李培玉, 張 銳, 孫國(guó)清, 馬 林, 薛計(jì)雄, 林 芹, 郭三堆
1.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所,農(nóng)作物基因資源與基因改良國(guó)家重大科學(xué)工程,北京100081;
2.新疆農(nóng)業(yè)大學(xué)農(nóng)學(xué)院,烏魯木齊830052
油菜是我國(guó)重要的油料作物和蛋白質(zhì)飼料作物,也是食用植物油的主要來(lái)源之一。我國(guó)油菜種植面積以及總產(chǎn)量占世界的三分之一,是世界上最大的油菜產(chǎn)區(qū)[1]。但我國(guó)油菜產(chǎn)區(qū)降水量較大,經(jīng)常會(huì)發(fā)生嚴(yán)重的澇害[2,3]。澇害嚴(yán)重影響了我國(guó)油菜產(chǎn)業(yè)的發(fā)展,因此提高油菜的耐澇能力對(duì)于我國(guó)油菜可持續(xù)發(fā)展具有非常重大的意義。
澇害的本質(zhì)并不是植株體內(nèi)水分的不斷積累增加,而是長(zhǎng)時(shí)間缺氧使根系功能減弱導(dǎo)致植物代謝途徑的改變,并產(chǎn)生許多有害物質(zhì),如二氧化碳、硫化物等,進(jìn)而影響植物的正常生長(zhǎng)和發(fā)育,隨著危害程度的增加造成嚴(yán)重的傷害和減產(chǎn)[4~6]。而且由于缺氧造成作物根系損傷,植株在澇害解除以后也很難恢復(fù)生長(zhǎng),具有明顯的滯后效應(yīng)[7]。因此,如何提高油菜抗?jié)澈δ芰κ钱?dāng)前制約油菜可持續(xù)發(fā)展的瓶頸問(wèn)題。
當(dāng)前,改良作物的耐澇能力主要是提高其無(wú)氧生活環(huán)境的適應(yīng)能力。Quimio等[8]在水稻漬水脅迫的研究中發(fā)現(xiàn),厭氧環(huán)境下,轉(zhuǎn)基因植株P(guān)DC酶活性和乙醇的合成率減少了50%。在漬水脅迫過(guò)程中,通過(guò)限制酶活性的提高從而加快了代謝過(guò)程,進(jìn)而提高了終產(chǎn)物乙醇的合成。一些轉(zhuǎn)錄因子也與作物耐漬性相關(guān),但目前為止,只在擬南芥中發(fā)現(xiàn)了一個(gè)轉(zhuǎn)錄因子AtMYB2[9]。
透明顫菌血紅蛋白(Vitreoscilla haemoglobin,VHb)是研究比較成熟的一種加氧蛋白(Vgb)。最初由Khosla等[10]從透明顫菌中克隆得到,并在大腸桿菌和酵母中表達(dá),可以加強(qiáng)細(xì)胞的呼吸強(qiáng)度,降低細(xì)胞的臨界氧濃度,提高細(xì)胞的生長(zhǎng)速率,使細(xì)胞在低氧甚至無(wú)氧條件下仍能保持生長(zhǎng)優(yōu)勢(shì)[11~13]。已有將vgb基因引入植物細(xì)胞的研究,實(shí)驗(yàn)證明該基因也可使轉(zhuǎn)基因植物發(fā)芽提前,并加快植物的生長(zhǎng),這可能與該基因可以增加細(xì)胞中的氧濃度相關(guān)[14]。
本研究首次通過(guò)基因工程手段將透明顫菌血紅蛋白基因過(guò)表達(dá)轉(zhuǎn)入油菜,驗(yàn)證其在油菜增產(chǎn)和抗?jié)撤矫娴墓δ芎妥饔?,為vgb基因在油菜中的表達(dá)所產(chǎn)生的生物量和生理代謝變化提供了數(shù)據(jù),為農(nóng)作物抗?jié)逞芯刻峁┝死碚撘罁?jù)。
本研究田間試驗(yàn)于2010-2011年在湖北麻城進(jìn)行。
甘藍(lán)型油菜中雙10號(hào),由本實(shí)驗(yàn)室保存。大腸桿菌菌株E.coli TOP10、質(zhì)粒pBI121,由本實(shí)驗(yàn)室保存。其他質(zhì)粒均購(gòu)自Promega公司。
用PstⅠ和 XhoⅠ雙酶切 pGSKA質(zhì)粒和pG4ASVHB質(zhì)粒,得到pGSKA載體(4 kb)和vgb(452 bp)基因片段,經(jīng)過(guò)回收、連接,鑒定后得到中間載體pGSVKA。EcoRⅠ和HindⅢ雙酶切中間載體pGSVKA,回收表達(dá)盒基因片段,克隆于pBI121質(zhì)粒中,并命名為pGBISVKA(見(jiàn)圖1)。
在油菜盛花期將已經(jīng)授粉的花朵摘去,采用直接噴花法或蘸花法轉(zhuǎn)化油菜花朵,轉(zhuǎn)化后的花朵做好標(biāo)記。
圖1 pGBISVKA質(zhì)粒載體圖譜Fig.1 Map of pGBISVKA plasmid vector.
