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        兩種滅酶方法對苦杏仁及苦巴旦杏仁中苦杏仁苷含量的影響

        2014-05-03 06:15:42趙江林劉建紅侯擁楊曉君
        中國藥業(yè) 2014年5期
        關鍵詞:脫脂刻度容量瓶

        趙江林 ,劉建紅 ,侯擁 ,楊曉君

        (1.新疆維吾爾自治區(qū)克拉瑪依市中心醫(yī)院,新疆 克拉瑪依 834000; 2.新疆維吾爾自治區(qū)烏魯木齊市中醫(yī)醫(yī)院,新疆 烏魯木齊 830000; 3.新疆農業(yè)大學食品科學與藥學學院,新疆 烏魯木齊 830052)

        苦杏仁為薔薇科植物杏 Prunus armeniaca L.的成熟果實苦味種仁,我國主產于新疆、黑龍江、遼寧、吉林、內蒙古、寧夏、甘肅、河北、陜西、山西等省區(qū),具有祛寒止咳、燥濕祛痰、除腐愈傷等功效,臨床用于寒性咳嗽、濕性痰多、支氣管炎及各種皮膚創(chuàng)傷[1]。巴旦杏為薔薇科植物巴旦杏 Amygdales communist L.的成熟果實,根據植物種子苦或甜分為苦巴旦杏 Amygdalus communist L.val.amara 和甜巴旦杏 Amygdalus communist L.var.dulcis 兩種,我國新疆、甘肅、陜西、內蒙古等地有栽培,國外北非、地中海沿岸地區(qū)和歐洲其他地區(qū)等亦有栽培[2],具有潤肺止咳、潤腸軟便、祛寒壯腰、熱膚生輝、身寒壯陽、提高視力、填精固精等功效,臨床主治干寒性或黑膽質性疾病,如干性肺虛咳嗽、身瘦體弱、記憶減退、大便不通、寒性腰膝酸軟[1]228-229,近年來的研究有所增加[3]??嘈尤受眨╝mygdalim)屬芳香族氰苷,在植物界分布廣泛,其中以薔薇科植物(杏、桃、李)種子的含量最高[4]。其結構式為苯羥基乙氰-β-D葡萄糖-6-β-D葡萄糖苷,是由1分子苯甲醛、1分子氫氰酸和2分子葡萄糖組成,本身無毒,遇熱易分解,生成的氫氰酸有劇毒。其主要生理功能有鎮(zhèn)咳、平喘、抗炎、鎮(zhèn)痛、抗腫瘤、降血糖和抗?jié)僛5]。本試驗中,對苦杏仁和苦巴旦杏仁進行不同滅酶方法處理,采用紫外分光光度法測定苦杏仁苷的含量,并進行含量比較分析[6],旨在為建立適宜的苦杏仁苷加工方法提供基礎依據。

        1 儀器與試藥

        TU-1800SPC型紫外可見分光光度計(北京普析通用儀器有限責任公司);AL204型電子分析天平(上海梅特勒-托利多儀器有限公司);RE-52B型旋轉蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠);HH-S型數顯恒溫水浴鍋(江蘇省金壇市醫(yī)療儀器廠);SHB-Ⅲ型循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿有限公司)??嘈尤省⒖喟偷┬尤寿徲谛绿厮庒t(yī)藥公司(批號為20100925001),經本院生藥室鑒定為杏 Prunus armeniaca L.和巴旦杏 Amygdales communist L.的成熟干燥種仁;苦杏仁苷對照品(C20H27NO11=457.44,中國藥品生物制品檢定所,批號為820-200002);無水乙醇,石油醚,蒸餾水均為分析純。

        2 方法與結果

        2.1 苦杏仁苷對照品溶液配制

        精密稱取在105℃恒溫干燥至恒重的苦杏仁苷對照品2.5 mg,置5 mL容量瓶中,用蒸餾水溶解,定容至刻度,制成質量濃度為0.5 g/L的苦杏仁苷對照品貯備溶液。

