許沙沙,常彥敏,徐 霖,馮發(fā)深,何 霞,王 鑄,張定梅,曹開源
(1.衡水市哈勵遜國際和平醫(yī)院檢驗科,河北 衡水 053000;2.鄭州大學(xué)附屬腫瘤醫(yī)院檢驗科,河南 鄭州 450000;3.中山大學(xué)臨床檢驗標(biāo)準(zhǔn)化研究中心,廣東 廣州 510080)
流感病毒是有包膜的單股負(fù)鏈RNA病毒,屬于正黏病毒科(orthomyxoviridae),根據(jù)核衣殼蛋白和基質(zhì)蛋白不同,分為甲(A)、乙(B)、丙(C)3型[1]。甲型H1N1流感于2009年3月在墨西哥爆發(fā),最初被稱為“人感染豬流感”,世界衛(wèi)生組織將流感大流行警告級別提高為6級[2],2009年4月中國衛(wèi)生部發(fā)布公告,明確將豬流感更名為“甲型H1N1流感”。據(jù)世界衛(wèi)生組織統(tǒng)計,截至2010年3月19日,這種新病毒已經(jīng)波及213個國家,共造成16813例死亡[3]。許多學(xué)者認(rèn)為華南地區(qū)是世界流感流行的一個主要起源地,因此加強(qiáng)對甲型H1N1流感的監(jiān)測對我國傳染病防控具有重要意義[4]。神經(jīng)氨酸酶(neuraminidase,NA)是流感病毒表面重要的糖蛋白,是甲型流感病毒主要抗原之一,對于流感病毒從感染細(xì)胞中的釋放非常重要。為了監(jiān)測甲型H1N1流感NA基因的變異情況,及時發(fā)現(xiàn)具有流行病學(xué)意義的耐藥株,我們對2010年從廣州采集的1194份呼吸道標(biāo)本中分離到的6株甲型H1N1病毒株NA基因進(jìn)行測序,與2009年的代表株進(jìn)行比對,對其耐藥位點(diǎn)和同源性進(jìn)行分析,了解其變異情況,為今后流感的監(jiān)控和防治提供參考資料。
2010年2到12月廣州市中山大學(xué)附屬二院和三院發(fā)熱門診病例咽拭子標(biāo)本1194份,病例納入標(biāo)準(zhǔn)為:發(fā)熱3 d以內(nèi),體溫≥38℃;伴有咳嗽或咽喉疼痛等急性上呼吸道感染癥狀。
2010年本實驗室分離的甲型H1N1流感病毒和2009年3月本實驗室從廣州市第1例甲型H1N1流感病毒感染患者體內(nèi)分離的毒株,名稱為A/Guangdong/03/2009(H1N1)(GenBank登錄號GQ250161);從GenBank中選取北京、上海、廣東三地在2009年甲型H1N1流感流行時的NA序列共9株,用以基因分型和比較,見表1。
表1 NA基因用以進(jìn)化分析的毒株
對采集的咽拭子標(biāo)本進(jìn)行處理,各取200 μL提取RNA(QIAmp MiniElute Virus Spin試劑盒),逆轉(zhuǎn)錄合成 cDNA(Invitrogen,SuperscriptⅢ first strand逆轉(zhuǎn)錄試劑盒),操作步驟參照說明書進(jìn)行,反應(yīng)條件為:25℃ 10 min,50℃ 50 min,85℃5 min,37 ℃ 20 min。
對1194份標(biāo)本的cDNA全部進(jìn)行甲型流感病毒檢測。
1.引物 參照國家流感中心下發(fā)的引物,目標(biāo)片段為M基因,上游引物5'-TTCTAACCGAGGTCGAAACG-3',下游引物 5'-ACAAAGCGTCTACGCTGCAG-3',特異產(chǎn)物長度235 bp。
2.聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)反應(yīng)體系 TaKaRa ExTaq mix 12.5 μL,焦碳酸二乙酯水 7.5 μL,上、下游引物各 2 μL;cDNA模板 1 μL。反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min,94 ℃30 s,52 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35 個循環(huán),72 ℃10 min。
