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        腸內(nèi)免疫微生態(tài)營(yíng)養(yǎng)對(duì)重癥急性胰腺炎大鼠腸黏膜屏障功能的保護(hù)作用

        2014-09-26 03:34:08康利民潘明新王康華
        重慶醫(yī)學(xué) 2014年6期

        康利民,潘明新,高 毅,王康華,洪 合

        (南方醫(yī)科大學(xué)珠江醫(yī)院肝膽二科,廣州510280)

        重癥急性胰腺炎(server acute pancreatitis,SAP)的死亡高峰主要是壞死的胰腺組織引起的繼發(fā)感染。繼發(fā)感染主要源于SAP腸黏膜屏障破壞引起的細(xì)菌易位[1]。動(dòng)物及臨床研究已經(jīng)證實(shí),腸內(nèi)營(yíng)養(yǎng)(enteral nutrition,EN)支持對(duì)SAP腸屏障功能的保護(hù)作用[2-3]。腸內(nèi)免疫微生態(tài)營(yíng)養(yǎng)(ecoimmunonutrition,EIN)支持是近年來(lái)發(fā)展起來(lái)的一種新方式,本實(shí)驗(yàn)探討EIN對(duì)SAP大鼠腸黏膜屏障的保護(hù)作用,現(xiàn)報(bào)道如下。

        1 材料與方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 清潔級(jí)健康雄性SD大鼠60只(購(gòu)自南方醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心),體質(zhì)量260~300g,分為對(duì)照組、EN組和EIN組,每組20只。采用逆行胰膽管緩慢注入4%牛黃膽酸鈉1mL/kg體質(zhì)量的方法制備SAP模型,對(duì)照組開腹后翻動(dòng)胰腺數(shù)次。SAP模型大鼠另選取空腸起始部約2 cm以下行空腸造口置入造瘺管并經(jīng)皮下隧道引出體外。

        1.2 方法

        1.2.1 方法 EN組:待大鼠清醒后4h,用少量等滲鹽水沖洗腸管,6h起腸道滴注腸內(nèi)營(yíng)養(yǎng)乳劑(華瑞公司生產(chǎn)),各組大鼠能量攝入126kJ·kg-1·d-1。EIN組:在EN組腸內(nèi)營(yíng)養(yǎng)乳劑中加入谷氨酰胺(L-Gln,成都藥業(yè)股份有限公司)0.4g·kg-1·d-1、精氨酸(L-Arg,上海信誼制藥廠)0.25g·kg-1·d-1、三聯(lián)活菌制劑(雙歧桿菌、嗜酸乳桿菌及腸球菌,上海信誼制藥廠)109CFU/d。對(duì)照組正常飲食、飲水。3組大鼠7d后經(jīng)腹腔麻醉處死,心臟取血備用。取胰腺、空腸甲醛及戊二醛固定保存?zhèn)溆谩?/p>

        1.2.2 檢測(cè)指標(biāo)及方法 血清淀粉酶采用全自動(dòng)生化儀測(cè)定;血漿內(nèi)毒素測(cè)定采用動(dòng)態(tài)比濁法,內(nèi)毒素檢測(cè)用水購(gòu)自天津一瑞生物工程有限公司;D-乳酸采用酶學(xué)分光光度法檢測(cè),D-乳酸標(biāo)準(zhǔn)液及右旋乳酸脫氫酶(D-LDH)購(gòu)自Sigma公司;二胺氧化酶(DAO)采用活性比色法測(cè)定,檢測(cè)試劑盒購(gòu)自上海杰美基因醫(yī)藥有限公司;取胰腺及距幽門10cm處小腸約2 cm,常規(guī)甲醛固定光鏡病理檢查,測(cè)20個(gè)小腸絨毛的絨毛高度并計(jì)算小腸黏膜厚度。參照文獻(xiàn)[4]將小腸黏膜損傷分為6級(jí),比較3組小腸病理學(xué)評(píng)分;另取約2cm小腸,2.5%戊二醛溶液固定并乙醇脫水,環(huán)氧樹脂包埋,亞甲藍(lán)染色光鏡下定位后,醋酸鈾、檸檬酸鉛染色,JEM-200EX(JEOL公司)透射電鏡下觀察并攝片。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析,計(jì)量資料以表示,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 動(dòng)物存活情況 實(shí)驗(yàn)過(guò)程中,EN組有3只大鼠分別于術(shù)后45min、16h、4d死亡,EIN組1只大鼠于術(shù)后3d死亡,以上4只大鼠實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)未進(jìn)入統(tǒng)計(jì)。

