王耀晟, 程曉曙, 洪葵 ,吳宗貴, 李毅剛
人體正常核心體溫保持在36.6~37.6 ℃,暴露于極端寒冷時,體內(nèi)核心溫度穩(wěn)態(tài)被破壞[1],刺激交感神經(jīng),影響血管收縮,造成血壓、心率波動,誘導(dǎo)血小板活化、促進(jìn)血栓形成[2]。低溫誘導(dǎo)心肌損傷的細(xì)胞和分子生物學(xué)機(jī)制仍不完全清楚。體外研究報(bào)告發(fā)現(xiàn)低溫刺激加速心肌細(xì)胞(CMs)凋亡[3]。凋亡的機(jī)制涉及許多方面,如線粒體膜通透性、細(xì)胞內(nèi)活性氧簇(ROS)和鈣離子水平等[4]。線粒體膜電位(ΔΨm)破壞可導(dǎo)致電子傳遞鏈中斷,停止氧化磷酸化,并增加細(xì)胞內(nèi)活性氧,從而促進(jìn)細(xì)胞損傷[5]。細(xì)胞內(nèi)鈣超載,也可導(dǎo)致異常線粒體氧化磷酸化,造成細(xì)胞的不可逆的損害[6]。故此本研究探討了低溫刺激誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞損傷與線粒體途徑細(xì)胞凋亡、ROS爆發(fā),以及細(xì)胞內(nèi)鈣超載的關(guān)聯(lián)性。凋亡調(diào)節(jié)蛋白Bim是Bcl-2家族中的促凋亡成員,其在各個器官中廣泛表達(dá)[7]。在不同類型細(xì)胞中,Bim的轉(zhuǎn)錄水平、亞細(xì)胞定位和磷酸化形式各不相同[8]。目前,Bim在低溫刺激引起心肌細(xì)胞凋亡中的具體機(jī)制不明。研究發(fā)現(xiàn)Bim的上游存在調(diào)控物質(zhì),可能與細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)蛋白激酶(ERK)傳導(dǎo)通路有關(guān)。抑制ERK可產(chǎn)生Bim的上調(diào)效應(yīng)[9]。而同屬絲裂原活化的蛋白激酶(MAPK)亞家族成員的ERK5是否參與其中,少見報(bào)道。本研究著重探討ERK5 / Bim途徑在低溫誘導(dǎo)心肌細(xì)胞損傷及凋亡中的調(diào)控作用。
實(shí)驗(yàn)動物與材料:2012-01至2012-12選擇新生1~2天的sprague dawley(SD)乳鼠(中國科學(xué)院上海實(shí)驗(yàn)動物中心,合格證號: 中科院動管會第005號)。改良Eagle 培養(yǎng)基( DMEM) 、胎牛血清、胰蛋白酶 (美國Gibco 公司) ,培養(yǎng)皿( 美國Corning公司),5-溴脫氧尿嘧啶核苷(BrdU,美國Sigma 公司),脂質(zhì)體轉(zhuǎn)染試劑盒(美國Invitrogen公司),蛋白抽提試劑盒(武漢博士德公司)。羊抗鼠 Bim EL抗體、ERK5抗體、p-ERK5抗體(北京愛迪博公司),β-肌動蛋白(β-actin內(nèi)參照)抗體和抗山羊活化辣根過氧化物酶-IgG抗體(美國Santa Cruz 公司),化學(xué)發(fā)光試劑盒(英國Amersham公司)。膜聯(lián)蛋白V- 熒光素 /碘化丙啶(Annexin V-FITC / PI)細(xì)胞凋亡檢測試劑盒(美國 BD Pharmingen公司)。鈣離子熒光(Fluo-3AM)探針(北京泛博生化公司)。 6 -羧基-2', 7'-二氯二氫熒光素二乙酸酯(6-carboxy-H2DCFHDA)、5, 5', 6, 6'- 四氯 - 1, 1, 3, 3'- 四乙基苯并咪唑-硫雜羰花青碘化物(JC-1,美國Invitrogen公司)。
原代心肌細(xì)胞培養(yǎng):乳鼠浸泡在70%酒精內(nèi)麻醉處死。取心室組織溫浴PBS溶液洗滌后剪碎,以0.25%胰蛋白酶在37℃溫浴消化10分鐘。加入含10%胎牛血清DMEM終止消化。棄上清液后加入0.25%胰蛋白酶在37℃溫浴消化15分鐘,收集上清液。上述消化步驟重復(fù)四次。收集所有上清液室溫下1500 轉(zhuǎn)/分鐘離心10分鐘,細(xì)胞重懸后以 5×104cells/cm2密 度 鋪 皿 培 養(yǎng), 加 入 0.1 ml/ L BrdU。 24小時后換液備實(shí)驗(yàn)用。
