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        分光光度法測定柿蒂中總?cè)扑岬暮?/h1>
        2014-05-02 02:30:20馮海燕楊曉輝
        石家莊學院學報 2014年6期
        關(guān)鍵詞:香草醛柿蒂冰醋酸

        任 蕾,馮海燕,楊曉輝,雷 霓

        (石家莊學院 化工學院,河北 石家莊 050035)

        分光光度法測定柿蒂中總?cè)扑岬暮?/p>

        任 蕾,馮海燕,楊曉輝,雷 霓

        (石家莊學院 化工學院,河北 石家莊 050035)

        測定中藥柿蒂中總?cè)扑岬暮?,以藥材中指標性成分熊果酸為對照品,采?%香草醛-冰醋酸、高氯酸顯色后,分光光度法測定柿蒂提取液中總?cè)扑岬暮?結(jié)果顯示:三萜酸含量在2.32-16.24 μg/mL范圍內(nèi)呈良好線性關(guān)系,其回歸方程為:A=0.056 7C+0.000 286,r=0.998 5.柿蒂中總?cè)扑岷繛?.93%,加樣回收率平均為103.09%.該法操作簡便,重現(xiàn)性好,結(jié)果可靠,可用于柿蒂藥材中三萜酸成分的質(zhì)量控制.

        柿蒂;三萜酸;含量測定;分光光度法

        柿蒂(Kaki calyx)是柿樹科植物柿的干燥宿萼,主產(chǎn)于河北、河南、山東、福建等地,是一種傳統(tǒng)中藥.其味苦、性溫,有降氣、止呃之功能,常用于胃寒氣滯的呃逆[1].除此以外,柿蒂提取物還有鎮(zhèn)靜、抗心率失常和一定的抗生育作用[2].研究表明三萜酸類化合物為柿蒂主要活性成分,但其測定方法未見國內(nèi)外報道.筆者采用分光光度法對柿蒂中總?cè)扑岬暮窟M行了測定,旨在為柿蒂的應用研究提供理論依據(jù),也可用于柿蒂及相關(guān)產(chǎn)品的質(zhì)量控制.

        1 儀器與試劑

        1.1 儀器

        UV/VIS-916紫外分光光度計(澳大利亞GBC科學器材有限公司);YJ501型超級恒溫器(上海躍進醫(yī)療器械廠);KQ-250DE醫(yī)用數(shù)控超聲波清洗器(江蘇省昆山市超聲儀器有限公司);SHZ-D(Ⅲ)循環(huán)水式真空泵(河南省鞏義市予華儀器有限責任公司);FA2204B電子天平(上海精密科學儀器有限公司);FW100高速萬能粉碎機(天津市泰斯特儀器有限公司).

        1.2 試劑與材料

        熊果酸(批號:110742-200518,中國藥品生物制品檢定所);纖維素酶(批號:F20101015,國藥集團化學試劑公司);無水乙醇、冰醋酸、高氯酸、香草醛、甲醇、乙酸乙酯等均為分析純,實驗用水為石英高純水.柿蒂購于安國東方藥城中藥材有限公司.

        2 方法與結(jié)果

        2.1 溶液的制備

        對照品溶液:準確稱取熊果酸5.8 mg,置于25 mL容量瓶中,加無水乙醇溶解定容至刻度,得0.232 mg/mL對照品溶液.

        供試品溶液:取柿蒂粉末,參照文獻[3]的條件用石油醚(60-90℃)脫色,再按以下3種方法分別對柿蒂總?cè)扑徇M行提?。?/p>

        熱回流法 精確稱取2 g柿蒂,加入60%乙醇溶液50 mL,于80℃恒溫水浴鍋中回流提取2.5 h.減壓過濾,濾液定容至100 mL,得樣品Ⅰ.

        超聲波法 精確稱取2 g柿蒂,加入70%乙醇溶液60 mL,在60℃的溫度下超聲萃取40 min.其它操作同熱回流法,得樣品Ⅱ.

        酶輔助提取法 精確稱取2 g柿蒂,加入pH5.0 HAc-NaAc緩沖溶液18 mL和6 mg纖維素酶,置于45℃恒溫水浴鍋中酶解2h.酶解結(jié)束后沸水浴滅活3min,加入42mL無水乙醇,在60℃的條件下超聲提取40min.其它操作同熱回流法,得樣品Ⅲ.

