臺宗光,朱全剛,戴子淵,高 申
(1.第二軍醫(yī)大學(xué)長海醫(yī)院藥學(xué)部,上海 200433;2.解放軍92330部隊(duì)醫(yī)院藥房,青島 266102;3.上海中醫(yī)藥大學(xué)附屬岳陽中西醫(yī)結(jié)合醫(yī)院藥劑科,上海 200437;4.復(fù)旦大學(xué)附屬兒科醫(yī)院藥劑科,上海 201102)
基因治療是將基因(主要為DNA或siRNA)傳遞到病人特定細(xì)胞中,從而促進(jìn)或抑制目標(biāo)蛋白質(zhì)的表達(dá),達(dá)到治療人類疾病的目的[1]。由于基因片段容易被核酸酶降解,且?guī)ж?fù)電荷,相對分子質(zhì)量較大,很難通過帶負(fù)電荷的細(xì)胞膜,這就需要利用基因載體來保護(hù)并傳遞基因片段進(jìn)入到細(xì)胞內(nèi)[2]。基因載體既要保證高的轉(zhuǎn)染效率,又要有較低的細(xì)胞毒性。因此,發(fā)展低毒高效的基因傳遞載體是基因治療成功應(yīng)用的重要前提。
基因載體分病毒載體和非病毒載體兩大類[2]。病毒載體的優(yōu)點(diǎn)是靶基因表達(dá)效率高,但同時也有免疫原性、可能激活原癌基因引發(fā)腫瘤,及難以大量制備等缺點(diǎn),從而限制了其臨床應(yīng)用。非病毒基因載體的優(yōu)勢在于免疫原性弱,制備方便,對基因材料的要求限制少[3]。非病毒基因載體分為聚合物和脂質(zhì)體兩大類,前者包括聚乙烯亞胺(polyethylenimine,PEI)、殼聚糖(chitosan)、聚氨基酸(polyamino acid,PAA)、樹枝狀大分子等;后者有陽離子脂質(zhì)體、DNA脂質(zhì)涂層復(fù)合物、類脂質(zhì)體等。非病毒基因載體中的PAA可以被體內(nèi)的酶降解,在器官內(nèi)很少蓄積,是一類非常有應(yīng)用前景的基因載體。PAA中的聚精氨酸(polyarginine,PLR)由于在溶液中帶正電,可以攜帶帶負(fù)電的基因片段跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)入細(xì)胞中[4],這一特性讓PLR可用作基因治療的載體。本文綜述了PLR及其衍生物作為基因載體應(yīng)用的研究進(jìn)展。
精氨酸是人體半(條件)必需氨基酸,在生理?xiàng)l件下帶正電荷。PLR由多個精氨酸上的氨基和羧基脫水縮合形成(見圖1),是一種能夠跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)的多肽,PLR和精氨酸可以促進(jìn)藥物穿過細(xì)胞膜,增加進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的藥物比例。精氨酸是細(xì)胞膜穿透肽 (membrane penetrating peptides,MPPs) 中發(fā)揮主要作用的一種氨基酸[5],也在蛋白質(zhì)轉(zhuǎn)導(dǎo)區(qū)域 (protein transduction domains,PTDs) 和HIV Tat蛋白質(zhì)中大量存在。
圖1 聚精氨酸的化學(xué)結(jié)構(gòu)式
在眾多的基因載體材料中,雖然部分材料有較高的基因轉(zhuǎn)染效率,但是這些材料本身不能完全解決免疫原性、生物相容性及體內(nèi)降解性等問題。為了解決這些問題,最好能采用人體自身組成分子,使材料最接近人體的組成?;谶@一思路,氨基酸均聚與共聚材料可以成為潛在的理想基因載體。PLR有很好的生物相容性,毒性較低;易于降解,降解產(chǎn)物為精氨酸,可以被人體利用;體外研究發(fā)現(xiàn)其基因轉(zhuǎn)染的效率較高;價格相對較低,容易制備,通過控制條件合成不同分子質(zhì)量的PLR,給研究和應(yīng)用帶來了極大的便利。
