馬建華,魏建忠
(安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)動物科技學(xué)院,安徽合肥230000)
豬鏈球菌(Streptococcus suis,SS)呈世界范圍流行,是一種重要的人獸共患病原菌[1],根據(jù)豬鏈球菌表面莢膜多糖(capsular polysaccharide,CPS)的抗原性,可以將其分為35個血清型(1~34型和1/2型),其中毒力最強、臨床檢出率最高的血清型是豬鏈 球 菌 2 型 (Streptococcus suis serotype 2,SS2)[2-3]。2005年,四川省資陽市暴發(fā)了大規(guī)模的人感染SS2的疫情,病死率極高[4],引起了高度關(guān)注。國內(nèi)外研究認為豬鏈球菌的致病性與其毒力因子有密切關(guān)系,目前研究較多的豬鏈球菌主要毒力因子有莢膜多糖(capsular polysaccharide,CPS)、溶菌酶釋放蛋白(muramidase-released protein,MRP)、胞外因子(extracellular protein factor,EF)和溶血素(suilysin,SLY)。
莢膜多糖由鼠李糖、半乳糖、葡萄糖、N-乙酰葡萄糖胺和唾液酸等5個單糖組成,由于所含單糖種類及連接方式的不同,造成莢膜多糖的成分與結(jié)構(gòu)不同。莢膜多糖的成分和結(jié)構(gòu)與細菌的病原性和血清型有關(guān),是致病性分離株所必需的組分。莢膜多糖在逃避機體免疫系統(tǒng),保護細菌不被吞噬中扮演著重要角色。Houde M等[5]研究了SS2的莢膜多糖抗吞噬的分子機制,采用經(jīng)熱滅活的SS2莢膜多糖野生株和莢膜多糖缺失株與巨噬細胞共孵育,分別于1、6、24h后在激光共聚焦顯微鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)野生株較缺失株延遲和抑制了感染過程中一氧化氮的產(chǎn)生,表明莢膜多糖對細菌感染期一氧化氮信號通路存在抑制作用,從而破壞了細胞表面的脂質(zhì)微區(qū),阻止了乳糖苷神經(jīng)酰胺的依賴識別作用,保護細菌抗巨噬細胞吞噬。胡丹等[6]通過對05ZYH33野生株和莢膜多糖缺失株生物學(xué)特性比較發(fā)現(xiàn),缺失株由于失去表面黏多糖,成鏈能力減弱,失去與SS2莢膜特異抗血清發(fā)生凝集反應(yīng)的能力,更易被全血清除,但對上皮細胞HEP-2的黏附能力增強,表明莢膜在細菌抵抗吞噬和細菌黏附過程中發(fā)揮重要作用。
溶菌酶釋放蛋白分子質(zhì)量為136ku,是豬鏈球菌細胞壁上的大分子糖蛋白。Vecht U等[7]對180株自然感染SS2分離株進行研究,發(fā)現(xiàn)在致病性菌株中均含有溶菌酶釋放蛋白和胞外因子蛋白,而在非致病株中卻不含有這2種蛋白,推斷這2種蛋白與SS致病性有緊密關(guān)系,是SS非常重要的毒力因子。曾巧英等[8-9]先后以HEP-2細胞和仔兔脾微血管內(nèi)皮細胞為體外細胞模型,將純化的溶菌酶釋放蛋白溶液和細胞共孵育,光鏡下觀察,溶菌酶釋放蛋白可以誘導(dǎo)HEP-2上皮細胞出現(xiàn)單個細胞或融合成多核巨細胞后凋亡的現(xiàn)象,表明溶菌酶釋放蛋白具有誘導(dǎo)上皮細胞凋亡的功能。微血管內(nèi)皮細胞亦可以和純化的溶菌酶釋放蛋白相互作用發(fā)生形態(tài)學(xué)變化進而凋亡,說明溶菌酶釋放蛋白單獨足以破壞大腦的血管內(nèi)皮細胞屏障。