小干擾RNA干預(yù):針對大鼠Bim的siRNA購自美國Sigma公司(參考序列編號:NM_022612)。大鼠ERK5特異性siRNA設(shè)計(jì)序列如下:#1:5'-CAGUCACUUGUGCCACCUATT-3'# 2:5'-GGAGGAAUUCUUAAACCAATT-3';# 3:5'-GGCCCUGUAUCUCAGACUATT-3'(參考序列編號:NM_002749)。胰蛋白酶消化心肌細(xì)胞,接種于60毫米規(guī)格平皿,培養(yǎng)24小時后轉(zhuǎn)染siRNA。使用脂質(zhì)體為轉(zhuǎn)染介質(zhì),以非編碼siRNA作為對照。轉(zhuǎn)染 48小時后,用于低溫刺激干預(yù)。
低溫刺激干預(yù):低溫刺激設(shè)定為:細(xì)胞置于35℃、5%CO2細(xì)胞培養(yǎng)箱,每天8小時,共干預(yù)4天(共計(jì)32小時的低溫刺激)。低溫刺激外的時間,細(xì)胞置于正常培養(yǎng)條件下(37℃,5%CO2)。對照組設(shè)定為正常37℃,5%CO2條件中全程培養(yǎng)4天。
實(shí)驗(yàn)分組:對照組;低溫刺激組;低溫刺激加非編碼siRNA即陰性對照組;低溫刺激加Bim siRNA組(加Bim組);低溫刺激加ERK5 siRNA組(加ERK5組);低溫刺激加ERK5 siRNA、Bim siRNA共轉(zhuǎn)染組(共轉(zhuǎn)染組)。所有實(shí)驗(yàn)檢測均重復(fù)3次。
蛋白質(zhì)的提取和免疫印跡分析:胰酶消化法收集各實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞,蛋白提取遵試劑盒說明書。通過蛋白定量分析儀(德國Eppendorf公司)進(jìn)行蛋白定量,-20℃儲存蛋白樣本用于免疫印跡分析(Western blot)??偟鞍滋崛∥镆?%凝膠電泳后半干轉(zhuǎn)至硝酸纖維素膜,予以1:200稀釋的BimEL、ERK5 / 磷酸化ERK5抗體,1:2000稀釋的β-肌動蛋白抗體孵育過夜。TBST緩沖液洗膜,室溫下以1:10000稀釋的抗山羊IgG-HRP孵育60分鐘。TBST緩沖液洗滌后,暴露于化學(xué)發(fā)光試劑,曝光膠片。條帶量化分析使用Image J軟件(美國國立衛(wèi)生研究院)。
細(xì)胞凋亡檢測:采用 Annexin V-FITC / PI細(xì)胞凋亡檢測試劑盒,以流式細(xì)胞儀(美國BD公司)檢測細(xì)胞凋亡。Annexin V-FITC可識別細(xì)胞凋亡, PI作為非特異性的DNA染料,可結(jié)合非存活細(xì)胞。Annexin V-FITC陽性細(xì)胞總百分比視為總細(xì)胞凋亡率。
細(xì)胞內(nèi)鈣離子水平檢測:以 5 μmol/ L Fluo-3AM 加載細(xì)胞,在37℃孵育30分鐘,488 nm氬激光流式細(xì)胞術(shù)進(jìn)行檢測(美國BD公司)。記錄1×104個事件,計(jì)算熒光強(qiáng)度。細(xì)胞內(nèi)鈣離子水平的數(shù)值計(jì)算公式為:[Ca2+]i(nmol / L)= KD(F-F)/(Fmax-F)。Kd=400 nmol / L。Fmax為加入鈣離子載體后的測量值,F(xiàn)min為加入鈣離子螯合劑乙二胺四乙酸后的測量值[10]。
ROS檢測:6 - 羧基 H2DCFHDA 作為細(xì)胞滲透性染料,可被活性氧氧化成高度熒光物質(zhì),用以測量各組細(xì)胞內(nèi)ROS[11]。熒光測定條件設(shè)定為在488 nm激發(fā),測量值單位表示為AU。
