王洪峰,董 理,王婷婷(.長春中醫(yī)藥大學(xué)研究生學(xué)院,吉林 長春 307;.長春中醫(yī)藥大學(xué)針灸推拿學(xué)院,吉林 長春 307)
重癥肌無力(myasthenia gravis,MG)是以部分或全身骨骼肌無力和極易疲勞為主要臨床表現(xiàn)的自身免疫性疾病,其病情易反復(fù)發(fā)作,嚴(yán)重影響患者的身體健康和生活質(zhì)量。臨床治療中,一直以溴吡斯的明和免疫抑制劑為主要治療MG的藥物,但存在治療時(shí)間較長、副作用較大等問題[1],故尋找新的治療手段勢在必行。中醫(yī)學(xué)認(rèn)為:MG屬于“痿證”的范疇,患者以脾氣虛弱、腎陽不足為主要病機(jī),運(yùn)用中醫(yī)的針灸[2-3]、中藥[4-5]等療法治療MG具有良好的臨床療效,但由于相關(guān)的作用機(jī)制研究較少,阻礙了中醫(yī)藥療法的推廣應(yīng)用。大量的研究[6-10]證明:乙酰膽堿受體抗體(acetycholine receptor antibody,AchR-Ab)是MG的主要致病抗體,干擾素γ(interferon-gamma,IFN-γ)具有促進(jìn)AchR-Ab表達(dá)的作用,二者在MG的發(fā)病過程中具有重要的作用。本文作者針對MG的主要病機(jī),采用以 “溫陽補(bǔ)氣”為主要治則的針灸療法治療MG,取得了良好的臨床療效。為進(jìn)一步研究“溫陽補(bǔ)氣”針法治療MG的作用機(jī)制,本研究采用國際公認(rèn)的免疫接種法建立實(shí)驗(yàn)性自身免疫性重癥肌無力(experimental autoimmune myasthenia gravis,EAMG)大鼠動(dòng)物模型,觀察該針法對EAMG大鼠血清中AchR-Ab和IFN-γ表達(dá)水平的影響,以期為針灸治療MG提供客觀的實(shí)驗(yàn)依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 SPF級Lewis大鼠80只,雌性,6~8周齡,平均體質(zhì)量(162.2±4.7)g,由上海斯萊克實(shí)驗(yàn)動(dòng)物有限責(zé)任公司提供,合格證號碼:SCXK(滬)2007-0005,檢疫后送至長春中醫(yī)藥大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心,標(biāo)準(zhǔn)大鼠顆粒飼料喂養(yǎng)。
1.2 主要試劑和儀器 AchRα1 129-145多肽片段(美國Sigma公司),大鼠AchR-Ab ELISA檢測試劑盒(上海研輝生物科技有限公司),大鼠IFN-γ ELISA檢測試劑盒(上海研輝生物科技有限公司),溴吡斯的明(60mg/片,上海三維制藥有限公司);Σ960型全自動(dòng)酶標(biāo)儀(美國Metertech公司),T-500型電子天平(美國雙杰兄弟集團(tuán)有限公司),GS-15R低溫高速離心機(jī)(美國Beckman公司),微量加樣器(日本 Nichiryo公司),0.25×25mm毫針(蘇州醫(yī)療用品廠有限公司),艾絨(南陽綠瑩艾草生物制品有限公司)。
1.3 大鼠EAMG模型建立方法 選取SPF級Lewis大鼠60只,采用免疫接種法建立EAMG大鼠動(dòng)物模型。將AchRα1 129-145多肽片段按照1∶2比例與弗氏完全佐劑(CFA)完全乳化,配比按照200μL溶液內(nèi)含有50μg片段,不足部分用pH 7.4的PBS液定容至20mL,充分混勻制成免疫乳劑,取一滴乳劑滴入水中呈現(xiàn)球形而不分散為乳化好的標(biāo)志。首次免疫接種時(shí),將上述抗原乳劑以300μL/只(含AchRα1 129-145 75μg)多點(diǎn)注射于大鼠四只足墊部、尾根部和背部。在首次免疫后第4和8周,分別進(jìn)行強(qiáng)化免疫接種,將AchRα1 129-145多肽片段以1∶2比例與弗氏不完全佐劑(IFA)完全乳化,配比按照200μL溶液含有50μg片段,不足部分用pH 7.4的PBS液定容至20mL,以200μL/只(含 AchRα1 129-145 50μg)多點(diǎn)注射于大鼠四只足墊部、尾根部和背部。以Lennon分級評分≥1分,同時(shí)AchR-Ab為陽性作為EAMG大鼠模型造模成功標(biāo)準(zhǔn)。
