尚畫雨, 夏 志, 張 丹, 黃玫梅, 上官若男, 蘇全生△

(1北京體育大學(xué)運(yùn)動(dòng)人體科學(xué)學(xué)院，北京 100084； 2井岡山大學(xué)體育學(xué)院，江西 吉安 343009； 3四川省體育科學(xué)研究所，4成都體育學(xué)院，四川 成都 610041； 5成都大學(xué)體育學(xué)院，四川 成都 610106)

糖尿病周圍神經(jīng)病變(diabetic peripheral neuro-pathy, DPN)是糖尿病(diabetes mellitus, DM)最常見(jiàn)的慢性并發(fā)癥之一，在臨床上表現(xiàn)為進(jìn)行性的感覺(jué)功能缺失，隨著病情的發(fā)展會(huì)出現(xiàn)疼痛、麻木甚至可能因壞疽而導(dǎo)致截肢[1]。目前，臨床上主要通過(guò)藥物治療DPN，但值得考慮的是，長(zhǎng)期服藥不僅會(huì)產(chǎn)生毒副作用，且只能暫時(shí)應(yīng)對(duì)部分問(wèn)題，停藥后療效也無(wú)法持續(xù)。

引起DPN的發(fā)病機(jī)制有很多，近年來(lái)隨著炎癥學(xué)說(shuō)的興起和研究的增多，越來(lái)越多的學(xué)者趨向認(rèn)為神經(jīng)功能障礙主要是由于炎癥反應(yīng)引起[2-4]。運(yùn)動(dòng)與“胰島素、飲食”一并被比喻為治療DM的“三駕馬車”。目前，國(guó)內(nèi)外鮮見(jiàn)對(duì)炎癥與DPN關(guān)系的研究，且尚未見(jiàn)報(bào)道從炎癥反應(yīng)的角度研究長(zhǎng)期游泳運(yùn)動(dòng)在DPN發(fā)病中的干預(yù)作用。本研究擬通過(guò)對(duì)DPN模型大鼠神經(jīng)組織病理學(xué)、坐骨神經(jīng)中炎癥因子和神經(jīng)電生理的檢測(cè)，探討運(yùn)動(dòng)對(duì)T2DM大鼠坐骨神經(jīng)損傷的保護(hù)作用及其可能機(jī)制。

材 料 和 方 法

1 主要試劑與儀器

鏈脲佐菌素(streptozocin，STZ)(Sigma)；ELISA試劑盒(成都三鷹生物技術(shù)有限公司)；血糖儀(美國(guó)強(qiáng)生公司)；PowerLab數(shù)據(jù)采集分析系統(tǒng)(AD Instruments)。

2 動(dòng)物分組及模型制備

健康雄性Wistar大鼠45只，8周齡，體重200～230 g(四川大學(xué)華西醫(yī)學(xué)院動(dòng)物中心提供)。適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后，隨機(jī)抽取14只分為空白對(duì)照組(C,n=7)和單純運(yùn)動(dòng)組(CE,n=7)，給予標(biāo)準(zhǔn)大鼠飼料喂養(yǎng)7周后腹腔注射相同劑量的枸櫞酸緩沖液。其余31只給予高糖高脂飼料(10.0%豬油，20.0%蔗糖，2.5%膽固醇，1.0%膽酸鈉，66.5%常規(guī)飼料)喂養(yǎng)(期間死亡5只)，7周后空腹12 h腹腔注射STZ 30 mg/kg(溶于0.1 mol/L、pH4.2的枸櫞酸緩沖液中)。72 h后用血糖儀檢測(cè)非禁食血糖>16.7 mmol/L者作為2型糖尿病(type II diabetes mellitus, T2DM)大鼠[5]。將20只成模大鼠(造模成功率為76.9%)隨機(jī)分為2組：DM對(duì)照組(DM,n=10)和DM+運(yùn)動(dòng)組(DME,n=10)。

