陳林,張坤,董偉,楊珂,艾輝,陳祿華
(重慶市干細(xì)胞企業(yè)工程研究中心,重慶 401320)
臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞無血清和含胎牛血清培養(yǎng)體系比較
陳林,張坤,董偉,楊珂,艾輝,陳祿華
(重慶市干細(xì)胞企業(yè)工程研究中心,重慶 401320)
為了比較在無血清與含胎牛血清培養(yǎng)基中人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞的增殖能力、生物學(xué)特性、分化潛能,將臍帶華通氏膠剝出剪碎,分別在無血清與含胎牛血清培養(yǎng)基中培養(yǎng)擴(kuò)增臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞。用MTT法檢測(cè)細(xì)胞增殖活性,并繪制生長(zhǎng)曲線;在倒置顯微鏡下對(duì)細(xì)胞形態(tài)進(jìn)行觀察;利用流式細(xì)胞儀檢測(cè)鑒定其表面標(biāo)記CD73,CD90,CD105,CD14,CD34,CD45,CD79a及HLA-DR的表達(dá);將成骨及成脂誘導(dǎo)液培養(yǎng)1~2周后觀察其細(xì)胞形態(tài)學(xué)變化,用堿性磷酸酶染色鑒定其成骨情況,油紅O染色鑒定其成脂情況。結(jié)果表明:無血清與含胎牛血清培養(yǎng)基所培養(yǎng)的人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞在細(xì)胞形態(tài)、增殖活性、表面標(biāo)記和分化潛能相似;但在無血清培養(yǎng)基成分中無動(dòng)物源蛋白引入,是更理想的人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞培養(yǎng)基種類。
間充質(zhì)干細(xì)胞;細(xì)胞培養(yǎng);無血清培養(yǎng)基;胎牛血清
臍帶中間充質(zhì)干細(xì)胞含量遠(yuǎn)高于骨髓和臍血,且具更強(qiáng)更穩(wěn)定的增殖分化能力[1],且臍帶取材方便,來源充足,對(duì)供者無傷害,病原微生物感染率小,是一種最好的間充質(zhì)干細(xì)胞來源。臍帶中間充質(zhì)干細(xì)胞來源于中胚層,具有自我復(fù)制、多向分化和免疫調(diào)控能力,且能定向分化為成骨細(xì)胞脂肪細(xì)胞、軟骨細(xì)胞、肌細(xì)胞等[2],是各種多功能干細(xì)胞中治療血液疾病和再生醫(yī)學(xué)惟一安全的異體干細(xì)胞[3]。目前,常規(guī)的MSCs培養(yǎng)體系中均加入了一定比例的動(dòng)物血清成分。血清是由不同分子組成的復(fù)雜混合物,給細(xì)胞培養(yǎng)的標(biāo)準(zhǔn)化、細(xì)胞表達(dá)產(chǎn)品的分離純化帶來了很大的困難,同時(shí)動(dòng)物血清內(nèi)的特異蛋白是已被確定的過敏原,可能對(duì)將來臨床應(yīng)用構(gòu)成威脅[4]。無血清培養(yǎng)在很大程度上避免了含血清培養(yǎng)的缺陷。本研究通過比較無血清培養(yǎng)體系和含血清培養(yǎng)體系培養(yǎng)的人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞,探尋了一種無血清培養(yǎng)人間充質(zhì)干細(xì)胞的方法,以達(dá)到臨床治療的應(yīng)用標(biāo)準(zhǔn)。
1.1 實(shí)驗(yàn)材料
主要試劑:DMEM/F12培養(yǎng)基、TrypLE 1X、脂肪細(xì)胞和成骨細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)基均購(gòu)自Gibco公司;胎牛血清FBS購(gòu)自Stemcell公司;無血清培養(yǎng)基購(gòu)自Lonza公司;CD14-FITC,CD34-PE,CD45-FITC,CD79a-PE,HLA-DR FITC購(gòu)自Beckman Coulter公司;CD73-FITC,CD90-FITC,CD105-PE購(gòu)自eBioscience公司;MTT、DMSO和油紅O購(gòu)自Sigma公司;堿性磷酸酶試劑盒購(gòu)自碧云天公司。
主要設(shè)備:二氧化碳培養(yǎng)箱采購(gòu)自Thermo Fisher公司;Bio-Rad 680酶標(biāo)儀購(gòu)自Bio-Rad公司;EpicsXL ADC流式細(xì)胞儀購(gòu)自Bcekman Coulter公司;IX51顯微鏡采購(gòu)自奧林巴斯公司。