1.4 動(dòng)物分組及治療方法 選取建模成功的EAMG大鼠30只,隨機(jī)分為針灸治療組、藥物對照組和模型對照組,每組10只,選取同期購進(jìn)未建模的SPF級Lewis大鼠10只設(shè)為空白對照組。針灸治療組大鼠予以 “溫陽補(bǔ)氣”針法治療,手三里(雙)直刺5mm,足三里(雙)直刺6mm,脾俞(雙)直刺6mm,腎俞(雙)直刺6mm,平補(bǔ)平瀉,針上加灸,30min·次-1,1次·d-1,7d為一療程,療程間休息1d,連續(xù)治療2個(gè)療程。藥物對照組大鼠予以溴吡斯的明灌胃治療,18.5mg·kg-1·d-1,連續(xù)治療15d。模型對照組和空白對照組大鼠不予特殊處置,同等條件下飼養(yǎng),每日抓取1次,觀察一般情況。
1.5 檢測指標(biāo)及方法 大鼠血清AchR-Ab和IFN-γ表達(dá)水平的檢測:治療前后24h抽取大鼠尾根靜脈血,采用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測定大鼠血清中AchR-Ab和IFN-γ的表達(dá)水平,具體方法按上海研輝生物科技有限公司說明書操作。
1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 采用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理。大鼠血清中AchR-Ab和IFN-γ表達(dá)水平以±s表示,組間比較采用配對t檢驗(yàn)。
2.1 大鼠EAMG模型建模情況 從首次免疫接種后,造模大鼠約在第4周之后逐漸開始出現(xiàn)癥狀,如活動(dòng)減少、動(dòng)作減緩、掙扎力量減弱、叫聲降低和毛發(fā)變暗等,在第2~3次強(qiáng)化免疫接種之后,上述癥狀逐漸加重。在造模過程中,共死亡大鼠3只,均因MG癥狀過重死亡。在首次免疫接種后的第9周,對存活的57只大鼠進(jìn)行Lennon癥狀分級評分法和血清AchR-Ab表達(dá)水平檢測,共有31只大鼠Lennon分級評分≥1分,且AchR-Ab檢測為陽性,成模率為51.7%。
2.2 各組大鼠血清AchR-Ab表達(dá)水平 治療前,與空白對照組比較,針灸治療組、藥物對照組和模型對照組大鼠血清AchR-Ab表達(dá)水平明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。治療后,與模型對照組比較,針灸治療組、藥物對照組大鼠血清AchR-Ab表達(dá)水平明顯降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05);治療后針灸治療組和藥物對照組與治療前比較,差異同樣有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05)。治療后針灸治療組與藥物對照組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表1。
表1 各組大鼠血清AchR-Ab的表達(dá)水平Tab.1 Serum AchR-Ab expression levels of rats in various groups [n=10,±s,ρB/(ng·L-1)]
表1 各組大鼠血清AchR-Ab的表達(dá)水平Tab.1 Serum AchR-Ab expression levels of rats in various groups [n=10,±s,ρB/(ng·L-1)]
* P<0.01 vs blank control group;△P<0.05 vs model control group;#P<0.05 vs before treatment.