選擇晴朗、無(wú)風(fēng)天氣的午后,配制2 000 mg/L的卡那霉素溶液,取脫脂棉浸入卡那霉素的溶液,然后貼附在油菜葉片的表面,或用噴壺將卡那霉素溶液均勻噴灑在油菜葉片表面,一周后觀察試驗(yàn)結(jié)果??敲顾孛舾兄仓甑娜~片在接觸卡那霉素處呈黃色,不敏感植株的葉片無(wú)變化。
按照J(rèn)oobeur等[15]的方法提取油菜基因組。根據(jù)vgb基因的CDS序列設(shè)計(jì)引物:vgbF:5'-ggctgcaggcttgatcaacagac-3'和 vgbR:5'-agctcgagctcaacagcttgagcgtac-3'。以轉(zhuǎn)基因油菜基因組DNA為模板,進(jìn)行PCR擴(kuò)增。PCR體系50 μL:1 μL基因組 DNA,5 μL 10 × PCR buffer,5 μL dNTPs,1 μL vgbF(10 μmol/L),1 μL vgbR(10 μmol/L),0.5 μL Taq 酶(2.5 U/μL),ddH2O 38.5 μL。PCR擴(kuò)增程序?yàn)?95℃ 5min;95℃ 30 s,63℃ 30 s,72℃ 2.5min,35 個(gè)循環(huán);72℃ 5min。4℃,保存。電泳檢測(cè)結(jié)果。
Southern雜交檢測(cè)采用地高辛隨機(jī)引物標(biāo)記法標(biāo)記探針,化學(xué)發(fā)光檢測(cè)技術(shù)進(jìn)行檢測(cè)[16]。
油菜的淹水試驗(yàn)在經(jīng)人工處理的不滲漏的淹水池進(jìn)行。普通田地向下挖40~45cm,鋪設(shè)防水塑料布,然后用土填平,旁邊起埂,施肥后人工播種,在油菜花期進(jìn)行為期15 d的淹水實(shí)驗(yàn),每天下午6點(diǎn)人工往淹水池里灌水,水面保持在油菜根部4~5cm處。淹水結(jié)束后從轉(zhuǎn)基因株系中挑選出生長(zhǎng)狀況基本一致的15個(gè)株系進(jìn)行生理指標(biāo)測(cè)定[17,18],包括丙二醛、脯氨酸和超氧化物歧化酶的測(cè)定,進(jìn)行3次重復(fù)。然后拔出,洗凈,比較在淹澇條件下根部的形態(tài)變化。試驗(yàn)采用三重復(fù)隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì)試驗(yàn)。
對(duì)原始數(shù)據(jù)進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化處理,用SPSS11.0軟件進(jìn)行方差分析。
在油菜的苗期用卡那霉素篩選,先采用大面積噴灑卡那霉素溶液進(jìn)行初篩,然后將不變色的油菜用脫脂棉浸泡卡那霉素溶液后,貼在油菜葉片表面,最終獲得轉(zhuǎn)基因陽(yáng)性植株11株。
提取轉(zhuǎn)基因油菜葉片的基因組DNA,以稀釋10倍的基因組為模板,以vgbF和vgbR為引物,以非轉(zhuǎn)基因油菜為對(duì)照,以pGBISVKA質(zhì)粒為陽(yáng)性對(duì)照進(jìn)行 PCR,轉(zhuǎn)基因植株樣品擴(kuò)增出約450 bp條帶,與預(yù)期的長(zhǎng)度完全一致,而陰性對(duì)照材料(中雙10號(hào))PCR擴(kuò)增結(jié)果未出現(xiàn)相應(yīng)的電泳圖譜,如圖2所示。
圖2 PCR鑒定轉(zhuǎn)vgb基因油菜植株Fig.2 PCR identification of vgb transgenic plants.