胞外因子分子質(zhì)量為110ku,是僅能在細菌培養(yǎng)上清液中分離到的胞外蛋白。Fittipaldi N等[10]對100株SS的血清型和標(biāo)記毒力基因的分布進行了研究,結(jié)果顯示最普遍的表型是 MRP+EFSLY-(40%)和 MRP-EF-SLY+(35%)。研究表明,不同國家SS2分離株的溶菌酶釋放蛋白和胞外因子的相對分子質(zhì)量有所差異,如美國、澳大利亞、荷蘭、西班牙等國家SS2致病株多數(shù)為大分子質(zhì)量的溶菌酶釋放蛋白和胞外因子,而北美加拿大的SS2致病菌株多為小分子質(zhì)量的溶菌酶釋放蛋白或超大分子質(zhì)量的胞外因子。此外2種毒力因子都具有一定的免疫原性,但溶菌酶釋放蛋白目前僅有截短的原核表達[11],推測可能是由于溶菌酶釋放蛋白對宿主菌的毒性作用導(dǎo)致其不能完整地正常合成。另有研究證明2種蛋白聯(lián)合起來免疫,對鏈球菌保護力效果更佳[12]。
溶血素屬依賴膽固醇的細胞溶素家族,是SS生長過程中分泌的一種蛋白。溶血素由sly基因編碼,分為2種類型,即對氧敏感的鏈球菌溶血素O(SLO)和對氧穩(wěn)定的鏈球菌溶血素S(SLS),其分子質(zhì)量分別為54ku和62ku。溶血素通過對機體血小板和淋巴細胞的損傷來破壞機體的凝血系統(tǒng)和免疫系統(tǒng),溶血素陽性的SS可以破壞脈絡(luò)叢上皮細胞,從而突破腦脊液屏障,出現(xiàn)腦膜炎癥狀[13]。Takeuchi D等[14]根據(jù)ST1型和ST104型菌株臨床致病力方面的差異(ST1型和ST104型菌株均能引起敗血癥,但ST1型菌株更易引起腦膜炎的發(fā)生),在溶血素基因轉(zhuǎn)錄和mRNA翻譯水平上進行對比分析,發(fā)現(xiàn)ST104型菌株產(chǎn)生低水平的溶血素。動物攻毒試驗結(jié)果表明,溶血素基因敲除株感染組小鼠存活率顯著增高,野生菌株感染組小鼠死亡前神經(jīng)癥狀明顯,攻毒后72h,2組感染小鼠血液與腦組織細菌分布出現(xiàn)顯著差異。組織病理學(xué)分析顯示,接種野生菌株組的小鼠腦組織血管擴張,出現(xiàn)大量中性粒細胞、單核巨噬細胞;而敲除株感染組的小鼠腦組織未出現(xiàn)明顯出血現(xiàn)象,炎癥細胞也較少,說明溶血素與SS導(dǎo)致的腦膜炎有關(guān)。Seitz M等[15]構(gòu)建了豬鏈球菌CPS-SLY+株和同源溶血素缺失株,體外溶血及對上皮細胞黏附、入侵試驗結(jié)果發(fā)現(xiàn),缺失株的體外溶血活性消失,CPS-SLY+株的黏附、入侵作用均比溶血素缺失株顯著增高,結(jié)果表明,溶血素促進了SS對上皮細胞的黏附和入侵作用。此外,對SS的溶血素細胞溶解作用研究中發(fā)現(xiàn),溶血素介導(dǎo)入侵上皮細胞,造成細胞溶解時,并不需要像CDC家族那樣在細胞膜上打孔來改變細胞通透性從而導(dǎo)致細胞溶解,其分子機制仍需進一步研究。
溶血素同時也是一種良好的免疫保護性抗原[16]。Liu L等[17]在分析SS2菌株05ZYH33全基因組序列的基礎(chǔ)上,克隆表達了溶血素蛋白并對此蛋白進行了免疫保護評價,結(jié)果顯示,溶血素具有明顯免疫保護作用。Du H等[18]構(gòu)建了重組溶血素蛋白(rSLY)和完全缺失溶血活性的點突變蛋白rSLY(P353L),通過動物試驗,對誘導(dǎo)炎癥反應(yīng)及致死性攻擊免疫保護方面做了評估。突變體rSLY與rSLY相比,突變體rSLY在反應(yīng)前期刺激誘導(dǎo)產(chǎn)生了較低水平的IL-6、KC和IL-10;SS感染小鼠后被動免疫突變體rSLY抗血清,24h內(nèi)未在小鼠體內(nèi)檢測到組織病變,表明突變體rSLY具有很好的免疫保護性。由于能夠抑制SS感染早期引起的炎癥反應(yīng),突變體rSLY可以作為防治SS中毒性休克的候選疫苗株。
