何振輝,翁閃凡,何太平,覃燕梅,梁念慈
1)佛山科學(xué)技術(shù)學(xué)院醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)檢驗系 佛山 528000 2)廣東醫(yī)學(xué)院生物化學(xué)與分子生物學(xué)研究所 湛江 524023 3)廣東省天然藥物研究與開發(fā)重點實驗室 湛江 524023
半邊旗(PterissemipinnataL, PsL)又名半邊蕨、半邊梳,為鳳尾蕨科鳳尾蕨屬植物,廣泛分布于南方各省,民間常用于清熱解毒、消腫止痛。5F是作者所在的課題組從PsL中提取的二萜類化合物,化學(xué)名為11α-羥基-15-氧-16-烯-ent-貝殼杉烷-19酸,分子式為C20H28O4,相對分子質(zhì)量為332.4。以往的研究[1-2]表明,5F能誘導(dǎo)多種腫瘤細胞凋亡,具有較強的抗腫瘤活性。何太平等[3-4]發(fā)現(xiàn)5F影響高轉(zhuǎn)移卵巢癌細胞HO-8910PM多種癌相關(guān)基因尤其是P53、Nr1d1的表達。作者以人臍靜脈內(nèi)皮細胞(HUVEC)為受試對象,研究5F對高轉(zhuǎn)移乳癌細胞MDA-MB-231培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC血管生成潛能的影響,并分析其作用機制。
1.1材料HUVEC、MDA-MB-231細胞分別購自美國Cascade Biologics公司和美國典型培養(yǎng)物保藏中心。小牛血清購自杭州四季青公司,MTT購自Amresco公司,DMEM培養(yǎng)基購自Gibco公司,PVPF濾膜(孔徑8 μm,直徑13 mm)購自O(shè)smonics公司,F(xiàn)ibronectin、Matrigel購自BD公司。KDR小鼠IgG單抗、Flt-1小鼠IgG單抗、β-actin山羊IgG多抗購自Santa Cruz公司,使用時以TBST溶液按1(1 000~2 000)稀釋;辣根過氧化物酶標記山羊抗小鼠IgG、兔抗山羊IgG購自北京中杉金橋生物技術(shù)有限公司,使用時以TBST溶液按1(4 000~10 000)稀釋。5F由廣東醫(yī)學(xué)院天然藥物開發(fā)中心提供,實驗前以DMSO溶解,培養(yǎng)液稀釋。
1.2細胞培養(yǎng)和乳癌細胞培養(yǎng)物的制備MDA-MB-231細胞、HUVEC分別培養(yǎng)于含體積分數(shù)10%小牛血清、1×105U/L青霉素和100 mg/L鏈霉素的DMEM完全培養(yǎng)基中,37 ℃、體積分數(shù)5%CO2飽和濕度孵箱中培養(yǎng)。
取生長良好的MDA-MB-231,棄去培養(yǎng)液,加入無血清DMEM培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)24 h, 收集上清,即為乳癌細胞培養(yǎng)物,過濾除菌,備用。
1.3HUVEC增殖抑制實驗采用MTT法。參照文獻[5],選取處于對數(shù)生長期的HUVEC,確保細胞存活率在97%以上。細胞以(0.5~1.0)×105mL-1接種于96孔培養(yǎng)板,每孔100 μL。在37 ℃、體積分數(shù)5%CO2、飽和濕度條件下過夜,換乳癌細胞培養(yǎng)物后,用藥組加入1 μL不同濃度5F,使5F終濃度為10、20、40、80、160 μmol/L,每個濃度設(shè)3個平行孔,并設(shè)空白對照組、溶劑對照組及完全培養(yǎng)基調(diào)零孔,置孵箱中6、24 h后,每孔加入10 μL 5 g/L MTT繼續(xù)培養(yǎng)4 h。傾去培養(yǎng)液,每孔加入200 μL DMSO溶解,于酶標儀上測定波長570 nm處的吸光度。實驗重復(fù)3次。細胞增殖抑制率=(1-給藥組細胞吸光度值/對照組細胞吸光度值)×100%。
1.4乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC穿膜、趨化性運動能力測定[6]將PVPF濾膜用指甲油貼在Transwell小室上,風(fēng)干;在膜的外表面涂10 μL纖連蛋白(5 μg),置超凈臺內(nèi)風(fēng)干,膜的內(nèi)表面涂10 μL Matrigel(5 μg),干燥后形成人工重組基底膜。收集對數(shù)生長期的HUVEC,懸浮于1 g/L BSA-DMEM無血清培養(yǎng)基中,調(diào)整密度為1×109L-1。將Transwell小室浸于24孔板(每孔預(yù)先加入600 μL 乳癌細胞培養(yǎng)物)中,每個小室加入100 μL HUVEC懸液,同時加入20、40、80 μmol/L的5F 1 μL,對照組加入等量的PBS。37 ℃、體積分數(shù)5%CO2孵箱內(nèi)孵育6 h。將Transwell小室取出,濾膜用甲醇固定1 min,蘇木素染色3 min,水洗,伊紅染色10 s,水洗,用生理鹽水浸濕的棉簽擦去濾膜內(nèi)表面的細胞;用封片膠將濾膜封于載玻片上,于高倍鏡下計數(shù)穿膜細胞。每膜計數(shù)5個視野,每組平行設(shè)3個濾膜。趨化性運動能力測定與上述實驗相比,只是PVPF濾膜上不鋪 Matrigel,其余處理相同。抑制率=(1-給藥組穿膜或遷移細胞數(shù)/對照組穿膜或遷移細胞數(shù))×100%。