        2.2 測定波長的選擇

        分別移取對照品溶液0.2 mL,Ⅰ-Ⅲ供試品溶液0.1 mL于10 mL量瓶中,沸水浴揮干溶劑,各加入新配制的5%香草醛-冰醋酸溶液0.2 mL,高氯酸1.0 mL,混勻,密塞,其余同標準曲線項下操作,在200-700 nm進行波長掃描.結(jié)果表明,對照品和供試品溶液吸收變化趨勢基本相符,且在 550 nm處均有明顯吸收,故選擇測定波長為550 nm.

        2.3 顯色條件的選擇

        香草醛-冰醋酸、高氯酸比色法[3-6]是測定三萜酸類化合物常用方法,但其影響因素較多,試劑的用量、反應的溫度以及反應時間等因素影響較為顯著.實驗中考察了5%香草醛-冰醋酸用量 (0.1-0.5 mL)、高氯酸用量(0.6-1.4 mL)、水浴溫度(40-80℃)及顯色時間(5-25 min)對實驗的影響,確定了最佳的顯色條件為:加入5%香草醛-冰醋酸0.2 mL,高氯酸1.2 mL,混勻,密塞,置60℃水浴中恒溫加熱15min.在此前提下,針對文獻報道中定容溶劑不統(tǒng)一的現(xiàn)象[3-6],還考察了定容溶劑對顯色體系的影響,結(jié)果如圖1所示.5種研究溶劑中,甲醇定容時體系的吸光度最小,僅為0.03;冰醋酸與乙酸乙酯定容時,吸光度最高.考慮到冰醋酸價格比較便宜,試驗選擇冰醋酸作定容溶劑.

        2.4 線性關(guān)系考察

        圖1 定容溶劑對吸光度的影響

        圖2 標準曲線圖

        精密吸取熊果酸對照品溶液0.1,0.2,0.3,0.4,0.5,0.6,0.7 mL,分別置于10mL量瓶中,沸水浴揮干,各加0.2 mL新配制的5%香草醛-冰醋酸溶液,1.2 mL高氯酸,混勻,密塞,在60℃水浴中反應15 min后,取出,于流水冷卻3 min,加冰醋酸定容.以相應試劑為空白,在550 nm波長處測吸光度(A).以A A為縱坐標,熊果酸質(zhì)量濃度(C)為橫坐標,繪制工作曲線(圖2).工作曲線方程為A=0.056 7C+0.000 286,r=0.998 5,在2.32-16.24 μg/ml濃度內(nèi)線性關(guān)系良好.

        2.5 精密度試驗

        分別精密吸取0.1 mL,Ⅰ-Ⅲ供試品溶液各5份,按2.4項下操作,測定其吸光度.結(jié)果表明,吸光度RSD分別為0.73%,1.25%和1.51%.

        2.6 穩(wěn)定性試驗

        精密吸取對照品溶液0.2 mL及Ⅰ-Ⅲ供試品溶液各0.1 mL,分別按2.4項下操作,在0-60 min內(nèi)每隔5 min測定吸光度.結(jié)果在40 min以內(nèi),吸光度變化較小,RSD分別為0.75%,1.21%,1.87%,0.52%;隨時間延長,吸光度逐漸減小,60 min時對照品吸光度的RSD為0.88%,而3份供試品溶液吸光度的RSD均大于3.0%.表明供試品溶液應在40 min以內(nèi)測定,而對照品則較穩(wěn)定,故選擇在顯色后40 min之內(nèi)測其吸光度.

        2.7 重現(xiàn)性試驗

        按2.1項下熱回流法、超聲波法和酶提取法分別制備供試品溶液,每種方法平行制備5份.精密吸取供試品溶液 0.1 mL,按2.4項下測定吸光度,計算總?cè)扑岬馁|(zhì)量分數(shù),3種提取方法的RSD分別為2.16%,0.37%和1.89%.