3 運(yùn)動(dòng)干預(yù)方案

采用改進(jìn)的Ploug等[6]訓(xùn)練方案，池(100 cm×70 cm×60 cm)水深50 cm，水溫(30±2)℃。先進(jìn)行2次適應(yīng)性游泳練習(xí)，每次10 min。第1周前3 d訓(xùn)練時(shí)間分別為20 min、30 min和45 min，第4天起每天持續(xù)游泳60 min，每周訓(xùn)練6 d，共訓(xùn)練8周。CE組和DME組進(jìn)行訓(xùn)練，C組和DM組不予運(yùn)動(dòng)。

4 觀察指標(biāo)及檢測(cè)方法

實(shí)驗(yàn)期間記錄大鼠一般情況及行為改變，定時(shí)稱重。分別于STZ注射前、運(yùn)動(dòng)8周后禁食12 h測(cè)量各組大鼠空腹血糖(fasting blood glucose,FBG)和空腹血清胰島素(fasting insulin,FINS)。使用血糖儀測(cè)定FBG，ELISA測(cè)定血清FINS；胰島素抵抗指數(shù)HOMA-IR=FBG×FINS/22.5。

運(yùn)動(dòng)8周后，大鼠腹腔注射10%水合氯醛(3.5 mL/kg)麻醉后，俯臥位固定，迅速脫毛，仔細(xì)分離右側(cè)從坐骨切跡至踝部的坐骨神經(jīng)。坐骨神經(jīng)分離暴露后立即測(cè)定，用生理鹽水作為導(dǎo)電介質(zhì)，以鉤狀電極作為刺激電極和記錄電極分別置于坐骨切跡處和踝部，另將一個(gè)參考電極置于記錄電極和刺激電極之間，大約位于腓腸肌處。測(cè)試時(shí)保持室溫(25±1)℃，大鼠體溫37 ℃左右，并連接PowerLab數(shù)據(jù)采集分析系統(tǒng)(頻率20 Hz；單刺激方式；波寬1 ms；強(qiáng)度1.4 V；采樣速率20 kHz)[7]。運(yùn)動(dòng)神經(jīng)傳導(dǎo)速度(motornerve conduction velocity,MNCV;m/s)=刺激電極與記錄電極之間的距離(cm)×10/動(dòng)作電位產(chǎn)生時(shí)間 (ms)，重復(fù)電刺激3次取平均值。MNCV測(cè)定后，取大鼠左側(cè)坐骨神經(jīng)(坐骨切跡至遠(yuǎn)端1 cm)，行HE染色。左側(cè)剩余神經(jīng)組織迅速置于液氮速凍后，保存于-80 ℃冰箱備用。ELISA測(cè)定坐骨神經(jīng)中腫瘤壞死因子 α(tumor necrosis factor α,TNF-α)、白細(xì)胞介素6(interleukin 6, IL-6)和C-反應(yīng)蛋白(C-reactive protein,CRP)含量。

5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理

使用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件分析，數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示，以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。進(jìn)行方差分析之前先進(jìn)行方差齊性檢驗(yàn)，若方差齊，則直接采用Bonferroni法進(jìn)行事后檢驗(yàn)，以使結(jié)論穩(wěn)健而不保守；若方差不齊，則將原始數(shù)據(jù)轉(zhuǎn)換至齊性后再作統(tǒng)計(jì)。對(duì)于不能轉(zhuǎn)換至齊性的指標(biāo)數(shù)據(jù)，直接采用Tamhane’s T2的統(tǒng)計(jì)結(jié)果進(jìn)行分析。

結(jié) 果

1 一般情況

實(shí)驗(yàn)期間由于環(huán)境和飲食改變、糖尿病慢性疾病狀態(tài)和感染等原因?qū)е麓笫笏劳?。C、CE、DM和DME組最終進(jìn)入統(tǒng)計(jì)的有效樣本量分別為6只、6只、7只和6只。