所有的臍帶標(biāo)本均來自足月自然分娩或剖宮產(chǎn)的健康產(chǎn)婦,并征得家屬及產(chǎn)婦同意。臍帶采集之前已對(duì)產(chǎn)婦進(jìn)行了艾滋病病毒抗體檢查、乙型肝炎病毒表面抗原、乙型肝炎病毒核心抗體、梅毒螺旋體抗體、丙型肝炎病毒抗體,全部檢查結(jié)果為陰性,合格。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞的分離、培養(yǎng)及擴(kuò)增
在生物安全柜中取出采回的胎兒臍帶,置于培養(yǎng)皿中。將其剪成小段,用無菌PBS充分洗滌除去殘留血液,用鑷子小心除去血管和外膜,分離得到純凈的華通氏膠組織,將其剪碎成1~2 mm3的小塊,將0.5 g組織分別置于無血清培養(yǎng)基及含10%胎牛血清培養(yǎng)基中,并移至T75培養(yǎng)瓶中,置37℃、5%CO2體積濃度的飽和濕度的二氧化碳培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。
每日定期觀察,第5天和第10天全量換液,以后每3天全量換液1次。待培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)細(xì)胞已生長(zhǎng)至80%融合,用TrypLE于室溫下消化并輕輕拍打,鏡下觀察培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)細(xì)胞已完全成為懸液,終止消化過程,以1×104/cm2細(xì)胞濃度傳代擴(kuò)增。
1.2.2 細(xì)胞生長(zhǎng)活性測(cè)定
稱取250 mg MTT,加50 mL滅菌PBS溶液使MTT充分溶解,再用0.22μm的醋酸纖維濾器除菌,4℃避光保存?zhèn)溆谩?/p>
取以無血清培養(yǎng)基培養(yǎng)和含血清培養(yǎng)基培養(yǎng)的狀態(tài)良好的P0代細(xì)胞,分別加入無血清培養(yǎng)基和含血清培養(yǎng)基吹打混勻制成濃度為5×104/mL的細(xì)胞懸液。
取7塊96孔板,在外周孔加入滅菌PBS填充,第二豎排孔加入無血清培養(yǎng)基作為空白對(duì)照,其余每孔接種100μL無血清培養(yǎng)基制成的細(xì)胞懸液,并加入200μL無血清培養(yǎng)基填充,每3天對(duì)96孔板內(nèi)培養(yǎng)基進(jìn)行換液。再取7塊96孔板進(jìn)行以上操作,但將培養(yǎng)基換為含血清培養(yǎng)基,細(xì)胞懸液換為用含血清培養(yǎng)基制備的細(xì)胞懸液。
將96孔板置于二氧化碳培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。培養(yǎng)開始后每24 h分別取出2塊96孔板,在酶標(biāo)儀OD492nm處測(cè)量各孔的吸光值。
計(jì)算各孔波長(zhǎng)吸光度值和空白96孔板吸光度值的差值即A值,以時(shí)間為橫軸,A值為縱軸繪制生長(zhǎng)曲線。
1.2.3 細(xì)胞表面標(biāo)志的鑒定
分別取用含血清和不含血清培養(yǎng)基培養(yǎng)的P2代臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞,用TrypLE消化后制成單細(xì)胞懸液,細(xì)胞濃度為2×106/mL。取100μL細(xì)胞懸液,分別加入抗體10μL于20℃避光孵育20 min。抗體分別為小鼠抗人CD14-FITC,CD34-PE,CD45-FITC,CD79a-PE,HLA-DR-FITC,CD73-FITC,CD90-FITC,CD105-PE。孵育結(jié)束后,洗滌細(xì)胞2遍,加入300μL流式鞘液中,待流式細(xì)胞儀檢測(cè)。
1.2.4 MSCs誘導(dǎo)分化
1)脂肪細(xì)胞誘導(dǎo)分化
收集P2代對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞,以1×104/cm2密度接種于24孔板中,待細(xì)胞達(dá)到60%融合時(shí),去掉原培養(yǎng)基,PBS洗滌1次,更換為脂肪細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每3~4天換液1次,培養(yǎng)7~14天。觀察到脂滴形成時(shí),吸去誘導(dǎo)培養(yǎng)液,PBS洗滌2次,體積分?jǐn)?shù)為4%的多聚甲醛固定15 min,以質(zhì)量分?jǐn)?shù)為0.5%油紅O染色20 min,水洗數(shù)次,在顯微鏡下觀察、拍照。
