黃永紅,徐方云,呂農(nóng)華
(1.南昌大學(xué)第一附屬醫(yī)院消化內(nèi)科,南昌 330006;2.南昌大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院病理生理教研室,南昌 330006)
水通道蛋白5(aquaporin 5,AQP5)是跨膜水通道蛋白家族的重要成員之一,廣泛分布于分泌性腺體上皮組織和細(xì)胞,在體內(nèi)水平衡和腺體分泌等方面起著重要作用[1]。新近研究表明,AQP5在多種腫瘤組織細(xì)胞中呈異常表達(dá),可能通過(guò)調(diào)節(jié)腫瘤細(xì)胞的增殖與轉(zhuǎn)化[2]、影響腫瘤細(xì)胞的侵襲與遷移等參與腫瘤的發(fā)生與發(fā)展[3]。因此,AQP5正成為腫瘤研究的新領(lǐng)域。本研究運(yùn)用分子生物學(xué)方法,構(gòu)建人AQP5重組質(zhì)粒并將其導(dǎo)入人胃癌細(xì)胞株AGS細(xì)胞中,從而獲得穩(wěn)定表達(dá)AQP5基因的AGS細(xì)胞系,為進(jìn)一步研究AQP5基因?qū)ξ赴盒员硇偷挠绊懙於▽?shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
1.1 材料 人胃癌細(xì)胞株AGS為本研究所保種;pcDNA 3.1/myc-His質(zhì)粒為本院科研中心羅時(shí)文教授饋贈(zèng);總RNA提取液(TRIzol)、逆轉(zhuǎn)錄聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(RT-PCR)試劑盒為北京TransGen公司產(chǎn)品;脂質(zhì)體Lipofectmine2000試劑為美國(guó)Invitrogen公司產(chǎn)品;限制性核酸內(nèi)切酶EcoRⅠ、BamHⅠ、T4DNA連接酶為日本TaKaRa公司產(chǎn)品;質(zhì)粒小提試劑盒及膠回收試劑盒為Omega公司產(chǎn)品;兔抗人AQP5抗體為Abcam公司產(chǎn)品;鼠抗人β-肌動(dòng)蛋白(β-actin)抗體為Santa Cruze公司產(chǎn)品;遺傳霉素(G418)為 Merck公司產(chǎn)品;美國(guó)Invitrogen公司完成引物合成;北京諾賽基因公司完成基因測(cè)序。
1.2 方法
1.2.1 人AQP5真核表達(dá)質(zhì)粒的構(gòu)建 根據(jù)序列數(shù)據(jù)庫(kù)GenBank中人AQP5的mRNA序列設(shè)計(jì)特異性引物。引物序列:上游5′-GCGAT GAA GAA GGA GGT GTG CTC CGT-3′(BamHⅠ);下游5′-CCGTCA GCG GGT GGT CAG CTC C-3′(EcoRⅠ),下劃線示酶切位點(diǎn)(BamHⅠ、EcoRⅠ)。用PCR法擴(kuò)增獲得AQP5目的片段,產(chǎn)物長(zhǎng)度為810bp。對(duì)擴(kuò)增的AQP5基因片段和載體pcDNA3.1/myc-His分別用EcoRⅠ和BamHⅠ進(jìn)行雙酶切。酶切產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳(110V,35min),電泳片段用凝膠回收試劑盒回收。AQP5目的片段與線性載體分別按摩爾比3∶1、6∶1和9∶1用T4DNA連接酶進(jìn)行連接,4℃連接過(guò)夜。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌Top10感受態(tài)細(xì)胞后,接種于含氨芐西林100μg/mL的Lu-ria-Bertani(LB)固體培養(yǎng)基平板,37℃篩選過(guò)夜。挑取陽(yáng)性克隆搖菌提取質(zhì)粒,質(zhì)粒用BamHⅠ和EcoRⅠ酶切鑒定。將酶切鑒定正確的陽(yáng)性質(zhì)粒送北京諾賽基因公司進(jìn)行測(cè)序鑒定。
1.2.2 細(xì)胞培養(yǎng)及質(zhì)粒轉(zhuǎn)染 轉(zhuǎn)染前24h取對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期AGS細(xì)胞,調(diào)整細(xì)胞密度為1×105/mL,接種于12孔培養(yǎng)板,次日進(jìn)行轉(zhuǎn)染。隨機(jī)分為對(duì)照組、空載體組和AQP5轉(zhuǎn)染組。轉(zhuǎn)染前棄含血清雙抗培養(yǎng)基,磷酸緩沖鹽溶液(PBS)漂洗2遍后,每孔加無(wú)血清無(wú)雙抗Dulbecco改良Eagle培養(yǎng)基(DMEM)1mL,將質(zhì)粒(μg)和Lipofectmine 2 000(μL)按1∶3的比例分別用100μL無(wú)血清培養(yǎng)基稀釋?zhuān)髯暂p輕混勻靜置5min后,再混合兩者靜置20min,將混合液均勻加至相應(yīng)的細(xì)胞中,于37℃CO2孵育箱中培養(yǎng)5h后更換10%胎牛血清含青鏈雙抗的DMEM培養(yǎng)基繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.3 G418篩選濃度的確定及AGS細(xì)胞陽(yáng)性克隆的篩選將AGS細(xì)胞以5×104/mL密度接種于12孔培養(yǎng)板中,24h后,將G418與含血清的DMEM培養(yǎng)基混合,配成濃度分別為0、100、200、300、400、500、600、700、800、900和 1 000mg/L 的液體,每隔3d換液一次,培養(yǎng)10d,以10d90%細(xì)胞致死量為最佳篩選濃度,因此確定400mg/L為最佳篩選濃度。