魏玉杰,劉惠亮,李 屹,張 蛟,徐 麗,張雪潔
研究表明[1],吸煙是心血管疾病的獨(dú)立危險(xiǎn)因素,它可致凝血功能異常,血栓形成。但是,目前吸煙導(dǎo)致血管內(nèi)血栓形成的機(jī)制仍不明確。血栓調(diào)節(jié)蛋白(thrombomodulin,TM)是內(nèi)皮細(xì)胞表面一種強(qiáng)的抗凝活性糖蛋白,它和凝血酶1∶1結(jié)合導(dǎo)致凝血酶底物發(fā)生特異性改變,從而起到抗血栓作用。TM與凝血酶結(jié)合,不但受TM量表達(dá)的影響,同時(shí)也受其與凝血酶在單分子間相互作用的影響。關(guān)于生物分子間相互作用的研究,原子力顯微鏡(atomic force microscopy,AFM)具有獨(dú)特的優(yōu)勢,因?yàn)樗梢詼y定活細(xì)胞表面單分子間相互作用力。在活細(xì)胞表面直接測定單對生物分子(如膜蛋白受體/配體)的相互作用力,可以更真實(shí)地反映生理?xiàng)l件下生物分子間的相互作用性質(zhì)[2]。近年來關(guān)于活細(xì)胞表面單分子力譜測量的研究開展逐漸增多,但是關(guān)于TM與凝血酶單分子間相互作用的研究目前尚未見報(bào)道,而吸煙是否會(huì)影響二者間在單分子水平的結(jié)合尚不清楚。
本研究采用5%香煙提取物(cigarette smoke extract,CSE)孵育經(jīng)轉(zhuǎn)染 TM-GFP質(zhì)粒的 COS-7細(xì)胞,利用AFM單分子力譜法檢測凝血酶與TM在單分子水平的相互作用,從而探討吸煙致血管內(nèi)血栓形成的可能機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)細(xì)胞 培養(yǎng)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(human umbilical vein endothelial cell,HUVEC)從人臍帶的臍靜脈中分離獲得。實(shí)驗(yàn)用第2~3代細(xì)胞。非洲綠猴腎成纖維細(xì)胞COS-7由軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院八所提供。
1.2 試劑 (1)CSE:取紅梅牌香煙(含焦油12 mg/支,煙氣煙堿量1.1 mg/支,煙氣一氧化碳量13 mg/支)自制。(2)質(zhì)粒小提試劑盒購自Promega公司,BamHI、HindIII限制性核酸內(nèi)切酶及購自TaKa-Ra公司,鼠抗人TM單克隆抗體購自英國Abcam公司,實(shí)驗(yàn)用凝血酶粉劑購自美國Sigma公司,Ⅰ型膠原酶、胰蛋白酶、Medium 200培養(yǎng)基、MEM培養(yǎng)基均購自美國Gibco公司,無水乙醇、氫氟酸、丙酮、二甲基亞砜等購自北京化學(xué)試劑公司。
1.3 主要儀器 原子力顯微鏡:美國PicoSPM公司。AFM探針:上海愛建納米科技有限公司。PCR儀:德國 Biometra公司。熒光倒置顯微鏡:Olympus公司。激光共聚焦顯微鏡:UltraView PerkinElmer公司等。
2.1 人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞原代培養(yǎng) 按照郭卿等[3]方法,取剖宮產(chǎn)后新鮮臍帶(武警總醫(yī)院婦產(chǎn)科提供)應(yīng)用0.1%Ⅰ型膠原酶消化得到HUVEC原代,細(xì)胞(80~90)%融合時(shí)傳代;實(shí)驗(yàn)用第2~3代。
2.2 參照 Nakamura[4]方法制備 CSE 兩支去過濾嘴香煙于一個(gè)注射器驅(qū)動(dòng)裝置連續(xù)點(diǎn)燃。注射器經(jīng)三通裝置連續(xù)抽吸,吸入的煙霧經(jīng)三通的另一個(gè)出口通入50 ml PBS溶液制成懸液,1 mol·L-1NaOH調(diào)制pH值至7.4,用0.22μm的微孔濾器過濾除去細(xì)菌和大顆粒物質(zhì)30 min內(nèi)用于實(shí)驗(yàn)。