2)成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化
收集P2代對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期的臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞,以1×104/cm2密度接種于24孔板中,待細(xì)胞達(dá)到60%融合時(shí),去掉原培養(yǎng)基,PBS洗滌1次,更換為成骨細(xì)胞誘導(dǎo)培養(yǎng)基,每3~4天換液1次。培養(yǎng)14天后,吸去誘導(dǎo)培養(yǎng)液,PBS洗滌2次,無水乙醇固定10 min,水洗數(shù)次,加入堿性磷酸酶染色劑,孵育8~12 h,水洗數(shù)次,在顯微鏡下觀察、拍照。
2.1 細(xì)胞形態(tài)學(xué)觀察
無血清組在培養(yǎng)第10天可見少量細(xì)胞遷出,細(xì)胞呈紡錘形、長(zhǎng)梭形、多角形、逗號(hào)等形態(tài)。原代培養(yǎng)第12天細(xì)胞融合達(dá)到約70%(見圖1),大部分細(xì)胞呈紡錘形和長(zhǎng)梭型,少量細(xì)胞呈多角形。傳代后細(xì)胞生長(zhǎng)速度加快、純度提高,以平行排列生長(zhǎng)為主或呈漩渦狀生長(zhǎng)(見圖2)。約2~3天后可再傳代。
圖1 無血清培養(yǎng)原代第12天(40×)
圖2 含血清培養(yǎng)原代第12天(40×)
血清組在培養(yǎng)第10天可見部分細(xì)胞遷出,細(xì)胞形態(tài)與無血清組無異,細(xì)胞生長(zhǎng)度速度較無血清組稍快。原代培養(yǎng)第12天細(xì)胞融合達(dá)到約80%(見圖2),細(xì)胞形態(tài)與無血清組無異。傳代后細(xì)胞生長(zhǎng)速度和細(xì)胞純度均有明顯提高,亦呈平行排列生長(zhǎng)或漩渦狀生長(zhǎng)(見圖3)。約2~3天后可再傳代。
圖3 無血清培養(yǎng)P2代第2天(40×)
圖4 含血清培養(yǎng)P2代第2天(40×)
2.2 細(xì)胞生長(zhǎng)活性測(cè)定
橫軸為培養(yǎng)時(shí)間(以每天計(jì)),縱軸為OD值繪制生長(zhǎng)曲線。細(xì)胞接種1~2天為緩慢生長(zhǎng)的潛伏期,從第3天即進(jìn)入對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期,兩種培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞都從第5天進(jìn)入平臺(tái)期,細(xì)胞倍增時(shí)間為30 h,P>0.05,兩種培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞增殖曲線無顯著差異(見圖5)。
圖5 兩種培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞增殖曲線
2.3 細(xì)胞表面標(biāo)志分析
流式細(xì)胞術(shù)分析表明,無血清培養(yǎng)基和含血清培養(yǎng)基培養(yǎng)的臍帶MSCs均高表達(dá)粘附分子和基質(zhì)細(xì)胞標(biāo)記CD73,CD90,CD105,不表達(dá)造血細(xì)胞標(biāo)記CD14,CD34,CD45,CD79a(圖6),不表達(dá)主要組織相容性復(fù)合物類分子HLA-DR。
圖6 兩種培養(yǎng)基培養(yǎng)的細(xì)胞表面標(biāo)志比較
2.4 體外誘導(dǎo)分化
2.4.1 脂肪細(xì)胞誘導(dǎo)分化
經(jīng)成脂誘導(dǎo)2周后,P2代人臍帶MSCs可以分化為脂肪細(xì)胞。進(jìn)行油紅O染色,可見胞漿中有大量被染成紅色的脂滴(見圖7)。
2.4.2 成骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化
經(jīng)成骨誘導(dǎo)2周后,P2代人臍帶MSCs可以分化為成骨細(xì)胞。進(jìn)行堿性磷酸酶染色,可以看見大量紫色沉淀(見圖8)。
圖7 人臍帶MSC油紅O染色結(jié)果(400×)
圖8 人臍帶MSC堿性磷酸酶染色結(jié)果(40×)