成模大鼠毛色無(wú)光澤、精神萎靡，多飲、多食、多尿，明顯消瘦。

2 體重的變化

適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后，14只標(biāo)準(zhǔn)飼料喂養(yǎng)大鼠體重[(242.00±34.52) g]與31只高糖高脂飼料喂養(yǎng)大鼠體重[(233.30±24.87) g]無(wú)顯著差異。開始運(yùn)動(dòng)前C和CE組體重增加，DM和DME組體重減輕，各組間體重差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)?zāi)?，C和CE組體重持續(xù)增加，組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)；DM組體重顯著低于C組和CE組(P<0.01)；DME組體重較C組和CE組明顯減輕(P<0.05)，較DM組增加并不顯著(P>0.05)，見(jiàn)圖1。

Figure 1. The change of body weight in diffe-rent groups at different time points. Mean±SD.n=6～7.*P<0.05, **P<0.01 vs C group; #P<0.05, ##P<0.01 vs CE group.

3 血糖的變化

實(shí)驗(yàn)期間C組和CE組的空腹血糖在正常范圍內(nèi)波動(dòng)且組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。DM和DME組在STZ注射前、開始運(yùn)動(dòng)前及運(yùn)動(dòng)后的空腹血糖均明顯高于C組和CE組(P<0.01或P<0.05)。開始運(yùn)動(dòng)前，DM組和DME組的空腹血糖比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)?zāi)cDM組相比，DME組的空腹血糖明顯降低(P<0.05),見(jiàn)圖2。

Figure 2. The change of fasting blood glucose (FBG) in diffe-rent groups at different time points. Mean±SD. n=6～7.*P<0.05, **P<0.01 vs C group; #P<0.05, ##P<0.01 vs CE group; ▲P<0.05 vs DM group.

4 血清FINS和HOMA-IR的變化

實(shí)驗(yàn)期間C組和CE組的血清FINS和HOMA-IR均未發(fā)生明顯變化，且組間差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。在STZ注射前，DM和DME組的血清FINS和HOMA-IR高于C組和CE組(P<0.05或P<0.01)，但DM與DME兩組間差異不顯著(P>0.05)。實(shí)驗(yàn)?zāi)?，DM組的血清FINS低于C組和CE組(P<0.01)，HOMA-IR高于C組和CE組(P<0.01)；DME組的血清FINS和HOMA-IR與C組和CE組相比無(wú)顯著差異(P>0.05)，血清FINS顯著高于DM組(P<0.01)，HOMA-IR明顯低于DM組(P<0.05)，見(jiàn)圖3、4。

Figure 3. The change of fasting insulin (FINS) in different groups at different time points. Mean±SD. n=6～7.*P<0.05, **P<0.01 vs C group; #P<0.05, ##P<0.01 vs CE group; ▲▲P<0.01 vs DM group.

Figure 4. The change of HOMA-IR in different groups at different time points. Mean±SD. n=6～7.**P<0.01 vs C group; ##P<0.01 vs CE group; ▲P<0.05 vs DM group.

5 MNCV的變化

實(shí)驗(yàn)?zāi)?，C組和CE組的MNCV差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。DM和DME組的MNCV明顯低于C組和CE組(P<0.01或P<0.05)；與DM組相比，DME組的MNCV顯著提高(P<0.05),見(jiàn)圖5。

Figure 5. The change of MNCV in different groups. Mean±SD. n=6～7.*P<0.05, **P<0.01 vs C group; ##P<0.01 vs CE group; ▲P<0.05 vs DM group.