2.1 PLR進(jìn)入細(xì)胞的途徑 生理?xiàng)l件下PLR分子帶正電,細(xì)胞膜表面有大量帶有負(fù)電的糖蛋白及磷脂,兩者可以通過靜電作用相互吸引結(jié)合,再經(jīng)內(nèi)吞過程進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)。Fuchs等[6]研究發(fā)現(xiàn),PLR的入胞途徑有以下幾步:(1)與細(xì)胞表面的硫酸類肝素(heparan sulfate,HS)結(jié)合,生成硫酸類肝素蛋白質(zhì)多糖(HSPGs),另外由于PLR帶正電,還可以與細(xì)胞表面帶負(fù)電的糖類結(jié)合;(2)HSPGs通過HS介導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)吞作用,以囊泡的形式進(jìn)入到細(xì)胞內(nèi);(3)在囊泡轉(zhuǎn)運(yùn)的過程,HSPGs中的HS被細(xì)胞內(nèi)的類肝素酶水解,釋放出游離PLR;(4)PLR濃度足夠高時,能夠破壞囊泡的雙脂質(zhì)層,從而進(jìn)入到細(xì)胞質(zhì)中。
2.2 PLR相對分子質(zhì)量與基因轉(zhuǎn)染效率的關(guān)系 對于聚合物基因載體,相對分子質(zhì)量是影響基因轉(zhuǎn)染效率的重要因素[7,8]。同一類載體的相對分子質(zhì)量越高越容易與基因片段結(jié)合,荷載基因片段的能力越強(qiáng),但由于高相對分子質(zhì)量載體不易與基因片段解離,進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)難以釋放出基因片段,轉(zhuǎn)染效率反而會降低,并且載體的細(xì)胞毒性也與高相對分子質(zhì)量密切相關(guān)。而低相對分子質(zhì)量的基因載體形成的載體-基因片段復(fù)合物在水溶液中容易解體[9],荷載基因片段的能力不強(qiáng),也無法達(dá)到較高的轉(zhuǎn)染效率。Hashimoto等[10]研究了聚合度分別為60、180和730的3種PLR,發(fā)現(xiàn)PLR載基因的轉(zhuǎn)染效率與PLR中陽離子基團(tuán)(cationic groups)數(shù)與基因片段中陰離子基團(tuán)(anionic groups)數(shù)之比(C/A)有關(guān),當(dāng)C/A為6時,3種PLR的轉(zhuǎn)染效率最高;另外,PLR的轉(zhuǎn)染效率與相對分子質(zhì)量有關(guān),相對分子質(zhì)量越大,基因轉(zhuǎn)染效率越高。因此,要使轉(zhuǎn)染效率達(dá)到最高,需要選擇較高相對分子質(zhì)量的PLR。Koo等[11]利用HEK293細(xì)胞對平均相對分子質(zhì)量分別為1.0×104、4.1×104和8.3×104的3種PLR基因轉(zhuǎn)染效率進(jìn)行了比較,發(fā)現(xiàn)相對分子質(zhì)量高(4.1×104和8.3×104)PLR的基因轉(zhuǎn)染效率是相對分子質(zhì)量低(1.0×104)PLR的100倍,轉(zhuǎn)染效率與PLR的胍基(N)和基因片段的磷酸基團(tuán)(P)數(shù)量比(N/P)有關(guān),N/P為10左右時,基因轉(zhuǎn)染效率最高。在細(xì)胞毒性方面,相對分子質(zhì)量高的PLR的毒性比相對分子質(zhì)量低的PLR大,相對分子質(zhì)量為8.3×104和4.1×104的PLR,IC50值分別為70和100 μg/ml,而相對分子質(zhì)量為1.0×104的PLR在濃度為100 μg/ml時未顯示出明顯的細(xì)胞毒性??傮w來說,PLR載體相對分子質(zhì)量增大后,基因轉(zhuǎn)染效率隨之提高,但細(xì)胞毒性也會增加,PLR作為基因載體應(yīng)用需要選擇合適的相對分子質(zhì)量。
2.3 PLR衍生物的結(jié)構(gòu)優(yōu)化與應(yīng)用