1.5HUVEC基質(zhì)黏附實驗96孔培養(yǎng)板每孔預(yù)鋪Matrigel,置超凈臺內(nèi)風(fēng)干后用20 g/L BSA封閉1 h,PBS沖洗;收集預(yù)先經(jīng)20、40和80 μmol/L 5F處理24 h的以乳癌細胞培養(yǎng)物培養(yǎng)的HUVEC細胞,懸浮于含1 g/L BSA-DMEM培養(yǎng)基中,調(diào)整細胞密度為8×105mL-1,每孔加入100 μL,并設(shè)空白對照組、溶劑對照組及DMEM培養(yǎng)基調(diào)零孔。37 ℃培養(yǎng)1 h;棄培養(yǎng)液,以PBS輕輕沖洗3遍除去未黏附細胞;棄去PBS,每孔加入100 μL DMEM完全培養(yǎng)基和 50 μL 1 g/L MTT繼續(xù)培養(yǎng)4 h。傾去MTT,每孔加入150 μL DMSO溶解,振搖15 min,于酶標儀上測定波長570 nm處的吸光度。每組平行設(shè)3個孔,實驗重復(fù)3次。黏附抑制率= (1-給藥組黏附細胞吸光度/對照組黏附細胞吸光度)×100%。
1.6各組細胞Flt-1和KDRmRNA的檢測[7]待HUVEC貼壁生長后,加入乳癌細胞培養(yǎng)物,再分別加入PBS、體積分數(shù)0.1%DMSO和終濃度為20、40、80 μmol/L 5F,處理24 h后收集細胞,提取總RNA,逆轉(zhuǎn)錄為cDNA。Flt-1上游引物5’-GAC TAGATAGCGTCACCAG-3’,下游引物5’-TAAGACT GCCAAAGATGTT-3’; KDR上游引物5’-AGGGTG GAGGTGACTGAG-3’, 下游引物5’-GAGTCAGT GGAGGTGGGA-3’; GAPDH上游引物5’-TCATT GACCTCAACTACATGGTTT-3’,下游引物5’-GAAGATGGTGATGGGATTTC-3’。PCR反應(yīng)體系按試劑盒說明配制,在Mx3000P實時定量熒光PCR儀上進行反應(yīng)。反應(yīng)條件:94 ℃變性5 min;94 ℃ 10 s,53 ℃ 20 s,72 ℃ 15 s,共循環(huán)40次。記錄各管Ct值,采用2-ΔΔCt法計算Flt-1、KDR及GAPDH mRNA的表達量,以Flt-1/GAPDH及KDR/GAPDH作為Flt-1及KDR mRNA的相對表達量。
1.7各組細胞Flt-1和KDR蛋白的檢測細胞同1.6中分組處理24 h,收集,PBS洗滌后用預(yù)冷的細胞裂解液刮下,轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的1.5 mL離心管中,冰育30 min后,于4 ℃,12 000g離心15 min,收集上清。取少量上清用考馬斯亮藍法進行蛋白定量。Western blot的方法參照《分子克隆實驗指南》,以β-actin為內(nèi)參。溶劑對照組及不同劑量5F組Flt-1和KDR蛋白的相對表達量為各組相應(yīng)指標與空白對照組的比值×100%。
1.8統(tǒng)計學(xué)處理采用SAS V8.1處理數(shù)據(jù)。采用2×7析因設(shè)計的方差分析比較處理不同時間各組細胞的增殖抑制率,余指標采用單因素方差分析,組間兩兩比較用SNK-q檢驗。檢驗水準α=0.05。
2.1 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC增殖的抑制作用見表1。5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)HUVEC的增殖具有一定程度的抑制作用,并且抑制率均隨濃度和時間的增加而增加。20、40、80 μmol/L的5F在6 h內(nèi)對血管內(nèi)皮細胞生長的抑制率均低于10%,且與空白對照組相比,差異無統(tǒng)計學(xué)意義,因此在考察5F對HUVEC體外穿膜和趨化性運動能力的影響時,為了排除5F自身對細胞的毒性作用,選擇20、40、80 μmol/L作為實驗濃度。
表1 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC增殖的抑制作用 (n=3)
F組間=64.852,F(xiàn)時間=131.393,F(xiàn)交互=23.266,P<0.001;*:與空白對照組相比,P<0.05;△:與空白對照組相比,P<0.01。
2.2 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC穿膜能力、趨化性運動能力及黏附基質(zhì)能力的影響見圖1、2及表2。5F能明顯抑制乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC穿膜能力、趨化性運動能力及黏附基質(zhì)能力。
圖1 穿膜能力實驗中黏附在PVPF膜上的HUVEC(×400)
圖2 趨化性運動能力實驗中黏附在PVPF膜上的HUVEC(×400)