6 坐骨神經(jīng)形態(tài)學(xué)的變化

實(shí)驗(yàn)?zāi)?，C組(圖6A)和CE組(圖6B)的坐骨神經(jīng)有髓神經(jīng)纖維形態(tài)正常，神經(jīng)纖維排列緊密，髓鞘正常包繞在神經(jīng)纖維軸索外。與C組和CE組比較，DM組(圖6C)表現(xiàn)出神經(jīng)損傷，髓鞘空泡變性，部分神經(jīng)纖維脫髓鞘(如箭頭所指)。DME組(圖6D)較DM組改善明顯，髓鞘空泡變性數(shù)量減少，極少神經(jīng)纖維脫髓鞘。

Figure 6. The morphological change of sciatic nerve in different groups (HE staining, ×400). A: C group; B: CE group; C: DM group; D: DME group. Black arrows show myelin damage.

7 坐骨神經(jīng)中TNF-α、IL-6和CRP的變化

實(shí)驗(yàn)?zāi)?，C組和CE組TNF-α、IL-6和CRP的水平無(wú)明顯差異(P>0.05)；與C組和CE組相比，DM組的TNF-α、IL-6和CRP水平明顯升高(P<0.05)，而DME組的TNF-α、IL-6和CRP水平升高不顯著(P>0.05)；DME組與DM組相比，雖然TNF-α、IL-6和CRP水平差異并不顯著(P>0.05)，但仍表現(xiàn)出了下降的趨勢(shì)，見(jiàn)表1。

表1 各組大鼠神經(jīng)炎癥因子比較

討 論

近年來(lái)，大量研究結(jié)果表明T2DM可能是一種慢性臨床炎癥性疾病，由免疫系統(tǒng)誘導(dǎo)、細(xì)胞因子介導(dǎo)[8]。細(xì)胞因子不僅能夠預(yù)測(cè)DM的發(fā)生[9-10]，而且與DM并發(fā)癥如血管病變、腎病等有關(guān)[11-13]。這些炎癥細(xì)胞因子主要包括急性時(shí)相反應(yīng)蛋白CRP、TNF-α、IL-6等。研究指出：適宜的有氧運(yùn)動(dòng)，能明顯提高血液纖維蛋白溶解酶活性，改善微循環(huán)，增加神經(jīng)血流灌注，改善局部血液動(dòng)力學(xué)，增強(qiáng)機(jī)體抗氧化反應(yīng)，減輕炎癥反應(yīng)[14]。這為有氧運(yùn)動(dòng)治療糖尿病并發(fā)癥提供了理論依據(jù)。