2.3.1 PLR直接作為基因載體 相對分子質(zhì)量高的PLR由于細(xì)胞毒性較大,不適合直接作為基因載體使用,而相對分子質(zhì)量低的PLR細(xì)胞毒性低,可以直接用作基因載體。Kim等[5]以15聚精氨酸(R15)為siRNA載體,在體外和體內(nèi)進(jìn)行了RNA干擾研究,發(fā)現(xiàn)R15與siRNA可形成穩(wěn)定的復(fù)合物,能夠被體外培養(yǎng)細(xì)胞有效攝取,細(xì)胞轉(zhuǎn)染24 h后,siRNA出現(xiàn)在細(xì)胞核周圍區(qū)域,提示siRNA在胞內(nèi)形成了RNA誘導(dǎo)的沉默復(fù)合物(RNA-induced silencing complex,RISC),后者可以阻斷mRNA的翻譯過程。對SKOV-3細(xì)胞移植瘤小鼠瘤內(nèi)注射原癌基因人類表皮生長因子受體2(human epidermal growth factor receptor,HER-2)特異性siRNA/肽復(fù)合物,小鼠的腫瘤明顯小于對照組,處理組腫瘤細(xì)胞中的HER-2基因表達(dá)也明顯下降。
D型和L型精氨酸形成的PLR與單一構(gòu)型精氨酸聚合物相比,由于結(jié)構(gòu)更為復(fù)雜,在溶液中近似于球狀,正電荷更多地分布于分子內(nèi)部,分子表面的正電荷數(shù)量減少,從而降低了對細(xì)胞的毒性。Ma等[12]對一系列的D型和L型精氨酸聚合物載體進(jìn)行了研究,單純的L型精氨酸(R)組成的8聚體(R8)細(xì)胞攝取率并不高,但毒性最小。R8中D型精氨酸(r)數(shù)量增加后,細(xì)胞攝取率會有較大提高,但細(xì)胞毒性也隨之提高。R8組成序列為(rR)3R2時,細(xì)胞攝取率較高而毒性較低。D型精氨酸(r)的數(shù)量不超過4個的幾種R8,濃度100 μmol/L時與細(xì)胞孵育12 h后,超過75%的細(xì)胞仍能存活。對小鼠的毒性研究中也發(fā)現(xiàn)了同樣的現(xiàn)象。研究者認(rèn)為序列為(rR)3R2的R8是最有潛力的載體。
2.3.2 精氨酸功能化的樹枝狀大分子作為基因載體 聚酰胺胺(polyamidoamine,PAMAM)樹枝狀大分子為第一個合成的樹狀大分子,已廣泛應(yīng)用于基因載體研究,具有轉(zhuǎn)染效率高、毒性低等優(yōu)點(diǎn)。精氨酸和聚酰胺-胺類似,可以通過反應(yīng)形成聚合型的樹枝狀大分子。Luo等[13]應(yīng)用點(diǎn)擊化學(xué)法以精氨酸為基本單元合成了5代(G5A)和6代(G6A)的多肽型樹枝狀大分子,并對其介導(dǎo)的體外和體內(nèi)基因轉(zhuǎn)染進(jìn)行了研究。該基因載體與質(zhì)粒DNA形成的復(fù)合物粒徑為180~250 nm,載體能有效地保護(hù)質(zhì)粒DNA(pDNA)不被核酸酶降解。對比研究顯示,G5A的細(xì)胞毒性遠(yuǎn)低于PEI,G5A/DNA對Hela等8種細(xì)胞株的轉(zhuǎn)染率高于PEI/DNA,其中對Hela細(xì)胞株的轉(zhuǎn)染率最高,為PEI/DNA的2.3倍。體內(nèi)研究也有同樣的發(fā)現(xiàn),荷瘤小鼠腫瘤內(nèi)注射G5A/DNA復(fù)合物,腫瘤中樹枝狀G5A組DNA的表達(dá)為PEI組的6倍。
2.3.3 二硫鍵橋連的PLR作為基因載體 陽離子聚合物載體由二硫鍵橋連后,可以降低載體的細(xì)胞毒性,增加基因轉(zhuǎn)染效率[14],并且由于二硫鍵在細(xì)胞質(zhì)內(nèi)很快被酶打開,基因片段的釋放也會加快[3]。為克服相對分子質(zhì)量低的PLR基因轉(zhuǎn)染效率較低的問題,將相對分子質(zhì)量低的PLR分子經(jīng)過二硫鍵橋連后加以克服,同時又能保持較低的細(xì)胞毒性。Won等[15]把兩端為半胱氨酸(Cys)的D型9聚精氨酸[Cys-(D-R9)-Cys]通過分子間氧化合成了二硫鍵橋接的聚精氨酸[poly-(oligo-D-arginine),rPOA],數(shù)均(Mn)和質(zhì)均(Mw)相對分子質(zhì)量分別為9.475 7×104和9.620 4×104,rPOA與DNA形成的復(fù)合物,平均粒徑在150 nm左右,N/P為14時Zeta電位15 mV,能保護(hù)復(fù)合物中的DNA不被胎牛血清中的酶降解。