為了檢測(cè)外源基因在油菜基因組中的整合情況,對(duì)轉(zhuǎn)基因植株基因組DNA進(jìn)行EcoRⅠ單酶切,以vgb基因標(biāo)記探針開(kāi)展Southern雜交,結(jié)果見(jiàn)圖3。Southern雜交結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)基因株系中出現(xiàn)了兩條明顯雜交條帶,表明所檢測(cè)的轉(zhuǎn)基因油菜是雙拷貝整合。
圖3 轉(zhuǎn)vgb基因植株的Southern blot分析Fig.3 Southern blot detection of vgb transgenic plants.
2.4.1 澇漬脅迫處理對(duì)轉(zhuǎn)vgb基因油菜脯氨酸含量的影響 在正常供水條件下(見(jiàn)圖4),轉(zhuǎn)基因油菜和對(duì)照植株葉片脯氨酸含量較為正常,各材料之間脯氨酸含量差異不顯著。但是在淹水條件下,各材料的脯氨酸含量均出現(xiàn)不同程度的變化,非轉(zhuǎn)基因植株11~15在其淹水前后變化很明顯,脯氨酸含量較高,而轉(zhuǎn)基因植株1~10變化不明顯。說(shuō)明轉(zhuǎn)vgb基因的油菜在淹水過(guò)程中已經(jīng)基本適應(yīng)了淹水的環(huán)境,已不需要脯氨酸的調(diào)節(jié),但對(duì)照油菜則受到淹水的危害很?chē)?yán)重,且很難恢復(fù)正常水平。
2.4.2 淹澇脅迫處理下對(duì)油菜SOD活力的影響對(duì)油菜進(jìn)行為期15 d的淹澇實(shí)驗(yàn),采集樣品測(cè)定SOD酶活,結(jié)果如圖5所示。在正常供水條件下,轉(zhuǎn)基因油菜和對(duì)照SOD酶活的差異不明顯。而在淹水條件下,測(cè)得轉(zhuǎn)基因植株的SOD酶活性雖然有所降低,但與正常供水情況差距并不明顯,而對(duì)照植株的 SOD酶活性顯著下降,約50%的降幅。與對(duì)照相比,淹水條件下,轉(zhuǎn)基因植株的SOD酶活保持相對(duì)穩(wěn)定。而SOD酶活性的急劇變化,暗示著產(chǎn)生的SOD不能夠完全清除氧自由基,積累的氧自由基可能會(huì)對(duì)植物體產(chǎn)生損害,造成損失。實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示的轉(zhuǎn)vgb基因油菜的SOD酶活性受淹水影響較小,說(shuō)明植株已經(jīng)適應(yīng)了淹澇環(huán)境,并且SOD的合成已經(jīng)逐漸恢復(fù),這有利于油菜的體內(nèi)的自由基的清除,使損失降低。
圖4 脯氨酸的含量在轉(zhuǎn)基因植株和對(duì)照間的區(qū)別Fig.4 Differences of proline contents between transgenic lines and the control.
圖5 SOD的含量在轉(zhuǎn)基因植株和對(duì)照間的區(qū)別Fig.5 Differences of SOD contents between transgenic lines and the control.