對甲型流感病毒檢測陽性的標(biāo)本進(jìn)行甲型H1N1流感病毒特異PCR檢測。
1.引物 參照國家流感中心下發(fā)的引物,目標(biāo)片段為HA基因,上游引物5'-AATAACATTAGAAGCAACTGG-3',下游引物5'-AGGCTGGTGTTTATRGCACC-3',特異產(chǎn)物長度153 bp。
2.PCR 同上。
參考GenBank中甲型H1N1流感病毒株NA序列(GenBank登陸號GQ250162)分別設(shè)計分段引物 NA-1和 NA-2,NA-1引物擴(kuò)增1~643 bp,NA-2引物擴(kuò)增 505~1410 bp,NA基因全長1410 bp,引物序列見表2。
表2 NA基因擴(kuò)增引物
PCR 反應(yīng)體系:TaKaRa ExTaq mix 25 μL,焦碳酸二乙酯水 15 μL,上下游引物各 4 μL,cDNA模板2 μL。反應(yīng)條件:95 ℃ 5 min,94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 1 min,35 個循環(huán),72 ℃ 10 min。
膠回收試劑盒(TAKATA)回收PCR產(chǎn)物,連接到pMD 18-T Vector(TAKATA),轉(zhuǎn)化 DH-5α感受態(tài)細(xì)胞,用Amp+LB篩選陽性菌落提取重組質(zhì)粒,PCR初步鑒定重組質(zhì)粒,送上海英駿公司測序。
利用 Clustal 1.83軟件[5]對測序毒株 HA基因序列和氨基酸序列進(jìn)行比對和分析,利用Glyc 1.0 Server(http://www.cbs.dtu.dk/services/Net-NGlyc/)在線軟件預(yù)測其糖基化位點(diǎn),并對其耐藥位點(diǎn)進(jìn)行分析。
將分離的6株廣州甲型H1N1流感病毒分離株和從GenBank中篩選的9株甲型H1N1流感病毒的 HA基因用 MEGA4.0軟件[6]近鄰連接法(neighbor-joining method)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹。
1194份咽試子標(biāo)本中檢測甲型流感病毒327份,其中檢測到H1N1流感病毒6株。
PCR擴(kuò)增結(jié)果表明成功擴(kuò)增大小約235 bp的甲型流感病毒特異性片段,見圖1。
PCR擴(kuò)增結(jié)果表明成功擴(kuò)增大小約153 bp的甲型H1N1流感病毒特異性片段,見圖2。
6株甲型H1N1流感病毒分離株NA-1段基因的逆轉(zhuǎn)錄PCR產(chǎn)物全長643 bp,見圖3。6株甲型H1N1流感病毒的NA-2段基因的逆轉(zhuǎn)錄PCR產(chǎn)物全長905 bp,與理論值相符,見圖4?;厥誔CR擴(kuò)增產(chǎn)物,與T載體連接,由上海英駿公司進(jìn)行測序(結(jié)果略)。
圖1 甲型流感病毒電泳結(jié)果(部分結(jié)果)
圖2 甲型H1N1流感病毒電泳結(jié)果
圖3 NA-1片段逆轉(zhuǎn)錄PCR電泳結(jié)果
1.NA基因同源性分析 2009年流感病毒代表株和2010年流感病毒分離株共15株,將其NA基因共1410個堿基,用Clustalx 1.83進(jìn)行序列比對,用BioEdit軟件得到15株NA基因的氨基酸相似性矩陣,見表3。2010年分離株和2009年代表株氨基酸相似性較高,介于0.985~0.999。
