草劑自交系。任小燕等[10]采用超聲波輔助花粉介導法將山菠菜膽堿單加氧酶AhCMO基因轉(zhuǎn)入玉米中,獲得耐鹽性提高的玉米新材料。王奕等[11]把耐鹽基因DREB2A轉(zhuǎn)入玉米自交系H99以及雜交種H99xA188,獲得轉(zhuǎn)基因陽性植株。這些研究結(jié)果表明采用基因工程技術(shù)培育玉米耐鹽品種是可行的。轉(zhuǎn)基因技術(shù)通過種屬間基因的流動彌補了玉米遺傳資源的不足,與常規(guī)育種結(jié)合必將帶來育種上的重大突破,它是農(nóng)業(yè)生物技術(shù)的核心領(lǐng)域,并將成為作物育種的一種重要手段。
擬南芥CHX23基因是Song等[12]從擬南芥中克隆出的一個在植物抗鹽脅迫反應中起重要作用的基因,將其轉(zhuǎn)入煙草中后獲得了耐鹽轉(zhuǎn)基因煙草植株。本研究通過PCR方法試圖克隆擬南芥AtCHX23基因,構(gòu)建植物組成型高效表達載體,并通過農(nóng)桿菌介導法將其轉(zhuǎn)到玉米自交系鄭58中,對轉(zhuǎn)基因玉米耐鹽性進行初步研究,為培育轉(zhuǎn)基因耐鹽玉米提供依據(jù)。
擬南芥為哥倫比亞生態(tài)型,為河南省玉米生物學重點實驗室保存。玉米轉(zhuǎn)基因受體鄭58為河南省農(nóng)業(yè)科學院糧食作物研究所提供,開花后12~14 d的玉米幼胚用于遺傳轉(zhuǎn)化。
各種限制性內(nèi)切酶、T4連接酶、DNA聚合酶、反轉(zhuǎn)錄試劑盒等均購自 TaKaRa公司。農(nóng)桿菌GV3101和DH5a由河南省玉米生物學重點實驗室保存;植物表達載體pGreen-0229為河南大學提供。DIG high primer DNA labeling and detection starter kit I為Roche產(chǎn)品;其他藥品、試劑均為分析純,購自上海生工生物工程有限公司。所用引物由上海生工生物工程有限公司合成。
1.2.1AtCHX23基因的克隆與植物表達載體的構(gòu)建 從擬南芥基因組中克隆AtCHX23基因(上游引物:5'-ATACTCGAGATGTCTTCCGGAGCCCCC-3';下游引物:5'-TGTAAGCTTTTACCTATGAATTCCATATTGATGAT-3'),構(gòu)建到植物表達載 pGreen-0229載體上,16℃ 過夜連接,將構(gòu)建的重組質(zhì)粒pGreen-0229-AtCHX23轉(zhuǎn)化到大腸桿菌DH5α,對獲得的重組質(zhì)粒進行酶切,PCR鑒定。其中35S組成型高表達啟動子控制AtCHX23基因的表達,Bar基因標記基因為篩選標記。
1.2.2 玉米的遺傳轉(zhuǎn)化及抗性植株的分子鑒定玉米幼胚的遺傳轉(zhuǎn)化參照劉允軍[13]的方法,通過凍融法將表達載體導入農(nóng)桿菌GV3101。在篩選培養(yǎng)基上添加雙丙胺膦篩選抗性苗,將獲得的抗性苗進行煉苗移栽。植物DNA提取按照改良后Saghai-Maroof等[14]提出的CTAB方法進行,以轉(zhuǎn)基因和野生型植株玉米葉片的全基因組DNA為模板,根據(jù)AtCHX23序列特異引物(上游引物:5'-CTACTATCTAACCCGACCCTTG-3';下游引物:5'-AAAGAAGCAAACCCAAAAAC-3')檢測轉(zhuǎn)基因株系。將通過PCR篩選出的其中2個陽性轉(zhuǎn)基因株系進行Southern blot試驗鑒定。玉米基因組DNA經(jīng)BamH I酶切后,電泳轉(zhuǎn)膜,利用標記試劑盒(Primer-a-gene Labeling System Promega,USA)和 α-32P-dCTP(上海生工生物工程有限公司)進行標記[15],整個試驗過程在浙江大學植物生理與生化重點實驗室完成。