間充質(zhì)干細(xì)胞具有自我更新能力和多向分化能力[5],同時(shí)還具有雙向免疫調(diào)節(jié)的功能[6]。目前分離人臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞,主要來源于自臍帶的wharton’s jelly及臍靜脈皮下層[7-8],其主要分離方法是酶消化法和組織塊法。本實(shí)驗(yàn)采用組織塊法由貼壁的組織直接獲得MSC,相對(duì)酶消化法的化學(xué)反應(yīng)過程而言對(duì)細(xì)胞傷害較?。?]。
獲得安全可靠、質(zhì)量穩(wěn)定的間充質(zhì)干細(xì)胞是臨床應(yīng)用的前提,常規(guī)的血清培養(yǎng)體系由于血清的特性,異種血清的使用存在著很多不確定因素[10],比如,血清批次之間的差別、異種蛋白的免疫原性、潛在的病原體等。異種血清的種種潛在危害,使其生物安全性受到普遍質(zhì)疑[11]。由于動(dòng)物血清應(yīng)用的缺陷,有些研究人員采用人血清來代替胎牛血清,促進(jìn)細(xì)胞增殖并且保持間充質(zhì)干細(xì)胞的分化潛能,隨著細(xì)胞擴(kuò)增以及干細(xì)胞臨床應(yīng)用量的增大,人血清來源成為難以解決的問題[12]。無血清培養(yǎng)避免了含血清培養(yǎng)帶來的難題,成為當(dāng)今細(xì)胞培養(yǎng)領(lǐng)域的一大趨勢(shì)。
無血清培養(yǎng)和含血清培養(yǎng)都成功獲得了大量臍帶MSC,兩種培養(yǎng)基所培養(yǎng)細(xì)胞在形態(tài)方面類似,含血清培養(yǎng)的細(xì)胞體積略小,增殖速度略快于無血清培養(yǎng)。細(xì)胞免疫表型的分析表明,兩種培養(yǎng)基所培養(yǎng)細(xì)胞的免疫分子表達(dá)類似,CD73,CD90,CD105≥95%;CD14,CD34,CD45,CD79a,HLA-DR≤2%,符合ISCT組織對(duì)間充質(zhì)干細(xì)胞的定義要求[13]。在誘導(dǎo)培養(yǎng)條件下,兩種培養(yǎng)基所培養(yǎng)細(xì)胞均有相似的成骨和脂肪分化能力,具有較強(qiáng)的可塑性與多向分化潛能。
總之,本研究利用無血清培養(yǎng)基成功分離培養(yǎng)出臍帶MSC,和含血清培養(yǎng)基培養(yǎng)出的細(xì)胞具有相似的生物學(xué)特性,完全可以替代含血清培養(yǎng)基。隨著國(guó)家《干細(xì)胞制劑質(zhì)量控制及臨床前研究指導(dǎo)原則》等文件出臺(tái),對(duì)于培養(yǎng)基成分提出了嚴(yán)格要求,可以預(yù)見未來無血清培養(yǎng)將在臨床干細(xì)胞培養(yǎng)領(lǐng)域占據(jù)主導(dǎo)地位,具有廣闊的應(yīng)用前景。
[1]Karahuseyinogl US,Cinar O,Kilic E,et al.Biology of stem cells in human umbilical cord stroma:in situ and in vitro surveys[J].Stem Cells,2007,25(2):319-331.
[2]Dennis JE,Merriam A,Awadallah A,et al.A quadripotential Mesenchymal Progenitor cell isolated from the marrow of an adultmouse[J].JBone Miner Res.1999,14(5):700-709.
[3]Pelosi E,Castelli G,Testa U.Human umbilical cord is a unique and safe source of various types of stem cells suitable for treatment of hematological diseases and for regenerativemedicine[J].Blood Cells Mol Dis.2012,49 (1):20-28.
[4]Le Blanc K,F(xiàn)rassoni F,Ball L,et al.Mesenchymal stem cells for treatment of steroid-resistant,severe,acute graftversus-h(huán)ost disease:a phase II study[J].Lancet,2008,371:1579-1586.
