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        水稻中一個(gè)油菜素內(nèi)酯不敏感突變體的圖位克隆

        2014-06-13 07:11:54祝步拓路鐵剛
        生物技術(shù)進(jìn)展 2014年4期
        關(guān)鍵詞:信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)親本突變體

        祝步拓, 張 芊, 路鐵剛

        中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院生物技術(shù)研究所,北京100081

        油菜素內(nèi)酯(brassinosteroids,BRs)是植物體內(nèi)廣泛存在的一類甾醇類激素,在植物根莖伸長、維管束分化、光形態(tài)建成、種子發(fā)芽、生殖發(fā)育和向性建成等生長發(fā)育過程中發(fā)揮著重要作用,此外油菜素內(nèi)酯還能提高植物的抗逆性和抗病性[1,2]。對于油菜素內(nèi)酯作用及信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的研究已成為植物科學(xué)研究的熱點(diǎn)。

        基于擬南芥突變體的研究,BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑網(wǎng)絡(luò)調(diào)控機(jī)制已基本清晰。通過對BRs不敏感突變體bri1(brassinosteriod-insensitive 1)的研究,克隆到了BRs的受體基因BRI1[3]。此突變體表現(xiàn)為矮小、葉片卷曲、葉色深綠、育性下降且不能被外源施加BRs所恢復(fù)。此后通過對BRI互作蛋白的研究進(jìn)一步發(fā)現(xiàn)了 BAK1[4,5]。研究表明,BRs在細(xì)胞表面與受體BRI1結(jié)合,誘導(dǎo)BRI1和激酶抑制蛋白BKI1解離,同時(shí)介導(dǎo)BRI1與另一個(gè)跨膜受體激酶BAK1結(jié)合,BRI1和BAK1蛋白相互磷酸化,介導(dǎo)BR信號(hào)的轉(zhuǎn)導(dǎo)。BIN2和BSU1是BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)過程中的重要組分,當(dāng)BRs和BRI1蛋白結(jié)合時(shí)激活BSU1同時(shí)使BIN2失活,從而導(dǎo)致下游蛋白BZR1和BES1去磷酸化而激活,BZR1和BES1在核內(nèi)積累,直接調(diào)控BRs調(diào)節(jié)相關(guān)基因的表達(dá);當(dāng)BRs和BRI1解離時(shí),BIN2被激活,進(jìn)而 BIN2磷酸化 BZR1和 BES1,從而導(dǎo)致BZR1和BES1的失活[6]。

        水稻是全世界最主要的糧食作物之一,油菜素內(nèi)酯可直接影響水稻的株型,進(jìn)而影響水稻的生物量和產(chǎn)量[7]。隨著水稻基因組學(xué)的迅速發(fā)展和一系列水稻BRs相關(guān)突變體的發(fā)現(xiàn),越來越多的水稻BRs合成和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的關(guān)鍵元件被克隆和印證。水稻BR合成突變體(d2,dl1,brd1和brd2),表現(xiàn)為矮小、去黃化、卷葉和葉直立等表型[8~11]。這些突變體的表型均是由于BRs的合成途徑被阻斷導(dǎo)致內(nèi)源BRs不足造成,可被外源施加BRs所恢復(fù)。在水稻中第一個(gè)被克隆的BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)相關(guān)基因是OsBRI1。OsBRI1是水稻中可能的BRs受體,與擬南芥BRI1無論在結(jié)構(gòu)還是序列上都有著高度的相似性。他的突變體d61表現(xiàn)為矮化、葉片直立、對BRs的敏感性下降[12]。通過對水稻基因組序列的比對搜索,分離到了OsBRI1的兩個(gè)同源基因OsBRL1和OsBRL3。它們在水稻根中大量表達(dá),并部分參與BRs的信號(hào)傳遞,與 OsBRI1存在著一定的功能冗余性[13]。通過反向遺傳學(xué)的方法相繼克隆到OsBZR1和OsBAK1,并 進(jìn) 行 了 功 能 研 究[14,15]。OsGSK1 是BIN2在水稻中的同源基因,并在水稻逆境響應(yīng)中發(fā)揮重要作用[16]。目前研究表明,BRs合成和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)關(guān)鍵元件在單、雙子葉中的作用非常保守但也存在不同之處,并且還有很多BRs相關(guān)調(diào)控組分仍不清楚。本實(shí)驗(yàn)室在水稻突變體庫中篩選得到了一個(gè)葉夾角減小突變體,其葉型直立、植株高度略矮并且對外源BRs表現(xiàn)不敏感。通過圖位克隆將其定位在了水稻第5號(hào)染色的2 004 032 bp至2 704 032 bp區(qū)間范圍內(nèi),物理距離為700 kb。此區(qū)間尚無BRs相關(guān)基因報(bào)道。