2.4.3 油菜淹澇脅迫下對(duì)轉(zhuǎn)基因油菜丙二醛含量的影響 在干旱、水澇等條件下,植物體內(nèi)常發(fā)生質(zhì)膜過(guò)氧化作用,破壞膜系統(tǒng),導(dǎo)致植物受到傷害。MDA是細(xì)胞質(zhì)膜不飽和脂肪酸過(guò)氧化的產(chǎn)物,其含量的高低可作為膜質(zhì)過(guò)氧化的指標(biāo),當(dāng)細(xì)胞內(nèi)MDA的量增加時(shí),表明細(xì)胞膜受傷害程度的加深。MDA檢測(cè)結(jié)果表明:在正常條件下,轉(zhuǎn)基因油菜的MDA值和對(duì)照相差不大,但是在淹澇條件下,對(duì)照的MDA的量明顯上升,統(tǒng)計(jì)分析表明,對(duì)照油菜的MDA值比轉(zhuǎn)基因油菜的高,且差異顯著(見(jiàn)圖6)。
2.4.4 油菜淹澇脅迫下根部變化 為了研究轉(zhuǎn)基因植株的耐澇性,對(duì)轉(zhuǎn)基因株系進(jìn)行大量擴(kuò)繁,選取生長(zhǎng)一致的轉(zhuǎn)基因植株和非轉(zhuǎn)化對(duì)照植株,在淹水條件下轉(zhuǎn)基因油菜根部同對(duì)照植株的比較,結(jié)果如圖7(彩圖見(jiàn)封三圖版)所示。從圖中看出,轉(zhuǎn)基因油菜雖然側(cè)根很多,但是碳化嚴(yán)重,非轉(zhuǎn)基因油菜側(cè)根較少,碳化相對(duì)輕微,差別不明顯。
通過(guò)基因工程手段來(lái)實(shí)現(xiàn)對(duì)植物抗逆性的改良已成為人們關(guān)注的重點(diǎn)。本研究通過(guò)引入外源vgb基因,可降低細(xì)胞的臨界氧濃度,增強(qiáng)細(xì)胞的呼吸強(qiáng)度,從而提高細(xì)胞生長(zhǎng)速率,進(jìn)而加快植物生長(zhǎng)速率。VHb還可以通過(guò)促進(jìn)呼吸作用來(lái)增加ATP的濃度,間接地促進(jìn)植物的光合作用和生長(zhǎng)。在實(shí)驗(yàn)中還檢測(cè)了葉綠素含量,與對(duì)照相比,轉(zhuǎn)基因植株的葉綠素含量增加,同時(shí)光合作用也得到增強(qiáng),從而加快了植物的生長(zhǎng)。另一方面,轉(zhuǎn)vgb基因的植株可以保證氧濃度水平的相對(duì)穩(wěn)定,減少無(wú)氧呼吸,從而避免不必要的能量浪費(fèi)。
圖6 MDA的含量在轉(zhuǎn)基因植株和對(duì)照間的區(qū)別Fig.6 Differences of MDA contents between transgenic lines and control.
圖7 不同條件下的根部形態(tài)Fig.7 Root system of different plants in different treats.
在擴(kuò)繁過(guò)程中進(jìn)一步發(fā)現(xiàn),這一基因的轉(zhuǎn)入可以增加油菜的生物量,提高種子萌發(fā)率,縮短萌發(fā)時(shí)間,提高油菜籽的產(chǎn)量,起到增產(chǎn)的作用。
通過(guò)對(duì)油菜進(jìn)行淹澇實(shí)驗(yàn)表明:轉(zhuǎn)入vgb基因的油菜具有明顯的抗?jié)衬芰Α.?dāng)非轉(zhuǎn)基因油菜的根部缺氧后,其能量代謝逐漸轉(zhuǎn)變?yōu)橐蕴墙徒狻⒁掖己腿樗岚l(fā)酵等途徑為主,這樣不僅會(huì)造成物質(zhì)能量的大量消耗,而且會(huì)產(chǎn)生大量氧自由基、乳酸、乙醇等有害物質(zhì),從而造成根系的吸收大幅降低,葉片死亡,光合作用下降甚至停止。而轉(zhuǎn)基因植株中,VHb與氧有著很強(qiáng)的親和能力,能夠清除氧自由基,改變氧化磷酸化效率,抑制種子中不飽和脂肪酸氧化功能,增強(qiáng)了油菜根部同氧的結(jié)合能力。并且VHb位于整個(gè)胞質(zhì)中,可以使細(xì)胞能夠維持相對(duì)穩(wěn)定的氧濃度水平,進(jìn)而提高了植株的抗?jié)衬芰Α?/p>
[1]涂金星,張冬曉,張毅,等.我國(guó)油菜育種目標(biāo)及品種審定問(wèn)題的商榷[J].中國(guó)油料作物學(xué)報(bào),2007,29(3):350-352.