線粒體膜電位檢測:線粒體膜電位(ΔΨm)通過JC-1染料結(jié)合流式細(xì)胞儀檢測。 JC-1可聚集在完整的線粒體,發(fā)出明亮的紅色熒光。線粒體膜電位中斷時, JC-1染料聚集受到抑制,以單體形式保持在細(xì)胞質(zhì)中,發(fā)出綠色熒光。 37℃下使用 10 μg/ml JC-1孵育細(xì)胞15分鐘。熒光顯微鏡下觀察紅色和綠色熒光。重懸細(xì)胞后通過流式細(xì)胞儀進(jìn)行熒光強(qiáng)度分析。
統(tǒng)計(jì)分析:數(shù)據(jù)均表示為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差,進(jìn)行單向方差分析(ANOVA)。方差不齊時使用秩和檢驗(yàn)。P<0. 05 認(rèn)為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。統(tǒng)計(jì)圖表由GraphPad Prism 4.0 軟件生成。
與對照組比較,低溫刺激組、加ERK5組、陰性對照組的Bim蛋白表達(dá)明顯增加(低溫刺激組:1.04±0.09,加ERK5組:1.54±0.14,陰性對照組:1.04±0.08 vs 對照組:0.24±0.03),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。 與低溫刺激組比較,加ERK5組Bim蛋白表達(dá)明顯增加(低溫刺激組:1.04±0.09 vs 加 ERK5 組:1.54±0.14,P<0.05),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖1A)。低溫刺激組與對照組比較,心肌細(xì)胞的ERK5蛋白表達(dá)無明顯差異,但磷酸化ERK5蛋白表達(dá)增高(低溫刺激組:0.84±0.05 vs 對照組 0.41±0.02,P<0.01),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01)。低溫刺激組與加Bim組比較, Bim siRNA不影響ERK5表達(dá),但磷酸化ERK5蛋白表達(dá)減低(低溫刺激組:0.84±0.05 vs 加Bim組:0.49±0.03,P<0.01),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。圖1B
圖1 在低溫刺激干預(yù)下的心肌細(xì)胞中,ERK5 siRNA對Bim蛋白表達(dá)的影響(1A),以及Bim siRNA對ERK5 / p-ERK5蛋白表達(dá)的影響(1B)
細(xì)胞凋亡率檢測示低溫刺激組比對照組凋亡率明顯增高[低溫刺激組:(32.45±2.01)% vs 對照組:(9.08±1.46)%,P<0.01]。 Bim siRNA緩解低溫刺激誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡,加Bim組比低溫刺激組明顯減低 [加 Bim 組:(15.88±1.02)% vs 低溫刺激 組 :(32.45±2.01)%,P<0.01], 而 加 ERK5組的ERK5 siRNA導(dǎo)致凋亡率比低溫刺激組進(jìn)一步增高[加ERK5組:(41.30±4.21)%vs 低溫刺激組:(32.45±2.01)%,P<0.01]。Bim siRNA 可取消 ERK5 siRNA的促凋亡作用,加ERK5組比共轉(zhuǎn)染組明顯降低[加ERK5組:(41.30±4.21)% vs 共轉(zhuǎn)染組:(27.01±2.82)%,P<0.05],差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。圖2