        2.2 血清淀粉酶、內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平變化EN組、EIN組血清淀粉酶、內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平均明顯高于對(duì)照組(P<0.01);EIN組內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平較EN組明顯降低(P<0.01或P<0.05),兩組血清淀粉酶無(wú)明顯差異,見表1。

        2.3 胰腺和小腸組織病理學(xué)變化 對(duì)照組胰腺小葉結(jié)構(gòu)完整無(wú)明顯改變;EN組胰腺組織出血、壞死,腺體結(jié)構(gòu)消失,炎性細(xì)胞浸潤(rùn)和胰周組織脂肪壞死;EIN組可見胰腺小葉結(jié)構(gòu)欠完整,輕度水腫、出血,組織間隙略增寬,少量炎性細(xì)胞浸潤(rùn)(圖1);對(duì)照組空腸黏膜完整,空腸絨毛無(wú)水腫,排列整齊;EN組空腸黏膜上皮糜爛,大片壞死,脫落及缺損,大量炎癥細(xì)胞浸潤(rùn),絨毛樣結(jié)構(gòu)減少;EIN組空腸黏膜表現(xiàn)輕度水腫,片狀壞死,絨毛部分脫落及倒伏,見圖2。

        表1 血清淀粉酶、內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平比較±s)

        表1 血清淀粉酶、內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平比較±s)

        a:P<0.05,與對(duì)照組比較;b:P<0.05,c:P<0.01,與 EN 組比較。

        組別 n 淀粉酶(IU/L)內(nèi)毒素(pg/L)D-乳酸(μg/mL)DAO(μg/mL)150±35 7.91±2.13 3.94±1.17 14.27±2.53 EN組 17 1 629±91a41.45±3.27a11.35±1.34a81.27±3.46a EIN組 19 1 521±87a18.57±2.51ab 6.64±1.47ab 21.67±6.72對(duì)照組 20 ac

        圖1 各組大鼠胰腺病理學(xué)變化(HE×100)

        圖2 各組大鼠腸道病理學(xué)變化(HE×100)

        2.4 小腸黏膜厚度、絨毛高度及腸上皮損傷指數(shù)的變化 EN組、EIN組大鼠小腸黏膜厚度和絨毛高度均較對(duì)照組明顯降低(P<0.01),小腸上皮損傷指數(shù)較對(duì)照組明顯增加(P<0.01);EIN組小腸黏膜厚度和絨毛高度較EN組顯著增加(P<0.05或P<0.01),而小腸上皮損傷指數(shù)較EN組明顯減低(P<0.01),見表2。

        表2 小腸黏膜厚度、絨毛高度計(jì)腸上皮損傷指數(shù)比較±s)

        表2 小腸黏膜厚度、絨毛高度計(jì)腸上皮損傷指數(shù)比較±s)

        a:P<0.05,與對(duì)照組比較;b:P<0.05,c:P<0.01,與 EN 組比較。

        組別 n 黏膜厚度(μm) 絨毛高度(μm)20 669.78±63.51 37.29±5.92 0.82±0.31 EN組 17 369.37±28.52a16.43±4.73a 3.95±0.74a EIN組 19 486.30±37.28ab 21.47±3.60ac 2.81±0.36腸上皮損傷指數(shù)對(duì)照組ab

        圖3 各組大鼠腸道電鏡變化(×10 000)

        2.5 小腸組織電鏡結(jié)構(gòu)變化 電鏡觀察下對(duì)照組小腸黏膜上皮細(xì)胞表面微絨毛排列整齊,柱狀上皮細(xì)胞結(jié)構(gòu)完整,細(xì)胞質(zhì)內(nèi)細(xì)胞器豐富,結(jié)構(gòu)未見異常,固有層腺體結(jié)構(gòu)及各種細(xì)胞結(jié)構(gòu)正常;EN組小腸黏膜線粒體高度腫脹,嵴缺失,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腫脹,上皮細(xì)胞微絨毛稀疏、部分缺如,細(xì)胞萎縮,大量細(xì)胞核濃縮,染色質(zhì)邊聚;EIN組小腸黏膜上皮細(xì)胞表面微絨毛排列有輕度線粒體、內(nèi)質(zhì)網(wǎng)腫脹,上皮細(xì)胞微絨毛排列略不規(guī)整,見圖3。