轉(zhuǎn)基因植株的RNA提取以及RT-PCR檢測:取0.1 g新鮮玉米葉片,液氮充分研磨后,用Trizol(Invitrogen,USA)提取葉片總RNA,以O(shè)ligo(dT)為引物(北京天根生化科技有限公司),利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Invitrogen,USA)進行cDNA的合成后,按照上述基因組DNA的PCR檢測方法進行擴增。
1.2.3 鹽脅迫處理及玉米幼苗生理指標的測定 選取健康、大小、飽滿度一致的鄭58非轉(zhuǎn)基因玉米種子,用10 g/L次氯酸鈉溶液消毒20 min,清水洗凈后于室溫下清水浸種6 h,然后將其置于鋪有兩層濾紙的培養(yǎng)皿中,于培養(yǎng)箱中發(fā)芽,其間及時補充清水保持濕度。3 d后,挑選芽期生長狀況良、長勢一致、且PCR檢測陽的幼苗,轉(zhuǎn)移至150 mmol/L NaCl的Hoagland營養(yǎng)液中進行鹽脅迫處理[10],每天按此濃度澆灌。7 d后,取玉米葉片進行檢測。葉片可溶性糖(WSS)含量的測定采用蒽酮法;游離脯氨酸(Pro)含量的測定采用磺基水楊酸法;丙二醛(MDA)含量的測定采用硫代巴比妥酸(TBA)法[16]。每個分析樣本取10株進行測定,重復3次,取其平均值。
根據(jù)AtCHX23基因DNA序列設(shè)計引物,采用PCR方法從擬南芥基因組擴增2.6 kp DNA片段,連接到T載體,經(jīng)測序和Blast驗證,擴增片段確實為AtCHX23基因序列,采用XhoI和XbaI分別對TAtCHX23和 pGreen0229載體進行雙酶切,過夜連接。得到植物表達載體pGreen0229-35S-AtCHX23。測序結(jié)果顯示,AtCHX23基因正確插入CaMV35S啟動子和終止子之間。
取授粉后10~14 d的玉米穗進行剝胚,以大小為1.0~2.0 mm的幼胚作為外植體,通過農(nóng)桿菌介導法將AtCHX23基因?qū)雰?yōu)良自交系鄭58中,經(jīng)過雙丙胺膦(Bar基因3.0 mg/L)的篩選、愈傷組織分化、再生苗的生根和壯苗培養(yǎng)(圖1),共獲得56株具有雙丙胺膦抗性的T0代玉米再生植株。
圖1 玉米轉(zhuǎn)基因植株的再生Fig.1 Regeneration of transgenic maize plants
為了檢測再生玉米基因組中是否有AtCHX23基因的插入,以AtCHX23基因特異引物進行PCR擴增檢測,陽性植株擴增出與質(zhì)粒相同大小的片段,而受體對照植株未擴增出相應片段,可以初步證明外源基因已經(jīng)整合到玉米基因組中(圖2)。從圖2我們可以也看出PCR共檢測得到26株陽性植株,抗性植株陽性率為44.8%。3次重復結(jié)果一致。26株陽性植株是從6個不同的抗性愈傷組織塊得到的,因此我們可以初步認為有6個獨立的T0代陽性轉(zhuǎn)基因株系,選取其中2個長勢比較好株系,命名為Ov1和Ov3,用于下一步分子檢測和抗性鑒定試驗。
圖2 T0代轉(zhuǎn)基因抗性植株的PCR檢測Fig.2 PCR analysis of T0 transgenic maize plants
為了進一步確定外源基因的整合情況,對PCR陽性株系Ov1和Ov3植株進行Southern blot分析,提取葉片基因組DNA用BamH I酶切后,以Bar基因片段為探針進行雜交,雜交結(jié)果顯示,這2個PCR陽性株系可以檢測到雜交條帶(圖3A),仍表現(xiàn)為陽性,并且每個株系雜交條帶只有一條,位置不同,而野生型(WT)中沒有檢測到雜交信號,表明Ov1和Ov3為2個獨立的陽性轉(zhuǎn)基因株系,在這2個株系中AtCHX23基因以單拷貝形式成功整合到玉米基因組。