圖4 NA-2片段逆轉(zhuǎn)錄PCR電泳結(jié)果
表3 NA核酸相似性矩陣
2.NA系統(tǒng)進(jìn)化樹分析 根據(jù)NA基因全長序列(1410 bp),對2009年代表株和2010年分離株共15株甲型H1N1流感病毒株進(jìn)行了系統(tǒng)進(jìn)化分析,包括本研究分離到的6株,還有選取的2009年代表株。在系統(tǒng)進(jìn)化樹上,15株毒株分成了3個分支,見圖5。
3.氨基酸變異分析 2010年分離的6株甲型H1N1流感病毒的NA基因與2009年中國大陸的代表株比對,6株分離株共有30個堿基位點(diǎn)發(fā)生突變,其中有義突變?yōu)?6個,3個位點(diǎn)和NA活性相關(guān),其中222位氨基酸的變異位于NA活性位點(diǎn)上,未發(fā)現(xiàn)H275Y耐藥位點(diǎn)的變異,見表4。
圖5 甲型H1N1流感病毒NA基因系統(tǒng)進(jìn)化樹
表4 2010年分離株和2009年代表株NA片段氨基酸比對結(jié)果
4.糖基化位點(diǎn)變異分析 分別將2010年廣州市分離到的6株甲型H1N1病毒株和2009年代表株NA基因進(jìn)行糖基化位點(diǎn)的預(yù)測。結(jié)果發(fā)現(xiàn)4株甲型H1N1病毒株的糖基化位點(diǎn)和2009年代表株相比并沒有明顯的變化。
5.NA蛋白結(jié)構(gòu)建模 通過蛋白分析專家系統(tǒng)EXPASY(http://ca.expasy.org/)提供的蛋白組學(xué)和序列分析工具SWISS-MODEL,模擬構(gòu)建各NA蛋白的空間構(gòu)象。3株病毒株在NA活性位點(diǎn)222位、228位和425位等氨基酸位點(diǎn)處發(fā)生了變異,見圖6。
圖6 NA蛋白三維結(jié)構(gòu)
NA蛋白是流感病毒包膜上重要的糖蛋白,能切斷細(xì)胞表面的唾液酸,促使病毒從感染細(xì)胞膜上釋放,防止子代病毒自身凝集,促進(jìn)病毒擴(kuò)散并增強(qiáng)其感染能力。由于NA在流感病毒復(fù)制和傳播中起重要作用,且其活性中心的氨基酸組成高度保守,因此是研制抗流感藥物的重要靶點(diǎn)。
目前抗流感藥物有2種:一種為M2離子通道阻滯劑,如金剛烷胺,但是其副作用很大,而且很容易產(chǎn)生耐藥株,有學(xué)者報道現(xiàn)在流感病毒對烷胺類的耐藥現(xiàn)象十分嚴(yán)重[7-8]。而2009年甲型H1N1流感病毒對烷胺類耐藥情況同樣嚴(yán)重,主要是在NA第31位氨基酸的變異(S31N)[9]。在這種情況下NA抑制劑成為目前抗流感病毒研究的熱點(diǎn)[10],而且奧司他韋對甲型流感和乙型流感都有效,不易引起耐藥性且耐受性好。但是自從奧司他韋應(yīng)用于臨床以來,不斷有耐藥株出現(xiàn),耐藥率逐年上升,耐藥率在成人為0.4% ~1%[11],在兒童為4% ~8%,其中日本兒童的耐藥率高達(dá)18%。
流感病毒NA的活性位點(diǎn)結(jié)構(gòu)示意圖見圖7[12-13],NA催化位點(diǎn)以及周圍相關(guān)位點(diǎn)高度保守[14-15]。直接參與催化作用的活性區(qū)域有5個,分別為 S1~S5,S1由3個氨基酸殘基(R118、R292、R371)組成,S2由2個氨基酸殘基(E227、E119)組成,S3由2個氨基酸殘基(W178、I222)組成,S4 由3 個氨基酸殘基(I222、R224、A246)組成,S5由2個氨基酸殘基(A246、E276)組成。間接參與催化作用的位點(diǎn)有 R156、Y406、S179、D198、E228、N294、E425 等氨基酸位點(diǎn)。