Group AchR-Ab Before treatment After treatment Blank control 0.04±0.01 0.04±0.01 Model control 0.30±0.09* 0.33±0.10*Drug control 0.29±0.08* 0.24±0.11△#Acupuncture treatment 0.28±0.09* 0.22±0.12△#
2.3 各組大鼠血清IFN-γ表達(dá)水平 治療前,與空白對照組比較,針灸治療組、藥物對照組和模型對照組大鼠血清IFN-γ表達(dá)水平明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。治療后,與模型對照組比較,針灸治療組、藥物對照組大鼠血清IFN-γ表達(dá)水平明顯降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01);治療后針灸治療組和藥物對照組與治療前比較,差異同樣有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。治療后針灸治療組與藥物對照組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。見表2。
表2 各組大鼠血清IFN-γ的表達(dá)水平Tab.2 Serum IFN-γexpression levels of rats in various groups [n=10,±s,ρB/(ng·L-1)]
表2 各組大鼠血清IFN-γ的表達(dá)水平Tab.2 Serum IFN-γexpression levels of rats in various groups [n=10,±s,ρB/(ng·L-1)]
* P<0.01 vs blank control group;△P<0.01 vs model control group;#P<0.01 vs before treatment.
Group IFN-γ Before treatment After treatment Blank control 20.67±0.98 20.47±1.37 Model control 220.65±2.61* 221.68±2.50*Drug control 221.39±2.87* 55.8±4.21△#Acupuncture treatment 221.07±2.74* 52.38±3.06△#
MG以局部或全身橫紋肌在活動(dòng)時(shí)易于疲勞無力、經(jīng)休息或用抗膽堿酯酶藥物后可以緩解為主要臨床表現(xiàn)。在MG患者中,AchR-Ab與神經(jīng)肌肉接頭處(neuromuscular junction,NMJ)突出后膜的乙酰膽堿受體(acetylcholine receptor,AchR)特異性結(jié)合,加速AchR的降解,導(dǎo)致突出后膜上AchR數(shù)量減少,阻礙了神經(jīng)電信號的傳導(dǎo),產(chǎn)生肌無力癥狀。臨床研究[11-12]發(fā)現(xiàn):有85%~90%的全身型MG患者血清中可檢測出AchR-Ab,伴有胸腺腫瘤的 MG患者均可檢測出AchR-Ab,純眼肌型MG患者僅50%左右可檢測出AchR-Ab,MG病情的嚴(yán)重程度與AchR-ab滴度相關(guān)性不大,但與其活性關(guān)系密切[13]。IFN-γ是Th1類細(xì)胞因子,具有激活巨噬細(xì)胞、參與B細(xì)胞免疫應(yīng)答等多種免疫調(diào)節(jié)功能,在MG的發(fā)病過程中具有重要的作用[14]。國紅等[15]研究發(fā)現(xiàn):MG患者外周血單個(gè)核細(xì)胞中IFN-γ表達(dá)明顯高于健康對照者,尤其以急性期MG患者更為明顯,說明IFN-γ可能作為效應(yīng)因子參與了 MG的發(fā)病過程。王云甫等[16-18]在動(dòng)物實(shí)驗(yàn)研究中發(fā)現(xiàn):EAMG大鼠T淋巴細(xì)胞IFN-γ的分泌及其表面IFN-γ受體的表達(dá)明顯升高,證明IFN-γ和IFN-γ受體的異常表達(dá)與MG的發(fā)病有關(guān)。
“溫陽補(bǔ)氣”針法在穴位配伍上,取手陽明經(jīng)穴之手三里,取足陽明經(jīng)穴之足三里,采用了 “治痿獨(dú)取陽明”的治療原則。同時(shí),脾為 “后天之本”、“氣血生化之源”,腎為 “先天之本”、“藏命門之火”,根據(jù)MG脾氣虛弱、腎陽不足的主要病機(jī)選取脾俞、腎俞兩穴,通過溫補(bǔ) “先天之本”,健運(yùn) “后天之本”,以調(diào)節(jié)脾腎二臟之虛弱不足。因此,該針法在治療上具有溫補(bǔ)兼施、通調(diào)共奏的特點(diǎn),能夠補(bǔ)益脾腎精血,健旺脾胃功能,使機(jī)體氣血津液充足、臟腑功能正常、筋脈得以濡養(yǎng),實(shí)現(xiàn)陽明實(shí)則宗筋潤,精氣足則筋骨強(qiáng)的治痿目的。本研究發(fā)現(xiàn):EAMG大鼠動(dòng)物模型建模成功后,EAMG大鼠血清中AchR-Ab和IFN-γ的表達(dá)水平明顯升高,說明AchR-Ab和IFN-γ在EAMG的發(fā)病過程中具有重要的作用;經(jīng)針灸或藥物治療后,EAMG大鼠血清中AchR-Ab和IFN-γ的表達(dá)水平均明顯降低,且組間比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,證明針灸療法對MG具有良好的治療作用。同時(shí)可以推測:“溫陽補(bǔ)氣”針法對MG的治療作用是直接或間接降低了AchR-Ab和IFN-γ的表達(dá)水平,阻滯了AchR的降解和突出后膜上AchR數(shù)量的減少,從而保證了神經(jīng)電信號的正常傳導(dǎo)。
[1]Jayam Trouth A,Dabi A,Solieman N,et al.Myasthenia gravis:a review [J].Autoimmune Dis,2012,2012:874680.doi:10.1155/2012/874680.