提取Ov1和Ov3株系葉片的總RNA,利用RTPCR方法分析轉(zhuǎn)基因株系中外源基因AtCHX23的轉(zhuǎn)錄情況。結(jié)果顯示,以這2個轉(zhuǎn)化植株的cDNA為模版,以AtCHX23基因的特異引物進行PCR擴增均有陽性條帶出現(xiàn),并且這2個轉(zhuǎn)基因玉米株系中AtCHX23基因的表達水平比較高,而對照株系沒有擴增出相應條帶,表明在這2個陽性株系中外源基因AtCHX23過量表達(圖3B)。
圖3 2個玉米轉(zhuǎn)基因株系的Southern blot(A)和RT-PCR(B)分析Fig.3 Analysis of two transgenicmaize lines by Southern blot(A)and RT-PCR(B)
取轉(zhuǎn)AtCHX23基因的Ov1和Ov3 2個株系的T3代植株進行耐鹽性分析,首先對其芽苗進行PCR檢測,轉(zhuǎn)基因苗全部為陽性,說明T3代轉(zhuǎn)基因株系已經(jīng)純合,部分PCR檢測結(jié)果如圖4A。鹽脅迫處理3 d后,轉(zhuǎn)基因玉米株系和對照株系的生長差異較小;但隨著鹽脅迫處理時間的增長,處理7 d后,Ov1和Ov3這2個轉(zhuǎn)基因玉米株系已明顯優(yōu)于野生型玉米(圖4B)。野生型植株大部分葉子卷曲、葉尖變黃,嚴重的植株全部變黃卷曲死亡;鹽脅迫下,轉(zhuǎn)基因植株也受到一定影響,部分葉尖出現(xiàn)卷曲變黃,但2個轉(zhuǎn)基因株系Ov1和Ov3長勢優(yōu)于野生型。另外,在無鹽脅迫的狀態(tài)下,轉(zhuǎn)AtCHX23基因的2個株系Ov1、Ov3和野生型植株之間沒有明顯的生長差異(圖4C)。由此可見,AtCHX23基因的轉(zhuǎn)入能夠提高玉米苗期的耐鹽性。
為了驗證AtCHX23基因的過量表達是否影響玉米中可溶性糖、脯氨酸和丙二醛含量,對處理10 d野生型和2個轉(zhuǎn)基因株系(Ov1和Ov3)地上部可溶性糖、脯氨酸和丙二醛含量進行檢測。非鹽脅迫條件下,野生型和2個轉(zhuǎn)基因株系中可溶性糖、脯氨酸和丙二醛的含量基本無顯著差異,但在150 mmol/L NaCl處理下,轉(zhuǎn)基因玉米株系和野生型的可溶性糖和脯氨酸含量都有增長趨勢,其中2個轉(zhuǎn)基因株系中可溶性糖含量分別達到46.9μg/g和44.5μg/g,分別是野生型的1.26和1.28倍,提高了27.9%和26.1%;2個轉(zhuǎn)基因株系中脯氨酸含量與野生型相比,分別提高了33.5%和34.6%(圖5);但2個轉(zhuǎn)基因株系中丙二醛含量低于野生型,野生型株系丙二醛含量為12.66μmol/g,Ov1和Ov3 2個轉(zhuǎn)基因株系丙二醛含量分別為7.90μmol/g和8.38 μmol/g,2個轉(zhuǎn)基因株系中丙二醛含量比野生型分別減少了37.6%和33.8%(圖5)。
圖4 轉(zhuǎn)基因玉米和野生型幼苗在NaCl處理7 d后的植株表現(xiàn)特征Fig.4 Phenotypes of transgenic and wild-typemaize seed lings under NaCl treatment for seven days
圖5 野生型和轉(zhuǎn)基因株系在0和150 mmol/L NaCl處理下可溶性糖、脯氨酸和丙二醛的含量Fig.5 Soluble sugar,protein and methane dicarboxylic aldehyde contents of maize seedlings of wild type and two transgenic lines under 0 and 150 mmol/L NaCl treatments