表2 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC穿膜能力、趨化性運動能力及黏附基質(zhì)能力的影響 (n=3) %
*:與空白對照組相比,P<0.01。
2.3 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVECFlt-1、KDRmRNA和蛋白表達的影響見圖3,表3、4。不同濃度的5F作用于乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC 24 h后, 細胞中Flt-1、KDR mRNA和蛋白的表達水平均下調(diào)。
表3 各處理組HUVEC KDR、Flt-1 mRNA相對表達量的比較 (n=3) ×10-4
*:與空白對照組相比,P<0.05。
圖3 5F對乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC KDR、Flt-1蛋白表達的影響
表4 各處理組HUVEC KDR、Flt-1 蛋白表達的比較 (n=3) %
*:與空白對照組相比,P<0.05。
對于腫瘤血管生成抑制劑,一般可以用分子模型、細胞模型、組織器官模型來篩選和研究其作用機制。隨著內(nèi)皮細胞培養(yǎng)技術(shù)的發(fā)展,血管形成的許多過程都可以用血管內(nèi)皮細胞模型進行研究,如血管內(nèi)皮細胞的增殖、血管內(nèi)皮細胞向腫瘤組織的浸潤、運動等[8]。該研究結(jié)果顯示5F具有抑制高轉(zhuǎn)移乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC體外增殖、穿膜、趨化性運動能力和黏附基質(zhì)能力。但體外有作用的物質(zhì)在體內(nèi)不一定有相同的作用,結(jié)合先前的研究[9],下一步應(yīng)以具體的體內(nèi)實驗如構(gòu)建裸鼠乳癌模型來觀察5F抗腫瘤血管生成的作用。
腫瘤血管生成的首要環(huán)節(jié)是腫瘤血管生成因子與血管生成抑制因子失衡,血管生成表型形成。在諸多血管生成因子中,血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor, VEGF)居于中心地位[10]。VEGF與其受體結(jié)合后發(fā)揮生物學(xué)作用。目前,VEGF受體(VEGFR)已發(fā)現(xiàn)有5種:VEGFR-1(Flt-1), VEGFR-2(KDR/Flk-1), VEGFR-3(Flt-4),NP-1和NP-2。Flt-1、KDR、Flt-4均是受體酪氨酸蛋白激酶;Flt-1、KDR是VEGF的主要受體,主要在血管內(nèi)皮細胞上表達, Flt-4主要存在于淋巴管內(nèi)皮細胞[11]。
KDR是VEGF最重要的受體,處于信號轉(zhuǎn)導(dǎo)的上游。Rastelli等[12]發(fā)現(xiàn)VEGFR-2在VEGF所誘導(dǎo)的血管生成和血管通透性中起主要作用。單獨使用KDR抑制劑就能阻斷VEGF和bFGF所誘導(dǎo)的血管生成。VEGF能通過Grb10上調(diào)KDR的表達?;罨腒DR能夠激活PI3K、PLC-γ,引起血管內(nèi)皮細胞的遷移和血管通透性增加;通過黏附斑激酶和Src的相互作用,促進血管內(nèi)皮細胞的增殖和運動,抑制其凋亡[13]。該實驗結(jié)果顯示5F可下調(diào)乳癌細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC中KDR mRNA和蛋白的表達,這可能是5F抑制MDA-MB-231細胞培養(yǎng)物(含有高分泌水平VEGF)引發(fā)的血管內(nèi)皮細胞的增殖、運動、浸潤基底膜等生物學(xué)作用的原因。
在VEGFR中,F(xiàn)lt-1的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)機制目前還未明了?;蚯贸椒@示Flt-1缺乏的小鼠死于血管生成過多。Flt-1 mRNA的剪接可產(chǎn)生可溶性的Flt-1(sFlt-1)。sFlt-1跟VEGF結(jié)合后,不能發(fā)生信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。sFlt-1能抑制腫瘤血管生成。也有報道[14]認為Flt-1能誘導(dǎo)單核巨噬細胞遷移并分泌VEGF,因此Flt-1信號轉(zhuǎn)導(dǎo)通路能促進腫瘤生長和轉(zhuǎn)移。該實驗結(jié)果顯示5F下調(diào)MDA-MB-231細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC中Flt-1的表達,這種作用究竟是促進還是抑制HUVEC的血管生成潛能,尚待進一步研究。
總之,該研究結(jié)果顯示,5F 能抑制MDA-MB-231細胞培養(yǎng)物誘導(dǎo)的HUVEC體外增殖、穿膜、趨化性運動能力和黏附基質(zhì)能力,其作用機制可能與5F下調(diào)HUVEC KDR mRNA和蛋白表達水平有關(guān)。結(jié)合課題組先前的研究[9,15],提示5F具有開發(fā)為腫瘤血管生成抑制劑的潛能。