圖7 流感病毒NA的活性位點(diǎn)結(jié)構(gòu)示意圖
這些位點(diǎn)都直接或間接地參與NA的催化,所以此處氨基酸如果發(fā)生突變,就會對NA的活性產(chǎn)生影響,減低流感病毒對NA抑制劑的敏感性,甚至?xí)?dǎo)致對NA抑制劑的耐藥。通過對本研究分離到的6株甲型H1N1流感病毒的NA基因的測序,氨基酸序列分析發(fā)現(xiàn)部分毒株出現(xiàn)N42S、N59D、Q313K等的氨基酸位點(diǎn)變異,這些均未涉及NA催化位點(diǎn)。但是在A/Guangdong/ZS03/2010(H1N1)毒株中出現(xiàn)E228G氨基酸突變,A/Guangdong/ZS04/2010(H1N1)毒株出現(xiàn)E425G氨基酸突變,這些位點(diǎn)都與NA的活性有關(guān),但這些毒株其耐藥性是否有變化,有待進(jìn)一步研究。
同時在 A/Guangdong/ZS01/2010(H1N1)毒株中出現(xiàn)N222S氨基酸的突變(雖然與文獻(xiàn)報道I222位突變的堿基不一樣,但是222位氨基酸還是存在突變的)。許多研究表明222位氨基酸的改變會導(dǎo)致流感病毒對 NA抑制劑的耐藥[16]。因此需繼續(xù)對其耐藥性密切監(jiān)測。
從NA三維結(jié)構(gòu)圖中可以看到NA活性位點(diǎn)組成一個疏水性的口袋狀結(jié)構(gòu),可以結(jié)合NA抑制劑奧司他韋等藥物,起到抗病毒的作用。如果疏水性口袋狀結(jié)構(gòu)的氨基酸位點(diǎn)發(fā)生變異,會導(dǎo)致無法結(jié)合奧司他韋等藥物,則會產(chǎn)生流感病毒耐藥株。盡管結(jié)構(gòu)圖中只有少部分氨基酸的突變,但突變位點(diǎn)在NA活性位點(diǎn)上可能對其耐藥性產(chǎn)生影響,需后續(xù)試驗繼續(xù)研究。
許多研究表明,275位氨基酸的變異會對奧司他韋產(chǎn)生耐藥[17],通過比較分析2010年分離到的甲型H1N1流感病毒,均未發(fā)現(xiàn)275位的變異,提示在2010年廣州散發(fā)的甲型H1N1流感病毒對NA抑制劑仍然敏感。2010年分離株NA糖基化位點(diǎn)與2009年代表株比較并沒有變化,與Saxena等[18]的報道相同。同時發(fā)現(xiàn)2010年分離株與 2009年代表株同源性較高(0.985~0.999),提示NA基因仍是同一來源,未發(fā)生較大變異。對NA系統(tǒng)進(jìn)化樹分析發(fā)現(xiàn),2009年代表株為一支,而2010年分離株為一支,說明2010年與2009年相比,NA基因有部分堿基發(fā)生變異。
通過以上分析,NA蛋白275位氨基酸并未出現(xiàn)變異,提示還沒有出現(xiàn)對奧司他韋的耐藥株,但是在NA活性中心周圍已經(jīng)存在有變異的氨基酸,可能會對其耐藥性有影響。同時隨著奧司他韋在臨床上的廣泛應(yīng)用,甲型H1N1流感病毒耐藥株在世界上其他國家不斷有報道,更應(yīng)該繼續(xù)加強(qiáng)對甲型H1N1流感病毒的耐藥性監(jiān)測以及序列分析工作,在分子遺傳進(jìn)化分析的基礎(chǔ)上,及時發(fā)現(xiàn)有流行病學(xué)意義的耐藥株,為國家制定甲型H1N1流感防控策略提供參考。
[1]Fouchier RA,Munster V,Wallensten A et al.Characterization of a novel influenza A virus hemagglutinin subtype(H16)obtained from black-headed gulls[J].J Virol,2005,79(5):2814-2822.