雖然國內(nèi)外公認SS的主要毒力因子是莢膜多糖、溶菌酶釋放蛋白、胞外因子和溶血素[19],但有研究表明,缺失或者敲除這些毒力因子后,菌株仍然具有毒力[20]。因此,新的毒力相關(guān)基因被不斷發(fā)現(xiàn)和鑒定。
唾液酸作為莢膜多糖的單糖成分之一,又稱N-乙酰神經(jīng)氨酸。Lecours M P等[21]證明了唾液酸不是莢膜的主要抗原決定簇。董瑞萍[22],王長軍[23]等分別對唾液酸合成相關(guān)基因neuB和neuC進行敲除,發(fā)現(xiàn)敲除株莢膜明顯變薄,質(zhì)地更加緊密。小鼠致病試驗中,敲除株毒力顯著減弱。石潔等[24]構(gòu)建了莢膜唾液酸缺失株并進行毒力對比試驗,通過腦組織病理切片分析,在感染野生株的小鼠腦組織中可見顯著的膠質(zhì)細胞增生樣結(jié)節(jié),同時可見分散出血并伴隨白細胞浸潤,提示野生株能損害血腦屏障引起腦膜炎;體外小鼠全血細胞體系刺激試驗,發(fā)現(xiàn)莢膜唾液酸缺失株刺激后炎性因子MCP-1、IL-6的分泌水平顯著高于野生株組,提示莢膜唾液酸可能在宿主對SS2的識別與應(yīng)答中發(fā)揮抑制作用。試驗還對比了野生菌株和缺失株與宿主細胞的作用,表明莢膜唾液酸缺失后,病原菌對宿主上皮細胞和內(nèi)皮細胞的黏附、入侵作用增強,而在宿主專職免疫細胞內(nèi)的存活能力顯著減弱,以上說明唾液酸對SS的致病性具有重要意義。
Cbp40是通過SS2菌株HA9801和T15進行抑制差減雜交試驗證實的SS2的毒力基因[25],與金黃色葡萄球菌的膠原結(jié)合蛋白Cna有共同的保守結(jié)構(gòu)域。在斑馬魚感染模型中,Cbp40基因敲除株對HEP-2細胞的黏附、生物膜形成的能力及毒力都有所降低。通過基因表達的陣列評估SS2菌株ZY05719、Cbp40基因敲除株與小鼠腦微血管細胞的相互作用,發(fā)現(xiàn)在炎癥和免疫反應(yīng),白細胞黏附和異嗜細胞黏附方面存在差異。Cbp40作為一種與宿主細胞黏附的細胞外基質(zhì)蛋白,在感染過程中起著重要的作用。
Li P等[20]對野毒株ZY458進行了VirA基因缺失株458Deltavir和功能互補株458Deltavir(pVir)的構(gòu)建,家兔動物試驗結(jié)果顯示,接種野毒菌株ZY458的家兔在感染6d內(nèi)全部死亡,接種功能互補株458Deltavir(pVir)5只家兔中4只于感染6d內(nèi)死亡,而接種VirA基因缺失株458Deltavir組家兔觀察期無任何臨床癥狀出現(xiàn),體重增加正常,全部存活。此外,通過對野生型毒株和弱毒株的序列分析和對比,發(fā)現(xiàn)VirA基因只存在于強毒株中,因此該基因的功能可能與豬鏈球菌毒力有關(guān),但其在豬鏈球菌中的致病機理仍不十分清楚。