近年來,用于轉(zhuǎn)基因玉米遺傳轉(zhuǎn)化方法很多:有超聲波處理花粉介導法[10]、基因槍法[17-18]和農(nóng)桿菌介導方法[19-21]等。農(nóng)桿菌作為一種天然的植物基因轉(zhuǎn)化系統(tǒng),具有能轉(zhuǎn)移較大的DNA片段、整合的外源基因重排少且多以單或寡拷貝整合并能穩(wěn)定遺傳等優(yōu)點,在玉米遺傳轉(zhuǎn)化中應用最多。孫傳波等[22-23]通過農(nóng)桿菌介導法將耐鹽基因HAL1轉(zhuǎn)入到玉米自交系H99中,獲得再生植株。Zhang等[6]采用農(nóng)桿菌介導法將TsCBF1基因?qū)胗衩字?,并且在其后代中表達。Assem[24]將NPK1基因與Bar基因結(jié)合后用農(nóng)桿菌介導法轉(zhuǎn)化到玉米自交系中。Wang[25]利用農(nóng)桿菌介導法在轉(zhuǎn)基因玉米中進行ZmPLC1基因正、反方向表達,并由Southern雜交證實ZmPLC1基因已整合到玉米基因組中。這些研究說明應用農(nóng)桿菌介導方法轉(zhuǎn)化外源DNA可以得到玉米抗旱新資源,是一種可行、有效的抗旱育種方法。我們通過河南省玉米生物學重點實驗室建立并優(yōu)化的農(nóng)桿菌介導的方法將擬南芥AtCHX23基因?qū)豚崋?58的優(yōu)良親本自交系材料鄭58中,經(jīng)過共培養(yǎng)、恢復培養(yǎng)和3次除草劑篩選后,共獲得轉(zhuǎn)化植株56株,通過PCR初步鑒定,其中26株呈陽性,抗性植株陽性率為44.8%;通過對轉(zhuǎn)基因株系進行分子鑒定、轉(zhuǎn)錄表達分析及 Southern blot鑒定,獲得了以單拷貝的形式成功插入到玉米基因組中且AtCHX23基因過量表達的2個玉米株系,證明外源基因AtCHX23已經(jīng)整合到鄭單958的優(yōu)良親本自交系材料鄭58中。這些研究結(jié)果表明利用基因工程向栽培植物導入外源目的基因,已發(fā)展成為改良玉米耐鹽性的新途徑。
關(guān)于AtCHX23耐鹽性研究,在擬南芥和煙草方面已經(jīng)得到證明,超表達AtCHX23的擬南芥和煙草植物,抗鹽性均比對照提高20%[12]。本試驗結(jié)果表明過量表達AtCHX23基因能提高轉(zhuǎn)基因玉米的耐鹽性。前人研究結(jié)果表明當NaCl濃度為150 mmol/L時,鄭58幼苗植株能表現(xiàn)出受害癥狀[10]。因此本試驗選擇150 mmol/L作為玉米苗期耐鹽處理濃度。在本研究中,正常情況下,轉(zhuǎn)基因株系和野生型間生長無明顯差異,但在鹽脅迫下,玉米幼苗受到一定的影響,包括轉(zhuǎn)基因植株,部分葉尖出現(xiàn)卷曲變黃,但與野生型相比,轉(zhuǎn)基因株系生長優(yōu)勢明顯。由此可見,AtCHX23基因的轉(zhuǎn)入能夠提高轉(zhuǎn)基因玉米的耐鹽性。
研究結(jié)果表明:玉米幼苗在鹽脅迫下,無論生長發(fā)育狀況和生理生化指標都受到很大影響[26]。本試驗在正常情況下,非轉(zhuǎn)基因和轉(zhuǎn)基因株系中可溶性糖、脯氨酸和丙二醛的含量無顯著差異;鹽脅迫下,2個轉(zhuǎn)基因玉米株系的可溶性糖、脯氨酸含量高于非轉(zhuǎn)基因玉米,轉(zhuǎn)耐鹽基因玉米株系Ov1和Ov3的可溶性糖含量為野生型的1.26和1.28倍,而相應地2個轉(zhuǎn)基因株系脯氨酸含量為野生型的1.33倍和1.35倍;轉(zhuǎn)基因玉米株系可溶性糖、脯氨酸含量的提高可能因為AtCHX23基因的過量表達可以起到穩(wěn)定細胞膜和原生質(zhì)作用所致[27],是轉(zhuǎn)基因玉米適應鹽脅迫下的一種生理調(diào)控防御反應機制,這與Lutts等[28]的研究結(jié)果是相對應的;與可溶性糖、脯氨酸含量變化不同的是:轉(zhuǎn)基因玉米株系Ov1和Ov3地上部丙二醛含量均低于非轉(zhuǎn)基因?qū)φ?,其原因可能是由于AtCHX23基因的大量表達降低了轉(zhuǎn)基因植物在鹽脅迫下膜脂的抗氧化能力,提高了植物組織的保護能力。