        3 討 論

        近年來(lái)的研究表明,腸道不僅是消化吸收的重要場(chǎng)所,同時(shí)也是急性應(yīng)激反應(yīng)的中心器官及多器官功能衰竭的始動(dòng)器管[5]。腸道作為體內(nèi)最大的細(xì)菌和內(nèi)毒素庫(kù),腸黏膜屏障功能的完整性對(duì)抵抗腸源性細(xì)菌易位具有重要的作用。腸道細(xì)菌易位導(dǎo)致的胰腺壞死繼發(fā)感染是SAP的主要死因之一。所以探索維持腸道黏膜結(jié)構(gòu)和功能的有效方法是目前SAP研究的熱點(diǎn)之一。

        腸黏膜屏障主要由機(jī)械屏障、免疫屏障、生物屏障及化學(xué)屏障4部分組成,而腸黏膜通透性是評(píng)價(jià)腸黏膜屏障功能的重要指標(biāo)。劉中輝等[6]研究發(fā)現(xiàn),SAP早期的腸黏膜破壞導(dǎo)致腸道通透性明顯增加。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組比較,EN及EIN組小腸黏膜厚度、絨毛高度及腸上皮損傷指數(shù)均有差異,亦證明SAP大鼠小腸存在腸道黏膜的損傷,然EIN組大鼠小腸的空腸光鏡變化、病理學(xué)評(píng)分及電鏡超微結(jié)構(gòu)改變均較EN組輕微,提示應(yīng)用腸內(nèi)免疫微生態(tài)營(yíng)養(yǎng)能較有效保護(hù)腸道,維護(hù)腸道黏膜屏障的完整性。

        EIN是在普通EN的基礎(chǔ)上添加將谷氨酰胺、精氨酸、益生菌等有免疫促進(jìn)及調(diào)節(jié)腸道菌群失調(diào)的特殊營(yíng)養(yǎng)素。動(dòng)物及臨床實(shí)驗(yàn)表明,EIN可通過(guò)不同機(jī)制協(xié)助保護(hù)腸黏膜屏障[7],抑制腸道菌群失調(diào),減輕全身炎性反應(yīng),提高機(jī)體免疫,降低SAP的感染率[8-10]。D-乳酸是細(xì)菌發(fā)酵的代謝產(chǎn)物,當(dāng)腸道通透性增加時(shí)腸道中細(xì)菌產(chǎn)生大量D-乳酸通過(guò)受損黏膜入血使血漿D-乳酸水平升高,故檢測(cè)血漿D-乳酸水平可及時(shí)反映腸壁通透性變化[11]。DAO是腸黏膜上層絨毛細(xì)胞胞質(zhì)中具有高度活性的細(xì)胞內(nèi)酶,在腸黏膜細(xì)胞受損、壞死后該酶釋放入血或隨壞死脫落的腸黏膜細(xì)胞進(jìn)入腸腔內(nèi),可通過(guò)測(cè)定其在外周血中變化,作為反映腸黏膜完整性相對(duì)穩(wěn)定的生化指標(biāo)[12]。

        本實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn),EN組及EIN組血清內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平均增高,說(shuō)明SAP時(shí)存在內(nèi)毒素血癥、腸道通透性增高。而EIN組血清內(nèi)毒素、D-乳酸及DAO水平明顯低于EN組(P<0.01或P<0.05),提示應(yīng)用EIN能有效保護(hù)腸道,減少腸道的通透性,維護(hù)腸黏膜屏障的完整性,降低SAP大鼠內(nèi)毒素血癥。

        綜上所述,本實(shí)驗(yàn)通過(guò)多角度、多指標(biāo)的研究,論證了EIN對(duì)SAP大鼠具有降低空腸的通透性,減少菌群移位,有助于對(duì)腸屏障功能的保護(hù)作用。當(dāng)然其具體作用方式及機(jī)制還需進(jìn)一步深入地研究。

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