        2.2 供試品溶液制備

        2.2.1 藥材處理

        分別稱取4份藥材(苦杏仁3份、苦巴旦杏仁1份),均20 g,快速沖洗,去除灰塵,室溫下晾干,備用。

        2.2.2 滅酶

        將4份供試品分別用不同方法進行滅酶處理,苦杏仁1號沸水煮5 min,苦杏仁 2號沸水煮 10 min,苦杏仁 3號蒸 30 min,苦巴旦杏沸水煮10 min。滅酶后,將供試藥材自然晾干后,平鋪烘箱中,于60℃下干燥1 h,取出,放冷至室溫,粉碎機粉碎,過20目篩。

        2.2.3 脫脂

        將粉碎過的4份供試品中分別加入40 mL的石油醚[7],在70~80℃下,水浴攪拌脫脂40 min,抽濾,濾餅再重復提取2次,每次用石油醚20 mL和15 mL,得4份脫脂醚。

        2.2.4 溶液制備

        將4份脫脂醚中分別加入40 mL的無水乙醇[8],在80~90℃下水浴攪拌提取40 min,趁熱過濾,濾餅再重復提取2次,每次用無水乙醇20 mL,合并3次濾液,用旋轉蒸發(fā)儀蒸餾回收無水乙醇,至濃縮液約20 mL,倒入干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,水浴鍋上蒸干,用水溶解,移至100 mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,得苦杏仁1號、苦杏仁2號、苦杏仁3號、苦巴旦杏仁供試品溶液。

        2.3 紫外吸收光譜測定

        精密稱取苦杏仁苷對照品2.5 mg,制成質量濃度為0.5 g/L的苦杏仁苷對照品溶液,在220~300 nm波長范圍內測定吸光度 A值,并以蒸餾水作空白,記錄其紫外吸收光譜。結果見圖 1。苦杏仁苷于258,264,275 nm 波長處有3個吸收峰,前2個吸收峰顯示較大吸收強度,又以264 nm波長處峰值最大。

        圖1 苦杏仁苷的紫外光譜圖

        2.4 方法學考察

        標準曲線制備:精密稱取在105℃度恒溫干燥至恒重的苦杏仁苷對照品50 mg,置50 mL容量瓶中,用蒸餾水溶解,定容至刻度,得1 g/L的苦杏仁苷對照品貯備溶液,置冰箱(4℃左右)保存,備用。分別取上述溶液 0.5,1.0,1.5,2.0,2.5,3.0,3.5,4.0 mL,用蒸餾水稀釋,定容至5 mL[9]。以蒸餾水作空白,在264 nm波長處測定吸光度 A值。以質量濃度為橫坐標、吸光度為縱坐標進行線性回歸,得回歸方程 A=0.644 6C-0.048 5,r=0.999 2(n=8)。結果表明,苦杏仁苷質量濃度在0.1~0.8 g/L范圍內與吸光度線性關系良好。

        精密度試驗:取苦杏仁2號供試品溶液5 mL,置50 mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,離心,取上清液,在264 nm波長處測定吸光度。結果 6 次試驗吸光度 A值為 0.315,0.313,0.314,0.316,0.312,0.313,平均 0.313,RSD = 0.47% (n =6),表明儀器精密度良好。

        穩(wěn)定性試驗:取苦杏仁2號供試品溶液5 mL,置50 mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,離心,取上清液在264 nm波長處間隔一定時間測定吸光度。結果 0.5,1.0,2.0,5.0,10.0,15.0,20.0,25.0,30.0,35.0,40.0,45.0 h 內 的 平 均 吸 光 度 值 為 0.311,RSD=0.57%(n=12),表明供試品溶液在45 h內吸光度基本穩(wěn)定。

        重復性試驗:取苦杏仁樣品約10 g,精密稱定,依法操作,平行制備6份供試品溶液并測定吸光度。結果吸光度 A值分別 為 0.327,0.318,0.323,0.306,0.311,0.315, 平 均 0.317,RSD =2.44%(n=6),表明方法重復性良好。