本實(shí)驗(yàn)采用高糖高脂喂養(yǎng)聯(lián)合小劑量STZ注射制備T2DM模型，我們發(fā)現(xiàn)當(dāng)高糖高脂喂養(yǎng)7周后大鼠出現(xiàn)高胰島素血癥和胰島素抵抗(insulin resis-tance, IR)，胰島素抵抗指數(shù)升高，繼以小劑量STZ破壞大鼠胰島功能，出現(xiàn)高血糖。結(jié)果顯示DM大鼠均呈現(xiàn)典型“三多一少”癥狀，毛色無(wú)光澤，體重明顯減輕，從而進(jìn)一步說(shuō)明，本研究成功建立了T2DM大鼠模型，與國(guó)內(nèi)外學(xué)者研究結(jié)果一致[15-16]。隨后，我們觀察了從T2DM發(fā)病到出現(xiàn)神經(jīng)損害的完整過(guò)程，模擬了人類DPN發(fā)病情況和病理特征。神經(jīng)傳導(dǎo)速度(nerve conduction velocity,NCV)是診斷周圍神經(jīng)損傷的“金指標(biāo)”，也是DPN重要的檢查手段。很多實(shí)驗(yàn)制備DPN動(dòng)物模型進(jìn)行研究，結(jié)果表明，在DM早期即出現(xiàn)NCV明顯減慢[17-18]。NCV包括MNCV和感覺(jué)神經(jīng)傳導(dǎo)速度(sensory NCV,SNCV)。其中，MNCV是最常用于研究實(shí)驗(yàn)性DPN模型的觀察指標(biāo)。本實(shí)驗(yàn)在大鼠成模后立即進(jìn)行運(yùn)動(dòng)干預(yù)，結(jié)果表明，8周游泳運(yùn)動(dòng)不能將血糖降至正常水平，但能有效控制體重下降和血糖升高，還能增加胰島素的分泌，從而改善IR。8周運(yùn)動(dòng)后DM組MNCV較C、CE組明顯減慢(P<0.01)，而DME組與DM組比較明顯提高(P<0.05)。提示8周游泳運(yùn)動(dòng)對(duì)T2DM大鼠MNCV減慢具有改善作用。另有資料表明，神經(jīng)病變的發(fā)生同雪旺細(xì)胞與神經(jīng)元軸突間的聯(lián)系異常緊密相關(guān)。其中，髓鞘病變與神經(jīng)傳導(dǎo)速度有關(guān)，而軸突病變與誘發(fā)電位的波幅有關(guān)。光鏡下我們觀察到，DM組髓鞘空泡變性顯著，部分神經(jīng)纖維脫髓鞘。DME組干預(yù)后神經(jīng)髓鞘空泡變性數(shù)量減少，極少神經(jīng)纖維脫髓鞘，提示8周游泳運(yùn)動(dòng)能減輕T2DM大鼠周圍神經(jīng)損傷，延緩周圍神經(jīng)病變進(jìn)程，與Balducci等[19]報(bào)道的長(zhǎng)期運(yùn)動(dòng)訓(xùn)練可以改善DPN患者自然病程的結(jié)果相似。本研究還發(fā)現(xiàn)，T2DM大鼠8周時(shí)坐骨神經(jīng)中炎癥因子TNF-α、IL-6和CRP水平明顯高于C和CE組(P<0.05)，表明此時(shí)的確處于慢性炎癥狀態(tài)，這與DM炎癥發(fā)病學(xué)說(shuō)是吻合的。在慢性炎癥狀態(tài)下，肝細(xì)胞可產(chǎn)生較多CRP。目前認(rèn)為肝臟CRP產(chǎn)生的主要興奮劑為IL-6。TNF-α誘導(dǎo)IL-6表達(dá)及其它通道激活，擴(kuò)大級(jí)聯(lián)反應(yīng)，增加CRP的合成。FINS受體的活性受到CRP抑制，從而產(chǎn)生IR，再一次誘導(dǎo)TNF-α產(chǎn)生，進(jìn)而加重炎癥反應(yīng)。CRP受TNF-α、IL-6等因子調(diào)控，刺激血管內(nèi)皮因子釋放，造成神經(jīng)組織血流減少，缺血甚至壞死，引起神經(jīng)傳導(dǎo)速度減慢及周圍神經(jīng)損傷。本實(shí)驗(yàn)在8周運(yùn)動(dòng)干預(yù)后DME組坐骨神經(jīng)中TNF-α、IL-6和CRP水平較DM組雖無(wú)明顯差異(P>0.05)，但仍然表現(xiàn)出了降低的趨勢(shì)，提示有氧運(yùn)動(dòng)可以抑制炎癥反應(yīng)，提高M(jìn)NCV。

有氧運(yùn)動(dòng)對(duì)于TNF-α和CRP的影響報(bào)道不一[20-23]。這可能與不同的實(shí)驗(yàn)對(duì)象以及運(yùn)動(dòng)的時(shí)間和強(qiáng)度有關(guān)。Sloan等[24]研究發(fā)現(xiàn)12周中等強(qiáng)度(55%～60%最大心率)有氧運(yùn)動(dòng)后健康成年人TNF-α水平變化不大，只有12周高強(qiáng)度(75%～80%最大心率)有氧運(yùn)動(dòng)組TNF-α 出現(xiàn)顯著下降。另有資料報(bào)道，TNF-α受體的水平比TNF-α更能反映TNF-α系統(tǒng)的活動(dòng)[25]。另有研究結(jié)果顯示有氧運(yùn)動(dòng)并不能降低TNF-α和CRP水平，但可以改善體適能[26-27]。You等[28]以絕經(jīng)后肥胖婦女作為實(shí)驗(yàn)對(duì)象，對(duì)其進(jìn)行6個(gè)月的節(jié)食聯(lián)合運(yùn)動(dòng)干預(yù)，最后發(fā)現(xiàn)，節(jié)食聯(lián)合運(yùn)動(dòng)干預(yù)可以使絕經(jīng)后肥胖婦女CRP水平顯著下降，提示從事有氧運(yùn)動(dòng)的同時(shí)需控制飲食，這樣才能有效降低CRP水平。而IL-6未發(fā)生顯著變化可能是8周的運(yùn)動(dòng)時(shí)間還不足以引起IL-6水平發(fā)生明顯改變。本研究結(jié)果表明，8周游泳運(yùn)動(dòng)能通過(guò)降低炎癥反應(yīng)而減輕T2DM大鼠周圍神經(jīng)損傷。