體外對照研究顯示,rPOA在H9c2細(xì)胞株中的轉(zhuǎn)染效率要小于PEI,而在HEK293和L2細(xì)胞中轉(zhuǎn)染效率與PEI相當(dāng),均顯著高于相對分子質(zhì)量高的多聚D型精氨酸[poly(D-arginine),PDR]和D-R9,而且二硫鍵的引入降低了載體的毒性,rPOA的細(xì)胞毒性遠(yuǎn)小于PEI。體內(nèi)轉(zhuǎn)染熒光素酶DNA的效率方面,rPOA是PEI的20倍,是裸DNA的100倍。Won等[16]又對rPOA進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),siRNA/rPOA>7.5時,rPOA能完全與siRNA縮合;siRNA/rPOA≥5時,rPOA能保護(hù)siRNA不被小鼠血清降解,siRNA/rPOA復(fù)合物平均粒徑為(90.3±2.5) nm,Zeta電位為(36.7±6.4) mV。SCC細(xì)胞對rPOA的攝取率與PEI相當(dāng),高于PLR,毒性卻小很多。用轉(zhuǎn)染血管內(nèi)皮生長因子(VEGF)的siRNA(siVEGF)/rPOA處理的SCC細(xì)胞,VEGF的分泌減少了50%,比siVEGF/PEI組還少30%(siVEGF/PEI組VEGF的分泌減少20%)。研究還發(fā)現(xiàn)谷胱甘肽可促進(jìn)siVEGF/rPOA的降解,這增強(qiáng)了siRNA在細(xì)胞內(nèi)的靶向性。腫瘤內(nèi)注射siVEGF/rPOA能抑制小鼠SCC細(xì)胞皮下移植瘤的生長,移植瘤中的VEGF表達(dá)水平僅為裸siVEGF組的50%。
2.3.4 PLR-硫酸葡聚糖復(fù)合物作為基因載體 硫酸葡聚糖(dextran sulfate)廣泛被用作核酸分子雜交促進(jìn)劑,能夠提高核酸探針的雜交率,PLR經(jīng)硫酸葡聚糖修飾后,可以提高所荷載基因的細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)染效率。Cho等[17]利用PLR和硫酸葡聚糖組成的復(fù)合物(PLR-DEX),傳遞表皮生長因子受體(EGFR) siRNA進(jìn)行了治療咽、喉腫瘤的實(shí)驗(yàn)研究:制備的載體/siRNA復(fù)合物,平均粒徑<200 nm,載體∶siRNA質(zhì)量比為15∶1。經(jīng)共聚焦激光掃描顯微鏡和流式細(xì)胞分析發(fā)現(xiàn),與PLR/EGFR siRNA復(fù)合物比較,PLR-DEX/EGFR siRNA復(fù)合物中的EGFR siRNA被喉癌細(xì)胞(Hep-2細(xì)胞)和人咽癌細(xì)胞(FaDu細(xì)胞)系攝取率較高,故兩種細(xì)胞系中EGFR基因沉默效率也最高。在FaDu移植瘤小鼠模型中,腫瘤內(nèi)注射PLR-DEX/siEGFR復(fù)合物能抑制腫瘤的生長,移植瘤中EGFR基因表達(dá)也受到抑制。
2.3.5 PLR-透明質(zhì)酸復(fù)合物作為基因載體 透明質(zhì)酸(hyaluronic acid,HA)是天然存在的有黏膜黏附作用的多糖,在體內(nèi)關(guān)節(jié)、眼、肺、小腸等部位大量分布,可被生物降解,在體液中帶負(fù)電荷。HA能與細(xì)胞表面的CD44 受體結(jié)合,在許多上皮來源性腫瘤中CD44 受體表達(dá)上調(diào)[18],因此,HA可以增強(qiáng)載體的腫瘤靶向作用。當(dāng)帶正電的PLR和帶負(fù)電的HA混合后,兩者會在溶液中形成團(tuán)狀的納米結(jié)構(gòu),HA可以降低PLR的細(xì)胞毒性。Oyarzun-Ampuero等[19]利用PLR和HA在水溶液中混合制備了球狀的納米粒載體,并對其進(jìn)行了評價:平均粒徑范圍為116~155 nm,Zeta電位與兩者的比例有關(guān),為(+31.3~-35.9) mV,用相對分子質(zhì)量高的HA和PLR制備的納米粒在生理?xiàng)l件下比較穩(wěn)定,符合作為基因載體的要求。