本試驗證明過量表達AtCHX23基因能提高轉(zhuǎn)基因玉米苗期的耐鹽性,而關(guān)于AtCHX23基因在玉米鹽脅迫中的表達調(diào)控功能有待進一步研究。
[1] MUNNS R,TESTER M.Mechanisms of salinity tolerance[J].Annual Review of Plant Biology,2008,59:651-681.
[2] ZHANG J F,F(xiàn)ANG Y F,MAKESCHIN F,et al.Agroforestry and its application in amelioration of saline soils in Eastern China Coastal Region[J].Forestry Studies in China,2004,6(2):27-33.
[3] 黃 銅,莫正海,李 卉,等.延長觀賞植物花期的技術(shù)措施[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學,2012,40(10):168-170.
[4] 洪學欽,金 剛,代建國,等.塔胞藻基因工程的抗生素篩選標記[J].江蘇農(nóng)業(yè)科學,2012,40(8):49-51.
[5] YAMAGUCHIT,BLNM W E.Developing salt-tolerant crop plants:challenges and opportunities[J].Trends Plant Sci,2005,10(12):615-620.
[6] ZHANG S J,LIN,GAO F,et al.Over-expression ofTsCBF1gene confers improved drought tolerance in transgenic maize[J].Molecular Breeding,2010,26(3):455-465.
[7] LIB,LIN,DUAN X G,et al.Generation of marker-free transgenicmaize with improved salt tolerance using the FLP/FRT recombination system[J].Journal of Biotechnology,2010,145:206-213.
[8] CHEN M,CHEN Q J,NIU X G,et al.Expression ofOsNHX1gene in maize confers salt tolerance and promotes plant growth in the field[J].P1ant Soil Environ,2007,53(11):490-498.
[9] 楊愛芳,張可煒,尹小燕,等.轉(zhuǎn)基因耐鹽玉米自交系的農(nóng)藝性狀及雜種優(yōu)勢表現(xiàn) 的分析[J].中國農(nóng)業(yè)科學,2007,40(12):2895-2902.
[10] 任小燕,杜建中,孫 毅.轉(zhuǎn)AhCMO基因玉米后代的獲得及耐鹽性鑒定[J].分子植物育種,2013,11(3):332-338.