[2]劉后利.實(shí)用油菜栽培學(xué)[M].上海:上??茖W(xué)技術(shù)出版社,1987.
[3]張學(xué)昆,陳潔,王漢中,等.不同遺傳性狀油菜的抗?jié)承蟹治觯跩].中國(guó)油料作物學(xué)報(bào),2007,29(2):98-102.
[4]Voesenek L A,Colmer C D,Pierik R,et al..How plants cope with complete submergence[J].New Phytol.,2006,170:213-226.
[5]Levitt J.Responds of Plants to Environmental Stress[M].NewYork:Academic Press,1980,13-222.
[6]Zhou G S,Zhu X T.Changes of physiological characters of wheat after waterlogging and relations between physiological characters and waterlogging tolerance of different varieties[J].Sci.Agric.Sin.,2002,35(7):777 -783.
[7]Tang Z C.Reaction and adaptation of plants under water stress[J].Plant Physiol.Commun.,1983,3:24 -29.
[8]Quimio C A,Torrizo L B,Setter T L,et al..Enhancement of Submergence tolerance in transgenicrice overproducing pyruvate decarboxylase[J].J.Plant Physiol.,2000,156:516-521.
[9]何激光.漬害對(duì)油菜生理特性及農(nóng)藝性狀的影響[D].長(zhǎng)沙:湖南農(nóng)業(yè)大學(xué),碩士學(xué)位論文,2011.
[10]Khosla C,Bailey J E.The Vitreoscilla hemoglobin gene:molecular cloning,nucleotide sequence and genetic expression in Escherichia coli[J].Mol.Gene Genet.,1988,214:158 -161.
[11]Holmberg N,Lilius G,Bailey J E,et al..Transgenic tobacco expressing Vitreoscilla hemoglobin exhibits enhanced growth and altered metabolite production[J].Nat.Biotechnol.,1997,15:244-247.
[12]Khosla C,Bailey J E. The Vitreoscilla hemoglobin gene:Molecular cloning,nucleotide sequence and genetic expression in Escherichia coli[J].Mol.Gene Genet.,1988,214:158-161
[13]Liu S C,Liu Y X,Webster D A.Sequence of the region downstream of the Vitieoscilla hemoglobin gene:vgb is not pare of a multigene operon[J].Appl.Microbiol.Biotechno1.,1994,42:304.
[14]Roberts J K, Callis J, JardetskyO, et al.. Cytoplasmic acidosis as a determinant of flooding intolerance in plants[J].Proc.Natl.Acad.Sci.USA,1984,81:6029 -6033.
[15]Joobeur T,Gusm in i G,Zhang X,et al..Construction of a watermelon BAC library and identification o f SSRs anchored to melon or Arabidopsis genomes[J].Theor.Appl.Genet.,2006,112:1553-1562
[16]周長(zhǎng)發(fā),張銳,張曉,等.地高辛隨機(jī)引物法標(biāo)記探針的Southern雜交技術(shù)優(yōu)化[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報(bào),2009,11(4):123-128.
[17]中國(guó)科學(xué)院上海植物生理研究所,上海市植物生理學(xué)會(huì).現(xiàn)代植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)指南[M].北京:科學(xué)技術(shù)出版社,1999.
[18]白寶璋,湯學(xué)軍.植物生理學(xué)測(cè)試技術(shù)[M].北京:中國(guó)科學(xué)技術(shù)出版社,1993,73-157.