Kim等[20]對PLR和HA物理混合組成的基因載體HP101進(jìn)行了研究,其 HA和PLA的質(zhì)量比(w∶w)為50%∶50%,與單純的PLR相比,HP101對siRNA的傳遞效率增加,siRNA/HP101復(fù)合物對B16F10細(xì)胞的半數(shù)中毒量(TC50值)比siRNA/PLR增加了23倍,細(xì)胞毒性大大降低,而細(xì)胞對兩者及其基因復(fù)合物的攝取率相差不大。在紅色熒光蛋白質(zhì)(red fluorescent protein,RFP)表達(dá)的B16F10細(xì)胞,經(jīng)siRFP/HP101復(fù)合物轉(zhuǎn)染處理后,RFP基因的表達(dá)水平降低了80%;對B16F10細(xì)胞移植瘤內(nèi)注射siRFP/HP101復(fù)合物后,RFP基因在腫瘤組織的表達(dá)減少,并且siRNA在CD44+細(xì)胞中轉(zhuǎn)染效率高于CD44-細(xì)胞,顯示出一定的靶向作用。
2.3.6 mPEG-聚乳酸-b-PLR作為基因載體 聚乙二醇(PEG)具有無毒、無刺激性及良好親水性的特點(diǎn),能與陽離子聚合物連接以增加后者在血漿中的穩(wěn)定性,降低其毒性,也能避免聚合物被網(wǎng)狀內(nèi)皮系統(tǒng)(RES)清除[21],但同時也會減少細(xì)胞攝取和內(nèi)涵體逃逸[22]。聚乳酸(polylactic acid,PLA)是乳酸脫水聚合物,可生物降解,有良好的生物相容性,溶于普通溶劑,因此在生物醫(yī)學(xué)領(lǐng)域被廣泛應(yīng)用[23],PLA修飾基因載體后可以降低其細(xì)胞毒性。Zhao等[24]合成了聚乙二醇-聚乳酸-b-聚精氨酸(mPEG-PLA-b-R15)基因載體,該載體形成的納米粒粒徑54.3 nm,Zeta電位34.8 mV。mPEG-PLA-b-R15對MCF-7細(xì)胞的毒性要遠(yuǎn)小于PEI和R15,1000 μg/ml的mPEG-PLA-b-R15和R15處理MCF-7細(xì)胞24 h后,細(xì)胞存活率分別為83.4%和69.9%,而100 μg/ml的PEI處理MCF-7細(xì)胞24 h后,細(xì)胞存活率為0%,前者顯示出較低的細(xì)胞毒性,這可能與PLA、PLR可以降解和合適的Zeta電位有關(guān)。mPEG-PLA-b-R15與EGFR-siRNA形成的復(fù)合物能使MCF-7細(xì)胞EGFR的表達(dá)減少65%,靜脈注射該復(fù)合物能顯著地抑制荷瘤(MCF-7細(xì)胞)小鼠移植瘤的生長及EGFR的表達(dá),且裸鼠未發(fā)生固有性免疫應(yīng)答和體重下降現(xiàn)象,表明該載體對裸鼠幾乎沒有毒性。
2.3.7 殼聚糖-PLR作為基因載體 殼聚糖帶正電荷,本身可以作為基因載體,具有生物可降解性和良好生物相容性的特點(diǎn),還有黏膜黏附和穿透增強(qiáng)的作用,但殼聚糖作為基因載體的缺點(diǎn)是轉(zhuǎn)染效率比較低[25]。殼聚糖與PLR連接后,既可以降低PLR的細(xì)胞毒性,又能產(chǎn)生較高的轉(zhuǎn)染效率。Noh等[26]把PEG、PLR與殼聚糖相連,制備了一種新型的基因載體,并與殼聚糖、PEG-PLR和殼聚糖-PLR進(jìn)行了比較,發(fā)現(xiàn)PEG-PLR-殼聚糖對細(xì)胞的毒性比殼聚糖-PLR和PLR低,15 μg/ml的PEG-殼聚糖-PLR/siGL2處理A549細(xì)胞,細(xì)胞存活率為83.5%。殼聚糖與PLR相連后提高了基因的轉(zhuǎn)染效率,殼聚糖-PLR(77.89%)和PEG-PLR-殼聚糖(79.55%)的基因轉(zhuǎn)染效率明顯高于殼聚糖(1.55%)、PEG-殼聚糖(2.67%)和PEG-PLR(2.62%),也高于PLR(26.19%)。荷瘤(B16F10-RFP細(xì)胞)小鼠腫瘤內(nèi)注射PEG-PLR-殼聚糖/siRFP能明顯降低移植瘤中RFP基因表達(dá)。由此可見,利用PEG和殼聚糖對PLR進(jìn)行修飾可以降低毒性,同時提高基因轉(zhuǎn)染效率。