        2.8 回收率試驗

        精密吸?、?Ⅲ供試品溶液各0.05 mL,分別加入與樣品中總?cè)扑岷肯喈數(shù)男芄釋φ掌啡芤?.25,0.20,0.20 mL,依法測定,計算回收率.結(jié)果平均回收率分別為 103.09%(RSD為1.06%),107.54%(RSD為1.32%),104.18%(RSD為2.70%)(n=6).

        2.9 樣品的測定

        取Ⅰ-Ⅲ 供試品溶液,測定吸光度,按回歸方程計算總?cè)扑岷浚Y(jié)果見表1.

        表1 柿蒂總?cè)扑岷繙y定結(jié)果(n=5)

        3 討論

        1)本試驗以柿蒂主要三萜酸成分熊果酸為對照品,建立了比色法測定柿蒂總?cè)扑岷康姆椒?該法簡便可靠,可作為柿蒂質(zhì)量控制的依據(jù).

        2)文獻報道主要考察5%香草醛-冰醋酸用量、高氯酸用量、水浴溫度及加熱時間對顯色的影響.本實驗發(fā)現(xiàn),定容溶劑對熊果酸顯色體系吸光度的大小也有顯著影響,冰醋酸和乙酸乙酯是合適的定容溶劑.

        3)試驗比較了熱回流提取、超聲波提取和酶法輔助提取3種不同提取方法,具體的提取條件為L9(43)正交實驗的結(jié)果.結(jié)果表明:熱回流提取法最好,提取量最高,耗時與酶法輔助提取相當;超聲提取法雖簡單省時,但提取率較低,提取不完全.因此,熱回流法是提取柿蒂總?cè)扑岬挠行Х椒?

        4)樣品測定的結(jié)果可知,柿蒂富含三萜酸,含量高達5.93%,相比柿葉[3]具有更大的藥用開發(fā)價值和潛力. 5)香草醛放置過程中易被氧化,因此5%香草醛-冰醋酸臨用前要新鮮配制,以減小實驗誤差.

        [1]國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:一部[S].北京:中國醫(yī)藥科技出版社,2010:233.

        [2]熊海濤,唐志華,鄭行望.火焰原子吸收光譜法測定柿蒂中微量元素[J].理化檢驗(化學分冊),2010,46(10):1 211-1 212.

        [3]范杰平,何潮洪,傅鵬飛.柿葉中總?cè)频奶崛∫约靶芄岱蛛x、純化研究[J].中國藥學雜志,2007,42(16):1 258-1 261.

        [4]季春,張融,胡晨,等.比色法測定南蛇藤中總?cè)祁惓煞值暮縖J].時珍國醫(yī)國藥,2009,20(4):909-910.

        [5]馬榮,劉岱琳,殷軍.比色法測定固公果根中三萜類成分的含量[J].武警醫(yī)學院學報,2010,19(2):114-116.

        [6]蔡亞玲,阮金蘭,蘇群,等.紫背鼠尾草中總?cè)扑岬暮繙y定[J].中藥材,2008,31(5):692-693.

        (責任編輯 李健飛)

        Determination of the Content of Triterpenoidic Acid in Kaki Calyx

        REN Lei,F(xiàn)ENG Hai-yan,YANG Xiao-hui,LEI Ni
        (School of Chemical Engineering,Shijiazhuang University,Shijiazhuang,Hebei 050035,China)

        The content of triterpenoidic acid in Kaki calyx is determined.With ursolic acid as the reference,5% vanillin-acetic acid and perchloric acid as the developer,the spectrophotometric method is used for determining the triterpenoidic acid in Kaki calyx.Results show that the calibration curve is linear(r=0.9985)in the range of 2.32~ 16.24 μg/mL,and that the regression equation is A=0.0567C+0.000286.The content of triterpenoidic acid in Kaki calyx is about 5.93%and the average recovery is 103.09%.Therefore,the method is simple,accurate and reproducible,and it could be used for monitoring the quality of triterpenoidic acid in Kaki calyx.

        Kaki calyx;Triterpenoidic acid;content determination

        R284.1

        :A

        :1673-1972(2014)06-0028-03

        2014-07-23

        石家莊學院自然科學研究啟動基金(12YB011)

        任蕾(1980-),女,河北石家莊人,講師,主要從事天然食品抗氧化劑及其應用研究.

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