低溫刺激下的心肌細(xì)胞內(nèi)存在鈣離子超載,低溫刺激組明顯高于對照組[低溫刺激組:(625±27)nmol / L vs 對照組:(361± 52) nmol/L,P<0.01]。Bim siRNA減弱低溫刺激誘導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載,加Bim組明顯低于低溫刺激組[加Bim組:(469±33)nmol/L vs 低溫刺激組:(625±27) nmol/L,P<0.05]。ERK5 siRNA則加重低溫刺激誘導(dǎo)的細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載,加ERK5組明顯高于低溫刺激組[加ERK5組:(1154±56)nmol/L vs 低溫刺激組:(625±27) nmol/L,P<0.01]。Bim siRNA 可代償 ERK5 siRNA 的鈣離子超載效應(yīng),共轉(zhuǎn)染組明顯低于加ERK5組[共轉(zhuǎn)染組:(673±59) nmol/L vs 加 ERK5 組:(1154±56) nmol/L,P<0.01],差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖3)。非編碼siRNA對細(xì)胞內(nèi)鈣離子水平無影響。
低溫刺激在心肌細(xì)胞中誘導(dǎo)ROS水平增高,低溫刺激組明顯高于對照組(低溫刺激組:10.08±0.85 vs 對 照 組:3.61±0.71,P<0.01 ),Bim siRNA 可抑制此低溫誘導(dǎo)的ROS爆發(fā),加Bim組明顯低于低溫刺激組(加 Bim 組:4.82±0.48 vs 低溫刺激組:10.08±0.85,P<0.01)。 ERK5 siRNA 誘 發(fā) 更 嚴(yán) 重的ROS激活,加ERK5組明顯高于低溫刺激組(加ERK5 組:18.34±1.22 vs 低 溫刺 激組:10.08±0.85,P<0.01), Bim siRNA 則可緩解 ERK5 siRNA 對 ROS活性的增強(qiáng),共轉(zhuǎn)染組明顯低于加ERK5組(共轉(zhuǎn) 染 組:10.02±0.87 vs 加 ERK5 組:18.34±1.22,P<0.01),差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。圖4
圖2 ERK5 siRNA以及Bim siRNA 對低溫刺激下心肌細(xì)胞凋亡的影響。流式細(xì)胞散點(diǎn)圖(2A);各組凋亡率(2B)
圖3 ERK5 siRNA以及Bim siRNA 對低溫刺激下心肌細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載的影響。余注見圖1
圖4 ERK5 siRNA以及Bim siRNA對低溫刺激下心肌細(xì)胞內(nèi)活性氧活動的影響。余注見圖1
心肌細(xì)胞線粒體膜電位在低溫刺激下受到破壞,低溫刺激組明顯低于對照組(低溫刺激組:51.32±5.57 vs 對 照 組:83.29±7.2,P<0.01),Bim siRNA可恢復(fù)低溫刺激損害的ΔΨm,加Bim組明顯高于低溫刺激組(加Bim組:69.26±7.13 vs 低溫刺激組:51.32±5.57,P<0.01),ERK5 siRNA誘導(dǎo)更嚴(yán)重的ΔΨm破壞,加ERK5組明顯低于低溫刺激組(加ERK5組:30.42±8.32 vs 低溫刺激組:51.32±5.57,P<0.01),而 Bim siRNA可代償ERK5 siRNA對ΔΨm的破壞,共轉(zhuǎn)染組明顯高于加 ERK5組(共轉(zhuǎn)染組:47.18±5.11 vs 加ERK5 組:30.42±8.32,P<0.01 )。圖 5
圖5 ERK5 siRNA以及Bim siRNA對低溫刺激下心肌細(xì)胞內(nèi)線粒體膜電位的影響。余注見圖1