在基因治療領(lǐng)域,開發(fā)能夠高效、安全傳遞基因進(jìn)入細(xì)胞并發(fā)揮作用的載體系統(tǒng)是一個主要研究方向。PLR及其衍生物是一個很有前景的載體系統(tǒng),大量的體內(nèi)外研究證實(shí),PLR及其衍生物是合適的非病毒基因載體材料,特別是對PLR結(jié)構(gòu)進(jìn)行修飾優(yōu)化后,保持了其生物相容性和可降解性的優(yōu)點(diǎn),初步克服了基因轉(zhuǎn)染效率低,細(xì)胞毒性大的缺點(diǎn)。雖然各國科學(xué)家在PLR基因載體研究中取得了進(jìn)展,但離實(shí)際應(yīng)用還有一段距離,未來的研究要解決的問題是:(1)降低載體成本,高純度的PLR及其衍生物價格仍然較高,限制了其廣泛應(yīng)用和研究;(2)載體的進(jìn)一步優(yōu)化,以提高載體的轉(zhuǎn)染效率;(3)載體的特性改進(jìn),根據(jù)需要改善載體材料的性能,如降解時間、基因與載體的解離部位等;(4)載體的靶向性,確保基因片段能在特定的細(xì)胞中發(fā)揮作用,減少對其他細(xì)胞的影響;(5)載體的轉(zhuǎn)染效率與細(xì)胞類型有關(guān),而目前研究仍限于少數(shù)細(xì)胞系,需要在更多的細(xì)胞系中進(jìn)行實(shí)驗(yàn)研究。迄今為止,PLR及其衍生物作為基因載體的研究僅在細(xì)胞和動物層面進(jìn)行,離實(shí)際的臨床應(yīng)用還有很長的路要走,相信經(jīng)過研究者不懈的努力,PLR及其衍生物作為基因載體一定會在基因治療中取得長足的進(jìn)展。
【參考文獻(xiàn)】
[1]Nam H Y,Nam K,Lee M,etal.Dendrimer type bio-reducible polymer for efficient gene delivery[J].J Control Release,2012,160(3):592-600.
[2]Eguchi A,Dowdy S F.siRNA delivery using peptide transduction domains[J].Trends Pharmacol Sci,2009,30(7):341-345.
[3]Kim T I,Ou M,Lee M,etal.Arginine-grafted bioreducible poly(disulfide amine) for gene delivery systems[J].Biomaterials,2009,30(4):658-664.
[4]Lundberg M,Wikstr?m S,Johansson M.Cell surface adherence and endocytosis of protein transduction domains[J].Mol Ther,2003,8(1):143-150.
[5]Kim S W,Kim N Y,Choi Y B,etal.RNA interferenceinvitroandinvivousing an arginine peptide/siRNA complex system[J].J Control Release,2010,143(3):335-343.
[6]Fuchs S M,Raines R T.Pathway for polyarginine entry into mammalian cells[J].Biochemistry,2004,43(9):2438-2444.
[7]Kunath K,von Harpe A,F(xiàn)ischer D,etal.Low-molecular-weight polyethylenimine as a non-viral vector for DNA delivery:comparison of physicochemical properties,transfection efficiency andinvivodistribution with high-molecular-weight polyethylenimine[J].J Control Release,2003,89(1):113-125.