2.3 重組質(zhì)粒pTM-GFP的構(gòu)建及轉(zhuǎn)染COS-7細(xì)胞 從HUVEC中提取總RNA反轉(zhuǎn)錄后得到TM的cDNA片段,通過RT-PCR擴(kuò)增目的片段TM(1700 bp),設(shè)計(jì)上游引物包含HindⅢ酶切位點(diǎn):5′-CGA AGC TTA TGC TTG GGG TCC TGG TC-3′;下游引物包含BamHⅠ酶切位點(diǎn):5′-ATGGAT CCGAGT CTC TGC GGC GTC GC-3′(由寶生物工程大連有限公司合成上述引物;人TM全長cDNA序列于NCBI基因庫檢索獲得,NM_000361.2)。將目的基因與載體連接轉(zhuǎn)化、雙酶切鑒定,提取獲得重組質(zhì)粒pTM-GFP,轉(zhuǎn)染至COS-7細(xì)胞,37℃、5%CO2的條件下培養(yǎng)6 h后更換完全培養(yǎng)基(10%FBS和青霉素、鏈霉素各100 kU·L-1的MEM培養(yǎng)液),轉(zhuǎn)染24 h內(nèi)用于實(shí)驗(yàn)。
2.4 利用AFM測定TM與凝血酶的相互作用
2.4.1 AFM探針的修飾(參照 Yang等[5]方法)將AFM探針置于 Plasma(PDC-32G-2,Harrick Scientific Corp,NY)反應(yīng)器中,在1mbar的高純氧氣氛中最高功率條件下反應(yīng)120 s,在甲苯溶液中(含1%3-巰基丙基三甲氧基硅烷,V/V)室溫下孵育1 h,再以丙酮、無水乙醇、雙蒸水沖洗,氮?dú)獯蹈?,浸? g·L-1N-羥基琥珀酰亞胺-聚乙烯乙二醇-馬來酰亞胺(DMSO)液中2 h,將針尖浸入凝血酶蛋白溶液中(2 mg·L-1)室溫下反應(yīng)0.5 h,固定好蛋白樣品針尖4℃保存,1周內(nèi)用于實(shí)驗(yàn)。
2.4.2 功能化硅片制備 參照文獻(xiàn)[6-7],取 1 cm×1 cm單晶體硅片在室溫下浸入堿性溶液(NH4OH∶H2O2∶H2O=1∶1∶5,V/V)清洗表面30 min;在 piranha溶液 (98%H2SO4∶H2O2=7∶3,V/V)中加熱到90℃保溫30 min以獲得清潔和羥基化的硅片表面。將洗凈的硅片轉(zhuǎn)移至含1.0%APTES的甲苯溶液中,在室溫下反應(yīng)2 h后,用甲苯反復(fù)沖洗硅片表面,以除去表面沒有反應(yīng)的硅烷化試劑;并依次用丙酮、乙醇清洗,氮?dú)獯蹈?,硅烷化的硅片轉(zhuǎn)移至0.1%的戊二醛溶液中 (選用PBS緩沖溶液:10 mmol·L-1Na2HPO4,1.8 mmol·L-1KH2PO4,2.7 mmol· L-1KCl,140 mmol· L-1NaCl,pH 7.4),室溫下反應(yīng)0.5 h,然后用 PBS緩沖溶液沖洗。經(jīng)過戊二醛活化后的硅片浸入到TM-ECD蛋白溶液中 (1 mg·L-1緩沖溶液中),室溫放置3 h。處理后用緩沖溶液清洗,在4℃下緩沖液中保存待用。
2.4.3 單分子力譜測定TM與凝血酶相互作用力
2.4.3.1 活細(xì)胞表面實(shí)驗(yàn)分組 ①空白質(zhì)粒對照組(GFP-thr group);② TM-GFP對照組(TM-thr group);③5%CSE孵育TM-GFP細(xì)胞1 h組(CSETM-thr group);④ 5%CSE孵育空白質(zhì)粒細(xì)胞組(CSE-GFP-thr group);每組測力后均加入鼠抗人特異單克隆抗TM抗體(2 mg·L-1封閉30 min)行封閉阻斷實(shí)驗(yàn)。
2.4.3.2 硅片表面實(shí)驗(yàn)分組 ① TM-凝血酶對照組(TM-Thr-SGroup);② 5%CSE孵育硅片1 h組(CSE-TM-thr-Sgroup);每組測力后均行封閉阻斷實(shí)驗(yàn)。