綜上所述，8周游泳運(yùn)動(dòng)可降低T2DM大鼠FBG水平，改善IR，提高M(jìn)NCV，減輕DM造成的神經(jīng)損傷，對(duì)周圍神經(jīng)起保護(hù)作用，其機(jī)制可能與減輕炎癥反應(yīng)有關(guān)。

[參 考 文 獻(xiàn)]

[1] Boulton AJ, Malik RA, Arezzo JC, et al. Diabetic somatic neuropathies [J]. Diabetes Care, 2004, 27(6):1458-1486.

[2] Murata Y, Olmarker K, Takahashi I, et al. Effects of selective tumor necrosis factor-alpha inhibition to pain-behavioral changes caused by nucleus pulposus-induced damage to the spinal nerve in rats [J]. Neurosci Lett, 2005, 382(1-2):148-152.

[3] Ozaktay AC, Cavanaugh JM, Asik I, et al. Effects of interleukin-1 beta, interleukin-6, and tumor necrosis factor on sensitivity of dorsal root ganglion and peripheral receptive fields in rats [J]. Eur Spine J, 2006, 15(10):1529-1537.

[4] 高雪明,李明才,王亞清,等. IL-33及其在中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病中的作用[J].中國(guó)病理生理雜志,2012,28(10):1901-1905.

[5] Elias D, Prigozin H, Polak N, et al. Autoimmune diabetes induced by the β-cell toxin STZ. Immunity to the 60-kDa heat shock protein and to insulin [J]. Diabetes, 1994, 43(8):992-998.

[6] Ploug T, Stallknecht BM, Pedersen O, et al. Effect of endurance training on glucose transport capacity and glucose transporter expression in rat skeletal muscle [J]. Am J Physiol, 1990, 259(6 Pt 1): E778-E786.

[7] Zangiabadi N, Asadi-Shekaari M, Sheibani V, et al. Date fruit extract is a neuroprotective agent in diabetic periphe-ral neuropathy in streptozotocin-induced diabetic rats: a multimodal analysis [J]. Oxid Med Cell Longev, 2011, 2011: 976948.

[8] Pickup JC. Inflammation and activated innate immunity in the pathogenesis of type 2 diabetes [J]. Diabetes Care, 2004, 27(3):813-823.

[9] Spranger J, Kroke A, Mohlig M, et al. Inflammatory cytokines and the risk to develop type 2 diabetes: results of the prospective population-based european prospective investigation into cancer and nutrition (EPIC)-potsdam study [J]. Diabetes, 2003, 52(3):812-817.

[10] Hu FB, Meiqs JB, Li TY, et al. Inflammatory markers and risk of developing type 2 diabetes in women [J]. Diabetes, 2004, 53(3):693-700.

[11] Nakamura T, Kawagoe Y, Oqawa H, et al. Effect of low-density lipoprotein apheresis on urinary protein and podocyte excretion in patients with nephritic syndrome due to diabetic nephropathy [J]. Am J Kidney Dis, 2005, 45(1):48-53.