[2]Smith GJ,Vijaykrishna D,Bahl J,et al.Origins and evolutionary genomics of the 2009 swine-origin H1N1 influenza A epidemic[J]. Nature,2009,459(7250):1122-1125.
[3]WHO.Pandemic(H1N1)2009[EB/OL].(2010-03-09)[2010-05-06].http://www.who.int/csr/disease/swinflu/laboratory 19_03_2010/en/.
[4]Shortridge KF.Severe acute respiratory syndrome and influenza:virus incursions from southern China[J].Am J Respir Crit Care Med,2003,168(12):1416-1420.
[5]Thompson JD,Higgins DG,Gibson TJ.CLUSTAL W:improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting,position-specific gap penalties and weight matrix choice[J].Nucleic Acids Research,1994,22(22):4673-4680.
[6]Tamura K,Dudley J,Nei M,et al.MEGA4:molecular evolutionary genetics analysis(MEGA)software version 4.0[J].Mol Biol Evol,2007,24(8):1596-1599.
[7]Bright RA,Shay DK,Shu B,et al.Adamantane resistance among influenza A viruses isolated early during the 2005-2006 influenza season in the United States[J].JAMA,2006,295(8):891-894.
[8]藍(lán) 雨,李 梓,董麗波,等.中國H3N2亞型流感病毒烷胺類藥物耐藥性研究[J].中華實驗和臨床病毒學(xué)雜志,2006,20(2):21-23.
[9]Centers for Disease Control and Prevention(CDC).Update:drug susceptibility of swine-origin influenza A(H1N1)viruses,April 2009[J].MMWR Morb Mortal Wkly Rep,2009,58(16):433-435.
[10]Smith BJ,McKimm-Breshkin JL,McDonald M,et al.Structural studies of the resistance of influenza virus neuramindase to inhibitors[J].J Med Chem,2002,45(11):2207-2212.
[11]Monto AS,McKimm-Breschkin JL,Macken C,et al.Detection of influenza viruses resistant to neuraminidase inhibitors in global surveillance during the first 3 years of their use[J].Antimicrob Agents Chemother,2006,50(7):2395-2402.
[12]Colman PM,Hoyne PA,Lawrence MC.Sequence and structure alignment of paramyxovirus hemagglutinin-neuraminidase with influenza virus neuraminidase[J].J Virol,1993,67(6):2972-2980.
[13]Langedijk JP,Daus FJ,van Oirschot JT.Sequence and structure alignment of paramyxoviridae attachment proteins and discovery of enzymatic activity for a morbillivirus hemagglutinin[J].J Virol,1997,71(8):6155-6167.
[14]Hurt AC,Ernest J,Deng YM,et al.Emergence and spread of oseltamivir-resistant A(H1N1)influenza viruses in Oceania,South East Asia and South Africa[J].Antiviral Res,2009,83(1):90-93.
[15]Ferraris O,Lina B.Mutations of neuraminidase implicated in neuraminidase inhibitors resistance[J].J Clin Virol,2008,41(1):13-19.
[16]Deyde VM,Nguyen T,Bright RA,et al.Detection of molecular markers of antiviral resistance in influenza A(H5N1)viruses using a pyrosequencing method[J].Antimicrob Agents Chemother,2009,53(3):1039-1047.
[17]Kiso M,Shinya K,Shimojima M,et al.Characterization of oseltamivir-resistant 2009 H1N1 pandemic influenza A viruses[J].PLoS Pathog,2010,6(8):e1001079.
[18]Saxena SK,Mishra N,Saxena R,et al.Structural and antigenic variance between novel influenza A/H1N1/2009 and influenza A/H1N1/2008 viruses[J].J Infect Dev Ctries,2010,4(1):1-6.