Fittipaldi N等[26]鑒定出SS2胞壁肽聚糖脫乙酰作用相關(guān)基因pgdA。體外試驗表明,pgdA基因的缺失并沒有導(dǎo)致SS2對溶菌酶敏感性的增加。pgdA基因缺失株在CD1小鼠和豬的感染模型中都呈現(xiàn)減毒趨勢,毒力損傷主要由于血液中細菌含量減少。細胞試驗中pgdA缺失株很容易被中性粒細胞殺滅,野毒株體外與中性粒細胞共培養(yǎng)過程中pgdA表達水平均上調(diào),提示肽聚糖脫乙酰作用可能是SS2抵抗機體免疫系統(tǒng)的重要機制。
Trag是采用IVIAT(in vivo induced antigen technology)在SS2豬康復(fù)血清中通量篩選鑒定出的感染相關(guān)因子之一,參與細菌的分泌途徑。Zhang H等[27]發(fā)現(xiàn)Trag基因存在于SS2的毒力菌株中,但不存在于無毒T15菌株中。Trag基因缺失株感染斑馬魚后毒力減弱,推測該基因的功能可能與SS2毒力有關(guān),但其致病機理有待進一步研究。
一個位于89kb毒力島編碼Ⅲ型溶血素相關(guān)蛋白[28]的基因Hhly3被發(fā)現(xiàn),對其生物學(xué)特性研究發(fā)現(xiàn),Hhly3基因缺失株的細胞溶解及溶血活性明顯低于野生菌株。體外全血生長和斑馬魚動物試驗中,缺失株的感染力和毒力均比野生菌株低。試驗表明,除sly外,SS2還能編碼另一種具有溶血活性的溶血素。
CiaRH是二元調(diào)控系統(tǒng),廣泛存在于細菌中,使生物體在感受并處理環(huán)境刺激時對基因表達做出調(diào)整。Li J等[29]構(gòu)建了CiaRH缺失株,通過體外和體內(nèi)試驗對其毒力進行了測定。與野生株相比,缺失株對上皮細胞和豬髖動脈內(nèi)皮細胞的黏附能力顯著降低,然而巨噬細胞對SS的殺菌活性和體內(nèi)血液對SS的清除力都有所增強。缺失株在CD1小鼠和豬體內(nèi)毒力減弱,發(fā)病率和病死率都明顯降低,試驗結(jié)果表明,CiaRH與SS毒力有關(guān)。
分解代謝控制蛋白A在其他鏈球菌屬中具有調(diào)節(jié)免疫應(yīng)答的作用,對SS毒力有顯著影響。Willenborg J等[30]通過構(gòu)建分解代謝控制蛋白A缺失株,得出在富含葡萄糖環(huán)境下分解代謝控制蛋白A是表達CPS所必須的,并推測分解代謝控制蛋白A可能也具有抵御吞噬細胞的殺傷作用。
金屬結(jié)合脂蛋白A[31]是SS金屬結(jié)合脂蛋白,需在低錳環(huán)境下生長,參與金屬轉(zhuǎn)運系統(tǒng)的組成,該種轉(zhuǎn)運系統(tǒng)在細菌從宿主體內(nèi)獲取營養(yǎng)的過程中起著至關(guān)重要的作用,其基因缺失株對過氧化氫易感,小鼠感染金屬結(jié)合脂蛋白A基因敲除株顯示為無毒力表型,由此該基因可能與SS的生理生化特性及毒力有關(guān)。
目前SS沒有發(fā)現(xiàn)可區(qū)分強毒株、弱毒株、無毒株的標(biāo)志性毒力因子[32],國內(nèi)外針對SS毒力因子研究較流行的方法是基因敲除或突變法,由此鑒定出的基因元件可能并不是SS毒力因子,由于參與SS基礎(chǔ)代謝的相關(guān)基因很多,缺失后會影響SS的生長,造成毒力降低或者消失的假象。SS毒力因子的組成十分復(fù)雜,各毒力因子的作用機理及其毒力因子之間的相互作用目前尚不清楚,有待進一步研究。綜上所述,SS的毒力是由多種毒力因子協(xié)同作用的,對毒力因子的深入研究將有助于探究豬鏈球菌的致病機理,建立快速準(zhǔn)確的診斷鑒定方法,對疫苗的研發(fā)也有著重要意義。
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