低體溫一般指身體核心溫度低于35℃,是對人類機(jī)體存在潛在危害的病理狀態(tài)[12]。 低溫刺激對心臟的損害作用已被廣泛報(bào)道,心肌細(xì)胞損傷及凋亡是重要環(huán)節(jié)。研究表明極短時間的低溫預(yù)處理可緩解心肌缺血再灌注損傷,提高再灌注期間心臟泵功能,發(fā)揮抗心律失常作用[13],提示低溫刺激并非誘導(dǎo)心肌細(xì)胞迅速壞死,而是緩慢的細(xì)胞凋亡。本研究證實(shí)了低溫刺激下心肌細(xì)胞以凋亡為主,而非細(xì)胞完全死亡。
低溫刺激在亞細(xì)胞水平產(chǎn)生多方面的病理變化。作為氧代謝水平極高的細(xì)胞種類,心肌細(xì)胞可產(chǎn)生一系列 ROS ,過高水平的ROS誘導(dǎo)細(xì)胞氧化應(yīng)激,導(dǎo)致細(xì)胞損傷。有研究報(bào)道,低溫刺激可使離體灌流心臟中的活性氧水平增高,并由此損害心肌細(xì)胞線粒體生物能[14]。此外,心肌細(xì)胞內(nèi)鈣超載可導(dǎo)致:線粒體氧化磷酸化障礙;線粒體膜電位下降;ATP代謝水平降低;細(xì)胞質(zhì)磷脂酶和蛋白酶激活,這些均可導(dǎo)致不可逆轉(zhuǎn)的細(xì)胞損害[15]。故此,ROS爆發(fā),Ca2+超載和線粒體膜電位的破壞之間存在并發(fā)關(guān)系。本研究證實(shí)ROS爆發(fā)與細(xì)胞內(nèi)鈣超載均參與低溫刺激誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞損傷,同時證實(shí)了線粒體膜電位損壞,在低溫刺激誘導(dǎo)心肌細(xì)胞損傷發(fā)揮重要作用,并與前述的低溫誘導(dǎo)心肌細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載趨勢相吻合。
研究報(bào)道ERK與B細(xì)胞淋巴瘤/白血病-2基因(Bcl-2)家族通過線粒體途徑密切參與細(xì)胞凋亡激活[16]。本研究在低溫刺激下的心肌細(xì)胞中檢測到明確的Bim蛋白高表達(dá)。通過RNA干擾技術(shù)我們下調(diào)Bim表達(dá),獲得細(xì)胞凋亡率降低、ROS水平減低、鈣超載和線粒體膜電位破壞緩解等效應(yīng)。結(jié)果高度提示Bim作為促凋亡蛋白在低溫誘導(dǎo)的心肌細(xì)胞凋亡及損傷中發(fā)揮重要作用。我們同時發(fā)現(xiàn)低溫刺激下的心肌細(xì)胞中,ERK5以及磷酸化的ERK5 存在高表達(dá),下調(diào)Bim可抑制ERK5磷酸化并起保護(hù)性作用,緩解細(xì)胞凋亡、ROS爆發(fā)、細(xì)胞內(nèi)鈣超載以及線粒體膜電位障礙。下調(diào)ERK5則促進(jìn)Bim蛋白表達(dá),并加重上述低溫誘導(dǎo)的一系列亞細(xì)胞水平損傷。結(jié)果充分體現(xiàn)了ERK5作為Bim上游抑制物的作用,以及ERK5 / Bim間存在負(fù)反饋關(guān)系。
綜上所述,在低溫刺激下的心肌細(xì)胞中,下調(diào)ERK5可釋放對Bim的表達(dá)抑制,誘導(dǎo)更高的細(xì)胞凋亡率,以及更嚴(yán)重的細(xì)胞內(nèi)鈣離子超載、ROS活動、線粒體膜電位損傷。下調(diào)Bim則發(fā)揮反向的保護(hù)性作用。結(jié)果顯示ERK5/ Bim途徑在低溫刺激誘導(dǎo)心肌細(xì)胞損傷中的明確調(diào)控作用。
[1]Israel A, Zavala LE, Cierco M, et al. Effect of AT(1) angiotensin II receptor antagonists on the sympathetic response to a cold pressor test in healthy volunteers. Am J Ther, 2007, 14: 183-188.