        加樣回收試驗:取苦巴旦杏仁供試品溶液5 mL,置50 mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,離心,取等體積5 mL的5份上清液,分別加入0.5~2.5 mg的苦杏仁苷對照品,于264 nm波長處分別測定吸光度,計算回收率。結果見表1。

        2.5 樣品含量測定

        分別從上述4種供試品溶液中各取5 mL,置50 mL容量瓶中,用水稀釋至刻度,離心,取上清液在264 nm波長處分別測定吸光度,并計算其中苦杏仁苷的含量。結果見表2。可見,苦杏仁中2號即沸水煮10 min滅酶效果最佳,苦杏仁苷含量最高位2.80%,苦杏仁中苦杏仁苷含量均高于苦巴旦杏仁。

        表1 苦杏仁苷加樣回收試驗結果(n=5)

        表2 樣品含量測定結果

        3 討論

        苦杏仁中含有苦杏仁酶,在提取苦杏仁苷過程中,酶會將苦杏仁苷水解[10],降低提取率。因此,選擇合適的滅酶方法是決定提取率高低的影響因素之一。本試驗中進行了同一品種杏仁采用不同滅酶方法、不同品種杏仁采用同一滅酶方法對苦杏仁苷提取率的影響試驗,結果顯示,不同的滅酶方法對杏仁中的苦杏仁苷含量有影響。

        苦杏仁和苦巴旦杏中含有脂質成分,在樣品處理過程中,若有脂質成分的存在,會把苦杏仁苷包裹在內,從而使得苦杏仁苷提取不完全。本試驗中采用了石油醚進行脫脂。大多文獻顯示用乙醚[11]或苯來脫脂,但乙醚和苯具有強的揮發(fā)性,且苯還具有毒性,二者對環(huán)境有污染作用且脫脂不完全,相比較而言,石油醚的脫脂效果較二者好。

        在采用紫外分光光度法進行含量測定時,有文獻用甲醇作為溶劑。雖然苦杏仁苷在甲醇中溶解性較好,但在苦杏仁苷的最大吸收波長處甲醇也顯示有吸收,會影響到苦杏仁苷的含量測定。為此,采用水作為溶劑??嘈尤受赵谒械娜芙舛容^好,不會影響苦杏仁苷的含量測定。

        參考文獻:

        [1]中國醫(yī)藥百科全書編委會.中國醫(yī)藥百科全書(維吾爾醫(yī)藥)[M].上海:上??茖W技術出版社,2005:230.

        [2]劉勇民,沙吾提·伊克木.維吾爾藥志(上)[M].烏魯木齊:新疆科技衛(wèi)生出版社,1999:77-82.

        [3]楊曉君,韓海霞 .巴旦杏的近代研究[J].中國藥業(yè),2009,18(10):85-86.

        [4]鄧 毅,張艷萍.甘肅鎮(zhèn)原杏仁中苦杏仁苷的提取及含量測定[J].甘肅中醫(yī),2000,13(1): 51-52.

        [5]趙宇瑛,尚 冰,宋曉東.苦杏仁苷的研究進展[J].安徽農業(yè)科學,2005,33(6):1 097-1 098.

        [6]周 英,郜 文.苦杏仁的生理功能和保健飲料研制[J].食品工業(yè)科技,2000,21(5):49-50.

        [7]閭肖波,蘇寶根,楊亦文,等.純苦杏仁苷的制備[J].中國醫(yī)藥工業(yè)雜志,2006(3):165-167.

        [8]車鳳斌.苦杏仁苷提取工藝研究[J].食品工業(yè)科技,1997(3):11-13.

        [9]田士林,李 莉.薔薇科植物種仁中苦杏仁苷含量測定與比較[J].安徽農業(yè)科學,2006,34(16):3 885-3 890.

        [10]赤堀昭.桃仁、苦杏仁及桃仁方劑中苦杏仁苷的酶水解[J].國外醫(yī)學:中醫(yī)中藥分冊,1985(7):31-35.

        [11]馬 辰,李春花.苦杏仁中苦杏仁苷的含量測定[J].中國實驗方劑學雜志,2000,6(2):17.

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