[1]Chen GG, Leung J, Liang NC, et al. Ent-11α-hydroxy-15-oxo-kaur-16-en-19-oic-acid inhibits hepatocellular carcinoma in vitro and in vivo via stabilizing IkBα [J]. Invest New Drugs, 2012, 30(6):2210
[2]Li MY, Liang NC, Chen GG. Ent-11α-hydroxy-15-oxo-kaur-16-en-19-oic-acid induces apoptosis of human malignant cancer cells[J]. Curr Drug Targets, 2012, 13(14):1730
[3]何太平, 覃燕梅, 莫麗兒, 等. 半邊旗二萜類化合物5F對高轉(zhuǎn)移卵巢癌HO-8910PM細胞中癌相關(guān)基因表達的影響[J]. 中國藥理學(xué)通報, 2008,24(1):117
[4]何太平, 吳科鋒, 呂應(yīng)年, 等. 半邊旗二萜化合物5F對HO-8910PM細胞中Nr1d1表達的影響[J]. 中國中藥雜志, 2009, 34(10): 1268
[5]羅娟,許偉,薛天陽,等. 苦參堿對人神經(jīng)母細胞瘤SH-SY5Y細胞的作用機制[J]. 實用兒科臨床雜志,2012,27(3):190
[6]李金鋒, 豐貴文, 王躍, 等. COX-2基因沉默對OS-RC-2細胞生長和侵襲能力的影響[J]. 鄭州大學(xué)學(xué)報:醫(yī)學(xué)版, 2010, 45(6): 986
[7]鄧凡,王春霞,許萬福,等. PKD3上調(diào)前列腺癌細胞中PSA 表達及機制[J]. 南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2010,30(8):1779
[8]Bocci G, Fioravanti A, Orlandi P, et al. Metronomic ceramide analogs inhibit angiogenesis in pancreatic cancer through up-regulation of caveolin-1 and thrombospondin-1 and down-regulation of cyclin D1[J]. Neoplasia, 2012, 14(9):833
[9]何振輝, 何太平, 莫麗兒, 等. 白藜蘆醇與半邊旗二萜類化合物5F對活體血管生成的影響[J]. 實用醫(yī)技雜志, 2006, 13(1): 1
[10]何振輝,梁念慈.以VEGF和bFGF及其受體為靶點的抗腫瘤血管治療[J].國外醫(yī)學(xué):生理、病理科學(xué)與臨床分冊, 2004, 24(2):162
[11]Shibuya M. Vascular Endothelial Growth Factor (VEGF) and Its Receptor (VEGFR) Signaling in Angiogenesis: A Crucial Target for Anti- and Pro-Angiogenic Therapies [J]. Genes Cancer, 2011, 2(12): 1097
[12]Rastelli L, Valentino ML, Minderman MC, et al. A KDR-binding peptide (ST100, 059) can block angiogenesis, melanoma tumor growth and metastasis in vitro and in vivo [J]. Int J Oncol, 2011, 39(2): 401
[13]Holmqvist K, Cross MJ, Rolny C, et al. The adaptor protein shb binds to tyrosine 1175 in vascular endothelial growth factor (VEGF) receptor-2 and regulates VEGF-dependent cellular migration[J]. J Biol Chem, 2004, 279(21): 22267
[14]Murakami M, Zheng Y, Hirashima M, et al. VEGFR1 tyrosine kinase signaling promotes lymphangiogenesis as well as angiogenesis indirectly via macrophage recruitment [J]. Arterioscler Thromb Vasc Biol, 2008, 28(4):658
[15]李立,呂應(yīng)年,劉義,等. 半邊旗提取物5F誘導(dǎo)HepG2細胞凋亡與p53活化及血管內(nèi)皮生長因子抑制有關(guān)[J]. 中草藥, 2010, 41(2): 241