[2]Aronow WS, Ahn C. Elderly nursing home patients with congestive heart failure after myocardial infarction living in New York City have a higher prevalence of mortality in cold weather and warm weather months. J Gerontol A Biol Sci Med Sci, 2004, 59: 146-147.
[3]L'Ecuyer TJ, Aggarwal S, Zhang JP, et al. Effect of hypothermia on doxorubicin-induced cardiac myoblast signaling and cell death.Cardiovasc Pathol, 2012, 21: 96-104.
[4]王耀晟, 鄒循鋒, 鮑曉明, 等. 去鐵敏在大鼠心肌細(xì)胞原代培養(yǎng)中的保護(hù)性應(yīng)用 . 中國循環(huán)雜志 , 2009, 24: 387-390.
[5]Tsutsui H, Kinugawa S, Matsushima S. Mitochondrial oxidative stress and dysfunction in myocardial remodelling. Cardiovasc Res, 2009, 81: 449-456.
[6]Li XC, Wei L, Zhang GQ, et al. Ca2+cycling in heart cells from ground squirrels: adaptive strategies for intracellular Ca2+homeostasis. PLoS One, 2011, 6: e24787.
[7]羅富良, 孫嘉康, 唐躍, 等. 缺血后適應(yīng)對大鼠移植心臟心肌細(xì)胞凋亡的影響 . 中國循環(huán)雜志 , 2012, 27: 470-472.
[8]Pi?on JD, Labi V, Egle A, et al. Bim and Bmf in tissue homeostasis and malignant disease. Oncogene, 2008, 27( Suppl 1): S41-52.
[9]Takezawa K, Okamoto I, Nishio K, et al. Role of ERK-BIM and STAT3-survivin signaling pathways in ALK inhibitor-induced apoptosis in EML4-ALK-positive lung cancer. Clin Cancer Res, 2011, 17: 2140-2148.
[10]Kumar S, Kain V, Sitasawad SL. Cardiotoxicity of calmidazolium chloride is attributed to calcium aggravation, oxidative and nitrosative stress, and apoptosis. Free Radic Biol Med, 2009, 47: 699-709.
[11]Shao ZH, Sharp WW, Wojcik KR, et al. Therapeutic hypothermia cardioprotection via Akt- and nitric oxide-mediated attenuation of mitochondrial oxidants. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2010, 298:H2164-2173.
[12]Turk EE. Hypothermia. Forensic Sci Med Pathol, 2010, 6: 106-115.
[13]Khaliulin IG, Maslov LN, Podoksenov IuK, et al. Signalling mechanisms of cardioprotective effect of hypothermic preconditioning. Ross Fiziol Zh Im I M Sechenova, 2011, 97: 624-632.
[14]Camara AK, Riess ML, Kevin LG, et al. Hypothermia augments reactive oxygen species detected in the guinea pig isolated perfused heart. Am J Physiol Heart Circ Physiol, 2004, 286: H1289-299.
[15]Kumar S, Kain V, Sitasawad SL. High glucose-induced Ca2+overload and oxidative stress contribute to apoptosis of cardiac cells through mitochondrial dependent and independent pathways. Biochim Biophys Acta, 2012, 1820: 907-920.
[16]Zhang F, Kong DS, Zhang ZL, et al. Tetramethylpyrazine induces G0/G1 cell cycle arrest and stimulates mitochondrial-mediated and caspasedependent apoptosis through modulating ERK/p53 signaling in hepatic stellate cells in vitro. Apoptosis, 2013, 18: 135-149.