        1 材料與方法

        1.1 水稻材料

        本實(shí)驗(yàn)中水稻野生型材料為粳稻品種日本晴(Oryza sativa L.spp.Japonica cv.Nipponbare)和秈稻品種Dular。水稻BRs不敏感突變體來源于本實(shí)驗(yàn)室構(gòu)建的 T-DNA插入突變體庫[17],遺傳背景為粳稻品種日本晴,經(jīng)自交獲得表型穩(wěn)定純合突變體el植株。

        1.2 表型觀察

        將日本晴和Dular兩種親本與el突變體種植于田間,各種植10行,每行10株。成熟后分別對植株葉夾角進(jìn)行測量統(tǒng)計(jì)。

        1.3 遺傳分析及基因定位群體的構(gòu)建

        2011年5月在河北廊坊試驗(yàn)基地種植各親本材料并套袋自交,同時(shí)配置Dular/el和日本晴/el雜交種。收取各系自交親本和F1代(Dular/el;日本晴/el)雜交種子。2012年春在海南三亞種植各親本和F1代雜交種子,收取親本和F2代種子。調(diào)查統(tǒng)計(jì)各個(gè)親本、F1代和F2代群體的植株形態(tài)。對F2代群體進(jìn)行遺傳分離規(guī)律分析,確定突變體表型的顯隱性關(guān)系以及是否為單基因控制。

        1.4 基因組DNA提取

        采用改進(jìn)的CTAB法[18]提取植株葉片DNA。對F2代植株,按5株/組,選取2組野生型表型單株,每組剪取等量葉片混合,構(gòu)建野生表型基因池。

        1.5 Indel分子標(biāo)記分析

        通過比較粳稻亞種日本晴和秈稻亞種9311的全基因組序列,利用本實(shí)驗(yàn)室曹建等開發(fā)的多態(tài)性引物對Dular/el F2代隱性表型混池進(jìn)行初定位[19],再用與該混池連鎖的初定位標(biāo)記對隱性F2代全部單株進(jìn)行連鎖分析,確定引物與F2代野生型表型群體的連鎖關(guān)系。本研究所用的多態(tài)性InDel標(biāo)記見表1。

        PCR 擴(kuò)增體系(10 μL)為:ddH2O 6.1 μL,10 × PCR Buffer 1 μL,MgCl2(25mmol/L)0.6 μL,dNTP Mix(1mmol)0.2 μL,引物(2 pmoL,正向 + 反向)1 μL,Takara rTaq(5 U/μL)0.1 μL,DNA 模板(20 ng/μL)1 μL。PCR 擴(kuò)增程序?yàn)?94℃預(yù)變性5min;94℃變性30 s,56℃退火30 s,72℃延伸30 s,5個(gè)循環(huán);第二步,94℃變性30 s,58℃退火 30 s,72℃ 延伸 30 s,33 個(gè)循環(huán);最后72℃下延伸7min。反應(yīng)產(chǎn)物在8%聚丙烯酰胺凝膠上電泳,電泳電壓200 V,時(shí)間2 h 10min。電泳完成后用銀染顯色,在膠片觀察燈下觀察結(jié)果并照相。將電泳圖譜進(jìn)行數(shù)值轉(zhuǎn)換:與隱性親本帶型一致的記為1型帶,與顯性親本帶型一致的記為2型帶,同時(shí)具有雙親本帶型的記為3型帶。

        表1 本研究所用的多態(tài)性InDel標(biāo)記Table 1 Polymorphic InDel markers used in this study.