[11] 王 奕,任 賢,于志晶,等.農(nóng)桿菌介導法將DREB2A基因轉(zhuǎn)入玉米[J].分子植物育種,2013,11(1):48-52.
[12] SONG C P,GUO Y,QIU Q S,et al.A probable Na+/K+/H+exchanger on the chloroplast envelope functions in pH homeostasis and chloroplast development inArabidopsis thaliana[J].PNAS,2004,101(27):10211-10216.
[13] 劉允軍.人工改造的cry1Ac、cry1Ie基因在大腸桿菌、轉(zhuǎn)基因煙草和玉米中的表達[M].北京:中國農(nóng)業(yè)大學,2004.
[14] SAGHAI-MAROOFM A,SOLIMAN K M,JORGENSEN R A,et al.Ribosomal DNA spacer-length polymorphisms in Barley:Mendelian inheritance,chromosomal location and population dynamics[J].Proceedings of the National Academy of Science,1984,81(24):8014-8018.
[15] YUE RQ,WANG X F,CHEN JY,et al.A rice stromal processing peptidase regulates chloroplast and root development[J].Plant Cell Physiol,2010,51(3):475-485.
[16] 楊 升,張華新,張 麗.植物耐鹽生理生化指標及耐鹽植物篩選綜述[J].西北林學院學報,2010,25(3):59-65.
[17] GORDON-KAMM W J,SPENCER TM,MANGANO M L,et al.Transformation of maize cells and regeneration of fertile transgenic plants[J].Plant Cell,1990,2(7):603-618.
[18] WAN Y,WIDHOLM JM,LEMAUX P G.Type I callus as a bombardment target for generating fertile transgenic maize(Zea maysL.)[J].Planta,1995,196(1):7-14.
[19] ISHIDA Y,SAITO H,OHTA S,et al.High eficiency transforma-tion of maize(Zea maysL.)mediated byAgrobacterium tumefaciens[J].Nat Biotechno1,1996,14(6):745-750.
[20] ZHAO Z Y,GUW,CAIT,et al.High throughputgenetic transformation mediated byAgrobacterium tumefaciensin maize[J].Mol Breeding,2001,8(4):323-333.
[21] FRAME B R,SHOU H,CHIKWAMBA R K,et al.Agrobacterium tumefaciens-mediated transformation of maize embryos using a standard binary vector system[J].Plant Physio1,2002,129(1):13-22.
[22] 孫傳波,曲文利,姜志磊,等.農(nóng)桿菌介導向玉米莖尖導入HAL1基因的初步研究[J].玉米科學,2009,17(6):32-34.
[23] 孫傳波,郭 嘉,陶 蕊,等.農(nóng)桿菌介導法將耐鹽基因HAL1轉(zhuǎn)入玉米自交系H99的研究[J].分子植物育種,2011(9):1162-1166.
[24] ASSEM SK.Genetic transformation of the nicotiana protein kinase(NPK1)gene confers osmotic tolerance in Egyptian maize[J].Australian Journal of Basic and Applied Sciences,2009,3(2):828-835.
[25] WANG CR.Enhaneed expression of phospholipase C1(ZmPCL)improves drought tolerance in transgenicmaize[J].Planta,2007,227(5):1127-1140.
[26] 王麗燕,趙可夫.玉米幼苗對鹽脅迫的生理響應[J].作物學報,2005,31(2):264-266.
[27] 盧靜君,李 強,多立安.鹽脅迫對金牌美達麗和獵狗種子萌發(fā)的影響[J].植物研究,2002,22(3):328-332.
[28] LUTTSS,KINET JM,BOUHARMONT J.Effects of salt stress on growth,mineral nutrition and proline accumulation in relation to osmotic adjustment in rice(Oryza sativeL.)cultivars deffering in salinity resistance[J].Plant Growth Regul,1996(19):207-218.