[8]Breunig M,Lungwitz U,Liebl R,etal.Gene delivery with low molecular weight linear polyethylenimines[J].J Gene Med,2005,7(10):1287-1298.
[10]Hashimoto T,Kawazu T,Nagasaki T,etal.Quantitative comparison between poly (L-arginine) and poly (L-lysine) at each step of polyplex-based gene transfection using a microinjection technique[J].Sci Technol Adv Mater,2012,13(1):015009.
[11]Koo H,Kang H,Lee Y.Analysis of the relationship between the molecular weight and transfection efficiency/cytotoxicity of poly-L-arginine on a mammalian cell line[J].Bull Korean Chem Soc,2009,30(4):927-930.
[12]Ma Yan,Gong Cheng,Ma YiLong,etal.Direct cytosolic delivery of cargoesinvivoby a chimera consisting ofD- andL-arginine residues[J].J Control Release,2012,162(2):286-294.
[13]Luo Kui,Li CaiXia,Li Li,etal.Arginine functionalized peptide dendrimers as potential gene delivery vehicles[J].Biomaterials,2012,33(19):4917-4927.
[14]Tanaka K,Kanazawa T,Ogawa T,etal.Disulfide crosslinked stearoyl carrier peptides containing arginine and histidine enhance siRNA uptake and gene silencing[J].Int J Pharm,2010,398(1-2):219-224.
[15]Won Y W,Kim H A,Lee M,etal.Reducible poly(oligo-D-arginine) for enhanced gene expression in mouse lung by intratracheal injection[J].Mol Ther,2010,18(4):734-742.
[16]Won Y W,Yoon S M,Lee K M,etal.Poly(oligo-D-arginine) with internal disulfide linkages as a cytoplasm-sensitive carrier for siRNA delivery[J].Mol Ther,2011,19(2):372-380.
[17]Cho H J,Chong S,Chung S J,etal.Poly-L-arginine and dextran sulfate-based nanocomplex for epidermal growth factor receptor (EGFR) siRNA delivery:its application for head and neck cancer treatment[J].Pharm Res,2012,29(4):1007-1019.
[18]Platt V M,Szoka F C Jr.Anticancer therapeutics:targeting macromolecules and nanocarriers to hyaluronan or CD44,a hyaluronan receptor[J].Mol Pharm,2008,5(4):474-486.
[19]Oyarzun-Ampuero F A,Goycoolea F M,Torres D,etal.A new drug nanocarrier consisting of polyarginine and hyaluronic acid[J].Eur J Pharm Biopharm,2011,79(1):54-57.
[20]Kim E J,Shim G,Kim K,etal.Hyaluronic acid complexed to biodegradable polyL-arginine for targeted delivery of siRNAs[J].J Gene Med,2009,11(9):791-803.
[21]Sato A,Choi S W,Hirai M,etal.Polymer brush-stabilized polyplex for a siRNA carrier with long circulatory half-life[J].J Control Release,2007,122(3):209-216.
[22]Ayano E,Karaki M,Ishihara T,etal.Poly (N-isopropylacrylamide)-PLA and PLA blend nanoparticles for temperature-controllable drug release and intracellular uptake[J].Colloids Surf B:Biointerfaces,2012,99:67-73.
[23]Efthimiadou E K,Tziveleka L A,Bilalis P,etal.Novel PLA modification of organic microcontainers based on ring opening polymerization:synthesis,characterization,biocompatibility and drug loading/release properties[J].Int J Pharm,2012,428(1-2):134-142.
[24]Zhao ZhiXia,Gao ShanYun,Wang JianCheng,etal.Self-assembly nanomicelles based on cationic mPEG-PLA-b-Polyarginine(R15) triblock copolymer for siRNA delivery[J].Biomaterials,2012,33(28):6793-6807.
[25]Mao ShiRui,Sun Wei,Kissel T.Chitosan-based formulations for delivery of DNA and siRNA[J].Adv Drug Deliv Rev,2010,62(1):12-27.
[26]Noh S M,Park M O,Shim G,etal.Pegylated poly-L-arginine derivatives of chitosan for effective delivery of siRNA[J].J Control Release,2010,145(2):159-164.