2.4.3.3 原子力顯微鏡測力 采用AFM及倒置熒光顯微鏡的聯(lián)用系統(tǒng),在AFM的接觸模式下,針尖反復(fù)在COS-7細(xì)胞表面或TM-ECD修飾的硅片表面下壓-回拉,隨機(jī)獲得力-距離曲線,用同一個(gè)針尖在6~10個(gè)細(xì)胞表面(每組實(shí)驗(yàn)條件下)進(jìn)行測力,每個(gè)細(xì)胞隨機(jī)選取4~6個(gè)位置共記錄1 000條力-距離曲線,所得力 -距曲線采用 MATLAB R2009a軟件分析。分析所得黏附力值,進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,求出力的高斯分布。同時(shí),可以求得在所有曲線中發(fā)生特異性黏附的成鍵幾率。
2.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 采用Origin 7.0和SPSS17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料以ˉx±s表示,各組間結(jié)合幾率比較采用單因素方差分析(One-way ANOVA);阻斷前后比較采用配對t檢驗(yàn)。
3.1 TM與凝血酶在細(xì)胞表面的相互作用 TM與凝血酶(TM-thr group)在細(xì)胞表面單分子水平相互作用力的大小為(60.90±0.82)皮牛(pN)(Fig 1),成鍵幾率為(22.58±3.95)%;抗體阻斷后成鍵幾率為(2.58±2.0)%較阻斷前明顯降低,P<0.05。
3.2 四組間成鍵幾率比較 GFP-Thr group成鍵幾率在抗體阻斷前后分別為(3.74±3.42)%,(2.52±0.51)%;CSE-TM-Thr group為(6.30±4.20)%,(2.70±2.19)%;CSE-GFP-Thr group為(4.40±1.48)%,(1.12±1.06)%。3組與 TM-Thr group比較,P<0.05;但3組間兩兩比較差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。每組經(jīng)抗體阻斷成鍵幾率雖有降低,但是阻斷前后無統(tǒng)計(jì)學(xué)差異(Fig 2)。
3.3 5%CSE孵育前后TM與凝血酶在硅片表面的相互作用 TM與凝血酶在硅片表面單分子水平相互作用力的大小為(45.30±1.37)pN,成鍵幾率為(23.25±7.02)%;抗體阻斷后成鍵幾率為(4.64±2.31)%,較阻斷前明顯降低,P<0.05。5%CSE孵育硅片1 h后TM與凝血酶的成鍵幾率為(8.31±1.06)%,與TM-Thr-S組比較,P<0.05,特異抗體封閉后成鍵幾率為(5.17±2.96)%,見Fig 3。
Fig 1 Histogram of the binding forces of TM/Thr
Fig 2 Single-molecule binding probabilities of TM/Thr obtained by thrombin modified AFM tips in different experiments
TM主要分布于內(nèi)皮細(xì)胞,在平滑肌細(xì)胞,單核細(xì)胞、白細(xì)胞、角蛋白細(xì)胞及一些腫瘤細(xì)胞也有少量表達(dá)[9-10],而非洲綠猴腎成纖維細(xì)胞COS-7未見報(bào)道有TM表達(dá)。因此本研究把成功構(gòu)建的TM-GFP質(zhì)粒轉(zhuǎn)染至COS-7細(xì)胞,可以起到兩方面的作用:一方面可使AFM掃描時(shí)達(dá)到可視化;另一方面可排除由于掃描細(xì)胞本身存在TM的表達(dá)會(huì)干擾AFM檢測凝血酶與TM之間的作用力。TM有5個(gè)功能區(qū),其中在第2個(gè)功能區(qū)類表皮生長因子結(jié)構(gòu)區(qū)有6個(gè)重復(fù)序列,5和6區(qū)是凝血酶結(jié)合部位[11]。