[12] 陳燕銘,王一娜,鐘毅敏,等.2型糖尿病視網(wǎng)膜病變患者血清炎癥因子和脂聯(lián)素水平的變化[J].中國(guó)病理生理雜志,2011,27(6):1154-1158.

[13] 陳祥攀,楊解人,郝 偉,等.紅杉醇對(duì)2型糖尿病大鼠肝臟炎癥損傷的保護(hù)作用[J].中國(guó)病理生理雜志,2013,29(4):632-636.

[14] Karikó K, Weissman D, Welsh FA. Inhibition of Toll-like receptor and cytokine signaling: a unifying theme in ischemic tolerance [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2004, 24(11):1288-1304.

[15] Goodyear LJ, Kahn BB. Exercise, glucose transport, and insulin sensitivity [J]. Annu Rev Med, 1998, 49:235-261.

[16] 郭嘯華,劉志紅,李 恒,等.高糖高脂飲食誘導(dǎo)的2型糖尿病大鼠模型及其腎病特點(diǎn)[J].中國(guó)糖尿病雜志,2002,10(5):290-294.

[17] Calcutt NA, Dines KC, Cessena RM. Effects of the peptide HP228 on nerve disorders in diabetic rats [J]. Metabolism, 1998, 47(6):650-656.

[18] Kalichman MW, Dines KC, Bobik M, et al. Nerve conduction velocity, laser Doppler flow, and axonal caliber in galactose and streptozotocin diabetes [J]. Brain Res, 1998, 810(1-2):130-137.

[19] Balducci S, Lacobellis G, Parisi L, et al. Exercise training can modify the natural history of diabetic peripheral neuropathy [J]. J Diabetes Complications, 2006, 20(4):216-223.

[20] 張海峰,何玉秀,陳玉娟,等.腫瘤壞死因子α和脂聯(lián)素在運(yùn)動(dòng)改善胰島素抵抗中的作用[J].中國(guó)運(yùn)動(dòng)醫(yī)學(xué)雜志,2010,29(3):367-371．

[21] Martins RA, Neves AP, Coelho-Silva MJ, et al. The effect of aerobic versus strength-based training on high-sensitivity C-reactive protein in older adults [J]. Eur J Appl Physiol, 2010, 110(1):161-169.

[22] Church TS, Earnest CP, Thompson AM, et al. Exercise without weight loss does not reduce C-reactive protein: the INFLAME study [J]. Med Sci Sports Exerc, 2010, 42(4):708-716.

[23] Donges CE, Duffield R, Drinkwater EJ. Effects of resis-tance or aerobic exercise training on interleukin-6, C-reactive protein, and body composition [J]. Med Sci Sports Exerc, 2010, 42(2):304-313.

[24] Sloan RP, Shapiro PA, Demeersman RE, et al. Aerobic exercise attenuates inducible TNF production in humans [J]. J Appl Phy-siol, 2007, 103(3):1007-1011.

[25] Kadoglou NP, Lliadis F, Angelopoulou N, et al. The anti-inflammatory effects of exercise training in patients with type 2 diabetes mellitus [J]. Eur J Cardiovasc Prev Rehabil, 2007, 14(6):837-843.

[26] O’Leary VB, Marchetti CM, Krishnan RK, et al. Exercise-induced reversal of insulin resistance in obese elderly is associated with reduced visceral fat [J]. J Appl Phy-siol, 2006, 100(5):1584-1589.

[27] Kelley GA, Kelley KS. Effects of aerobic exercise on C-reactive protein, body composition, and maximum oxygen consumption in adults: a meta-analysis of randomized controlled trials [J]. Metabolism, 2006, 55(11):1500-1507.

[28] You T, Berman DM, Ryan AS, et al. Effects of hypocaloric diet and exercise training on inflammation and adipocyte lipolysis in obese postmenopausal women [J]. J Clin Endocrinol Metab, 2004, 89(4):1739-1746.