[2]錢火輝,齊國豪.針灸治療眼肌型重癥肌無力39例 [J].上海針灸雜志,2010,29(12):790.
[3]楊 蕾.華佗夾脊穴治療輕型重癥肌無力15例療效觀察 [J].天津中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2009,28(2):93.
[4]焦 健.黃芪復(fù)方顆粒治療重癥肌無力的臨床觀察 [J].實(shí)用中醫(yī)內(nèi)科雜志,2011,25(5):53-55.
[5]董 婷.補(bǔ)中益氣湯治療重癥肌無力臨床研究 [J].中國中醫(yī)急癥,2011,20(2):212-213.
[6]Im SH,Barch D,F(xiàn)eferman T,et al.Protective molecular mimicry in experimental myasthenia gravis [J]. J Neuroimmunol,2002,126(1/2):99-106.
[7]Vincent A,Bowen J,Newsom-Davis J,et al.Seronegative generalised myasthenia gravis:clinical features,antibodies,and their targets[J].Lancet Neurol,2003,2(2):99-106.
[8]王 煒,南振鴻,凌振芬,等.干擾素-γ對重癥肌無力患者自身抗體的調(diào)節(jié)作用及相關(guān)性分析 [J].中國神經(jīng)免疫學(xué)和神經(jīng)病學(xué)雜志,2000,7(4):234-236.
[9]Balasa B,Deng C, Lee J,et al.Interferon gamma(IFN-gamma)is necessary for the genesis of acetylcholine receptor-induced clinical experimental autoimmune myasthenia gravis in mice[J].J Expe Med,1997,186(3):385-391.
[10]Feferman T,Aricha R,Mizrachi K,et al.Suppression of experimental autoimmune myasthenia gravis by inhibiting the signaling between IFN-gamma inducible protein 10(IP-10)and its receptor CXCR3 [J].J Neuroimmunol,2009,209(1/2):87-95.
[11]Vincent A,Bowen J,Newsom-Davis J,et al.Seronegative generalised myasthenia gravis:clinical features,antibodies,and their targets[J].Lancet Neurol,2003,2(2):99-106.
[12]Motomura M, Narita Masuda T. Autoantibodies in myasthenia gravis[J].Brain Nerve,2013,65(4):433-439.
[13]Kusner LL, Puwanant A, Kaminski HJ. Ocular myasthenia:diagnosis,treatment,and pathogenesis [J].Neurologist,2006,12(5):231-239.
[14]Zhang GX,Xiao BG,Bai XF,et al.Mice with IFN-γ receptor deficiency are less susceptible to experimental autoimmune myasthenia gravis [J].J Immunol,1999,162(8):3775-3781.
[15]國 紅,孫 宏,許賢豪,等.重癥肌無力特異性細(xì)胞免疫應(yīng)答 [J].免疫學(xué)雜志,2000,16(2):114-118.
[16]王云甫,孫圣剛,何國厚,等.T細(xì)胞干擾素-γ及其受體與實(shí)驗(yàn)性重癥肌無力大鼠發(fā)病的相關(guān)性研究 [J].免疫學(xué)雜志,2007,23(1):110-111.
[17]朱海亮,尚雪梅,王 煜,等.益氣調(diào)血扶本培元治療重癥肌無力驗(yàn)案 [J].長春中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2012,28(28):88.
[18]龐延紅.PFN手法結(jié)合面部推拿治療周圍性面神經(jīng)麻痹 [J].長春中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào),2012,28(8):672-673.
吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版)2014年1期