當(dāng)TM與凝血酶在結(jié)合相互作用發(fā)生改變會(huì)影響到TM的抗凝作用。本研究利用表位在類表皮生長因子5區(qū)特異性單克隆鼠抗人TM抗體進(jìn)行封閉,這個(gè)部位恰恰是TM與凝血酶的結(jié)合部位,研究結(jié)果顯示每組阻斷實(shí)驗(yàn)阻斷后的結(jié)合幾率均明顯減少(除GFP-Thr組變化不明顯外),表明抗體封閉阻斷特異且效果比較好。而GFP-Thr組沒有變化,提示空白質(zhì)粒轉(zhuǎn)染的細(xì)胞沒有TM和凝血酶特異性結(jié)合。
Fig 3 Single-molecule binding probabilities of TM/Thr-S obtained by thrombin modified AFM tips in different experiments
由于AFM可以在活細(xì)胞上直接檢測單對生物分子如膜蛋白受體/配體的相互作用力,被廣泛應(yīng)用于生物研究領(lǐng)域。它的工作模式主要有接觸模式和輕敲模式。輕敲模式也就是探針?biāo)綊呙杩梢垣@得高分辨率成像,本課題組前期利用此模式清晰地觀察到兔動(dòng)脈粥樣硬化不同時(shí)期血管內(nèi)皮的超微結(jié)構(gòu)變化[12]。接觸模式也就是探針豎直掃描可檢測到單分子間相互作用力,本研究采用接觸模式可使針尖在樣品表面豎直方向上下運(yùn)動(dòng),系統(tǒng)記錄在針尖反復(fù)下壓-接觸-提拉的循環(huán)過程中微懸臂彎曲方向和程度的改變,并將此變化轉(zhuǎn)化為分子間相互作用的力值,即為針尖固有的彈性常數(shù)與形變程度的乘積,此作用力值可精確到皮牛級。Lee等[13]利用AFM皮牛級的測力靈敏度來研究生物分子間的非共價(jià)作用,為在單分子水平上分子間相互作用力的測定奠定了基礎(chǔ)。本研究采用AFM測得凝血酶與TM之間的相互作用力約為60pN,從高斯擬合的結(jié)合力分布圖顯示為單峰圖譜;TM與凝血酶的AFM成鍵幾率為(22.58±3.95)%,而利用特異抗體阻斷后成鍵幾率明顯減低;并且有文獻(xiàn)報(bào)道[5],成鍵幾率在(10~30)%時(shí)認(rèn)為所得力值為單分子間作用力,綜合以上3點(diǎn)提示60pN是凝血酶與TM之間特異性的結(jié)合力。
本研究結(jié)果顯示,在COS-7細(xì)胞表面:與TMThr對照組比較,5%CSE孵育1 h后,TM與凝血酶結(jié)合幾率明顯降低。同樣,在等量TM修飾的硅片表面:與TM-Thr-S對照組比較,5%CSE孵育1 h后TM與凝血酶結(jié)合幾率也是明顯減少的。表明CSE明顯影響了TM與凝血酶在單分子水平的結(jié)合,降低兩者之間的結(jié)合幾率,并不是通過影響TM量的表達(dá)來實(shí)現(xiàn)的。TM與凝血酶結(jié)合幾率降低,從而使得抗凝系統(tǒng)減弱,血栓形成風(fēng)險(xiǎn)增加。關(guān)于CSE減少TM與凝血酶結(jié)合的機(jī)制是通過類似抗體封閉的方式阻斷了兩者的相互結(jié)合,還是通過改變TM的分子構(gòu)象,這有待于進(jìn)一步研究證實(shí)。
以上結(jié)果表明,CSE有可能是通過降低了TM與凝血酶在單分子水平的結(jié)合幾率,降低抗凝系統(tǒng)功能,從而導(dǎo)致血管內(nèi)血栓形成風(fēng)險(xiǎn)增加。
參考文獻(xiàn):
[1] Rabinovitch N,Strand M,Stuhlman K,Gelfand E W.Exposure to tobacco smoke increases leukotriene E4-related albuterol usage andresponse to montelukast[J].J Allergy Clin Immunol,2008,121(6):1365-71.