        1.6 遺傳作圖與基因定位分析

        利用Mapmaker軟件[20]對轉(zhuǎn)換數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,并進(jìn)行遺傳作圖,對突變基因進(jìn)行定位分析。

        1.7 BR敏感性實(shí)驗(yàn)

        1.7.1 葉夾角敏感性實(shí)驗(yàn) 野生型和突變體水稻種子去皮后用75%乙醇滅菌1min,50%次氯酸鈉滅菌20min,更換次氯酸鈉一次繼續(xù)滅菌20min,之后在超凈臺(tái)中用滅菌超純水洗4次,浸泡30min,再次清洗4次,黑暗處萌發(fā)48 h。挑取萌發(fā)一致的種子接至1/2 MS培養(yǎng)基中,繼續(xù)黑暗培養(yǎng)8 d。于黑暗處剪取第二葉夾角上下各1cm的位置,分別用 0 nmol/L、10 nmol/L、100 nmol/L、1 000 nmol/L和10 000 nmol/L 24-eBL(BRs類似物)避光處理48 h,隨后進(jìn)行照相。用ImagineJ測量并統(tǒng)計(jì)野生型和突變體的葉夾角。

        1.7.2 根敏感性實(shí)驗(yàn) 野生型和突變體水稻種子同1.7.1滅菌處理、萌發(fā)后挑取萌發(fā)一致的種子接至含有 0 nmol/L、10 nmol/L、100 nmol/L、1 000 nmol/L、10 000 nmol/L 24-eBL 的 1/2 MS培養(yǎng)基中,光照培養(yǎng)5 d后進(jìn)行照相、測量。用ImagineJ對野生型和突變體根的長度進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。

        2 結(jié)果與分析

        2.1 el的表型鑒定

        突變體el較野生日本晴植株葉夾角明顯減小(見圖1A,彩圖見封三圖版)。對成熟時(shí)期植株進(jìn)行田間測定,日本晴植株葉夾角為13.1±0.2°,而 el突變體為2.3 ±0.1°(見圖1B)。

        圖1 成熟期野生型與el的葉夾角Fig.1 Leaf angle comparation between wild type and el mutant at mature stage.

        2.2 el突變體的遺傳分析

        將el突變體與日本晴進(jìn)行雜交,獲得F1代雜交種子。種植F1代植株全部為葉夾角減小表型。由此表明,葉夾角減小的突變性狀受顯性基因控制,el為顯性突變體。經(jīng)F1代自交獲得的F2代分離群體中,野生型表型96株,突變體表型304株;野生型與突變體的比例符合1∶3的孟德爾遺傳理論分離比例(卡方檢驗(yàn)P>0.05,無顯著性差異)(見表2)。由此表明,葉夾角減小的突變表型由顯性單基因控制。

        將el突變體與Dular雜交獲得F1代,而后F1代自交獲得F2代分離群體,對突變位點(diǎn)進(jìn)行圖位克隆。

        表2 F2代分離群體的統(tǒng)計(jì)分析Table 2 Statistical analysis of the phenotype of F2 segregating population.

        2.3 el突變體突變位點(diǎn)的初步定位

        用600對Indel引物對親本Dular和日本晴進(jìn)行多態(tài)性分析,得到151對可以用于Dular和日本晴多態(tài)性分析的引物[19]。由于此突變表型為顯性突變,選擇野生型表型植株進(jìn)行圖位克隆,野生型表型的帶型與Dular帶型一致。如圖2A所示,用上述151對引物對el/Dular F2代群體的2個(gè)野生型表型混池(5株/混池)進(jìn)行分析,發(fā)現(xiàn)2個(gè)DNA混池與5-2分子標(biāo)記完全連鎖。取20株野生型單株進(jìn)一步驗(yàn)證了5-2位點(diǎn)的連鎖。在5-2上下游合成InDel引物,最終用300棵野生型表型單株將突變位點(diǎn)定位在5號(hào)染色體InDel3和InDel4之間700 kb范圍內(nèi),在Indel3處交換單株為4個(gè),在Indel4處交換單株為6個(gè),與Indel3-1標(biāo)記共分離(見圖2B、2C)。

        圖2 el突變位點(diǎn)粗定位Fig.2 Linkage analysis the mutant locus of el.