[5]Friedenstein A J,Petrakova K V,Kurolesova A I,et al. Heterotopic of bone marrow.Analysis of precursor cells for osteogenic and hematopoietic tissues[J].Transplantation.1968,6(2):230-247.
[6]LiW,Ren G,Huang Y,et al.Mesenchymal stem cells:a double-edged sword in regulating immune responses[J]. Cell Death Differ.2012,19(9):1505-1513.
[7]Troyer D L,Weiss M.Wharton’s jelly-derived cells are a primitive stromal cell population[J].Stem Cells,2008,26:591-599.
[8]Kestendjieva S,Kyurkchiev D,Tsvetkova G etal.Characterization ofmesenchymal stem celIs isolated from the human umbilical cord[J].Cell Biol Int,2008,32(7):724-732.
[9]Hung C T,Mauck R L.Biological assays:cellular level. In:Moore JE,Zouridakis G(eds)[M].Biomedical technology and devices handbook.CRC Press,London,2004.
[10]Selvaggi T A,Walker R E,F(xiàn)leisher T A.Development of antibodies to fetal calf serum with arthus-like reactions in human immunodeficiency virus-infected patients given syngeneic lymphocyte infusions[J].Blood,1997,89:776-779.
[11]Tonti G A,Mannello F.From bonemarrow to therapeutic applications:different behaviour and genetic/epigenetic stability during mesenchymal stem cell expansion in autologous and foetal bovine sera[J].Int JDev Biol,2008; 52(8):1023-1032.
[12]Mizuno N,Shiba H,Ozeki Y,et al.Human autologous serum obtained using a completely closed bag system as a substitute for foetal calf serum in human mesenchymal stem cell cultures[J].Cell Biol Int,2006,30(6):521-524.
[13]DominiciM,Le Blanc K,Mueller I,etal.Minimal criteria for defining multipotentmesenchymal stromal cells[J]. The International Society for Cellular Therapy position statement,Cytotherapy,2006,8(4):315-317.
(責(zé)任編輯 何杰玲)
Com parison of the Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells Cultured by Serum-free Medium and Fetal Bovine Serum-contained Medium
CHEN Lin,ZHANG Kun,DONGWei,YANG Ke,AIHui,CHEN Lu-h(huán)ua
(Chongqing Enterprise Engineering Research Center of Stem Cell,Chongqing 401320,China)
To compare the differences of proliferation,biological characteristics,differentiation potential of serum-free and fetal bovine serum-contained medium cultured human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells.Separated Wharton’s jelly from human umbilical cord,cultured umbilical cord mesenchymal stem cells in serum-freemedium and serum-supplied medium.Detected the cells’proliferation rate by MTTmethod and get the cell growth curve;observe the cellmorphology by microscope;Use flow cytometer to identify surface markers CD73,CD90,CD105,CD14,CD34,CD45,CD79a,and HLA-DR.We observe cells change of shape after cells cultured by Osteogenesis Differentiation and Adiposeness Differentiation medium.Use alkaline phosphatase and oil red O stai-ningmethods to ensure cells’differentiation.The cell morphology,proliferation activity,surface markers and differentiation potential of human umbilical cord mesenchymal stem cells cultured in serum-freemedium are similarwith which cultured in FBS-suppliedmedium.The composition of the serum-freemedium are animal origin free and the composition are known,so it’s a better human umbilical cord mesenchymal stem cell culturemediamedium
mesenchymal stem cells;cell culture;serum-freemedium;Fetal bovine serum
Q2-33
A
1674-8425(2014)09-0057-05
10.3969/j.issn.1674-8425(z).2014.09.013
2014-03-16
陳林,男,四川德陽人,主要從事生物技術(shù)方面的研究。
陳林,張坤,董偉,等.臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞無血清和含胎牛血清培養(yǎng)體系比較[J].重慶理工大學(xué)學(xué)報(bào):自然科學(xué)版,2014(9):57-61.
format:CHEN Lin,ZHANG Kun,DONGWei,et al.Comparison of the Umbilical Cord Mesenchymal Stem Cells Cultured by Serum-free Medium and Fetal Bovine Serum-contained Medium[J].Journal of Chongqing University of Technology:Natural Science,2014(9):57-61.