[2] 徐永春,師曉麗,方曉紅.原子力顯微鏡單分子力譜研究生物分子間相互作用[J].生命科學(xué),2008,20(1):39-45.
[2] Xu Y C,Shi X L,F(xiàn)ang X H.Biomolecular interaction study by atomic force microscopy single-molecule force spectroscopy[J].Chin Bull Life Sci,2008,20(1):39-45.
[3] 郭 卿,劉惠亮,董 敏.氧化型低密度脂蛋白對人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞功能及膜表面超微結(jié)構(gòu)的影響[J].中國動(dòng)脈硬化雜志,2011,19(1):34-8.
[3] Guo Q,Liu H L,Dong M.Effect of oxidized low density lipoprotein on function and membrane surface ultrastructure in human umbilical vein endothelial cells[J].Chin J Arterioscler,2011,19(1):34-8.
[4] Nakamura Y,Romberger D J,Tate L,et al.Cigarette smoke inhibits lung fibroblast proliferation and chemotaxis[J].Am J Respir Crit Care Med,1995,151(5):1497-503.
[5] Yang H Y,Yu JP,F(xiàn)u G,et al.Interaction between single molecules of Mac-1 and ICAM-1 in living cells:An atomic force microscopy study[J].Exp Cell Res,2007,313(16):3497-504.
[6] Yu J,Sun S,Jiang Y,et al.Single molecule study of binding force between transcription factor TINY and its DNA responsive element[J].Polym J,2006,47(7):2533-8.
[7] Yu J,Wang Q,Shi X,et al.Single-molecule force spectroscopy study of interaction between transforming growth factorβ1 and its receptor in living cells[J].J Phys Chem B,2007,111(48):13619-25.
[8] Koutsi A,Papapanagiotou A,Papavassiliou A G.Thrombomodulin:From haemostasis to inflammation and tumourigenesis[J].Int J Biochem Cell Biol,2008,40(9):1669-73.
[9] Hanly A M,Redmond M,Winter D C,et al.Thrombomodulin expression in colorectal carcinoma is protective and correlates with survival[J].Br J Cancer,2006,94(9):1320-5.
[10]Raife T J,Lager D J,Madison K C,et al.Thrombomodulin expression by human keratinocytes.Induction of cofactor activity during epidermal differentiation[J].J Clin Invest,1994,93(4):1846-51.
[11]Wouwer M V,Conway EM.Novel functions of thrombomodulin in inflammation[J].Crit Care Med,2004,32(5 Suppl):S254-61.
[12]魏玉杰,劉惠亮,何玉輝,宋冬林.阿托伐他汀對兔動(dòng)脈粥樣硬化血管內(nèi)皮細(xì)胞膜超微結(jié)構(gòu)影響的研究[J].中國藥理學(xué)通報(bào),2008,24(2):240-3.
[12]Wei Y J,Liu H L,He Y H,Song D L.Effect of atorvastatin on the ultramicrostructure of the endothelial cell membrane in atherosclerotic rabbits:observed by atomic force microscope[J].Chin Pharmacol Bull,2008,24(2):240-3.
[13]Lee G U,Kidwell DA,Colton RJ.Sensing discrete streptavidinbiotin interactions with atomic force microscopy[J].Langmuir,1994,10(2):354-7.