        2.4 el突變體對BRs不敏感

        在水稻中外加BRs通常會(huì)直接影響葉片的葉夾角。對el純合突變體進(jìn)行葉夾角敏感性實(shí)驗(yàn),結(jié)果如圖3所示(彩圖見封三圖版)。在0~10 000 nmol/L不同濃度的24-eBL處理下,野生型的葉夾角分別為 85.2°、155°、157.5°、161.8°和 171.8°;而突變體植株的葉夾角分別為 7.4°、8.4°、11.31°、12.9°和 14.2°。不同濃度的處理下,突變體葉夾角均明顯小于野生型,且基本不張開,即對外源BRs沒有響應(yīng)。由此表明el為BRs不敏感突變體。

        圖3 不同濃度外源BRs對el第二葉夾角的影響Fig.3 Lamina joint assay of the el mutant in the presence of BRs in different concentrations.

        進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)檢測了植株根生長對外源BR的敏感性,結(jié)果如圖4所示(彩圖見封三圖版)。24-eBL可以抑制水稻根的生長,尤其在100 nmol/L以上濃度。突變體根的生長也受到抑制,然而在100 nmol/L以上濃度,24-eBL對突變體根長的抑制程度明顯低于野生型。由此可以進(jìn)一步明確el為BRs不敏感突變體。

        圖4 el突變體與野生型根部對外源BR的敏感度Fig.4 Root length assay of the el mutant in the presence of BRs in different concentrations.

        3 討論

        BRs是一類重要的植物激素,在植物的生長發(fā)育以及對外界環(huán)境條件的響應(yīng)中發(fā)揮重要作用。BRs的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)機(jī)制在雙子葉植物擬南芥中已經(jīng)取得重大進(jìn)展,但在單子葉植物中研究尚不全面。此外,BRs對于提高水稻抗逆性和產(chǎn)量有著密切的關(guān)系。因此關(guān)于水稻BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的研究,有利于進(jìn)一步明確BRs如何調(diào)控水稻的生長發(fā)育,為創(chuàng)制水稻理想株型提供理論依據(jù)。

        BRs不敏感突變體是BRs相關(guān)研究的重要材料。目前利用BR不敏感突變體已克隆多個(gè)BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路關(guān)鍵基因。水稻對BR最明顯的反應(yīng)就是葉夾角的變化,外源施加微量的BRs就會(huì)引起葉夾角增大;而BRs缺失或不敏感都會(huì)導(dǎo)致葉片直立。基于這一生理特性,以直立葉夾角為指標(biāo)篩選水稻突變體,已找到一些水稻BRs合成和信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)的突變體如 d2、brd1、brd2、d11和d61。本研究從本實(shí)驗(yàn)室創(chuàng)制的水稻突變體庫中發(fā)現(xiàn)了一個(gè)葉片直立突變體,經(jīng)遺傳學(xué)分析表明此表型為顯性單基因控制。且此純合突變體均表現(xiàn)對外源BRs不敏感:突變體的葉夾角在不同濃度BRs和不同時(shí)間處理下均明顯小于野生型;此外不同濃度BRs對el的根長抑制程度顯著低于野生型(見圖3,4)。由此表明此突變體的BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路被抑制,使得水稻無法對BRs信號(hào)進(jìn)行響應(yīng)。由此可以推斷,其葉片直立的表型可能是由于突變體對內(nèi)源BRs不敏感所致。圖位克隆將其突變位點(diǎn)定位在第5號(hào)2 004 032 bp至2 713 034 bp區(qū)間內(nèi)。該區(qū)間尚無BRs相關(guān)基因功能報(bào)道。本研究所獲得的el為BRs不敏感顯性突變體。此研究為克隆水稻BRs信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)通路關(guān)鍵基因奠定基礎(chǔ)。

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