轉(zhuǎn)染24 h后按1∶10傳代于24孔板,細(xì)胞貼壁后加入含400mg/L G418的完全培養(yǎng)基培養(yǎng)14d至篩選出陽(yáng)性克??;挑取陽(yáng)性克隆繼續(xù)擴(kuò)大培養(yǎng),篩選出的穩(wěn)定細(xì)胞株分別命名為AGS/AQP5細(xì)胞(轉(zhuǎn)染AQP5的細(xì)胞)和AGS/EV細(xì)胞(轉(zhuǎn)染空載體的細(xì)胞),用200mg/L G418維持培養(yǎng)。
1.2.4 RT-PCR檢測(cè)細(xì)胞AQP5mRNA表達(dá) TRIzol法抽提AGS(對(duì)照組)、AGS/AQP5(AQP5 組)和 AGS/EV(空載組)細(xì)胞總RNA,按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說(shuō)明進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄獲取cDNA,以cDNA為模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增。AQP5引物序列:上游5′-CTT CCT CAA GGC CGT GTT C-3′;下游 5′-CTC CTC CCA GTC CTC GTC A-3′;內(nèi)參β-actin引物序列:上游 5′-CGG GAA ATC GTG CGT GAC-3′;下游5′-TGG AAG GTG GAC AGC GAG G-3′。反應(yīng)條件94℃預(yù)變性4min,94℃變性30s,58℃退火30s,72℃延伸1min,共35個(gè)循環(huán),72℃繼續(xù)延伸7min。取10μL PCR產(chǎn)物行1%瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像分析進(jìn)行分析,以目的條帶AQP5與β-actin灰度值的比值反映AQP5mRNA相對(duì)表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)至少3次。1.2.5 蛋白質(zhì)印跡法(Western Blot)檢測(cè)細(xì)胞AQP5蛋白表達(dá) 收集對(duì)照組、AQP5組和空載組細(xì)胞,細(xì)胞裂解液提取總蛋白。BCA法進(jìn)行蛋白含量測(cè)定。取總蛋白50μg/孔在10%十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)40V,30 min后改電壓為80V,120min后至溴酚藍(lán)跑至膠最下方取膠,將分離的蛋白轉(zhuǎn)移至聚偏氟乙烯(PVDF)膜,25V90min進(jìn)行轉(zhuǎn)膜。轉(zhuǎn)膜后5%脫脂奶粉含0.1%葉吐溫20Tris緩沖溶液(TBST)4℃封閉60min;加入一抗孵育(AQP5 1∶500,β-actin 1∶500)4℃過(guò)夜,TBST洗膜3次,10min/次,加入辣根過(guò)氧化物酶(HRP)標(biāo)記二抗(1∶5 000)孵育,4℃5h,洗膜,曝光、顯影、定影。Gel-pro凝膠成像分析軟件分析AQP5蛋白和β-actin蛋白的灰度值,并計(jì)算其比值反映AQP5蛋白相對(duì)表達(dá)水平。實(shí)驗(yàn)重復(fù)至少3次。
1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件分析,數(shù)據(jù)以表示,多個(gè)樣本均數(shù)比較采用單因素方差分析,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 克隆的雙酶切及序列測(cè)定 重組質(zhì)粒雙酶切后瓊脂糖電泳約在810bp和5 480bp附近分別見(jiàn)一明顯條帶,與目的片段大小相符,見(jiàn)圖1,北京諾賽基因公司測(cè)序結(jié)果與GenBank中人AQP5(NM_001651.2)的核苷酸序列完全一致。
圖1 酶切鑒定電泳圖
圖2 RT-PCR檢測(cè)各組AGS細(xì)胞AQP5mRNA的表達(dá)
圖3 Western Blot檢測(cè)各組AGS細(xì)胞AQP5蛋白的表達(dá)
2.2 AQP5mRNA的表達(dá) 外源AQP5轉(zhuǎn)染AGS細(xì)胞后,AQP5mRNA表達(dá)水平顯著上調(diào),AQP5組與對(duì)照組、空載組比較,AQP5mRNA水平顯著上調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而對(duì)照組與空載組比較mRNA表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.355),見(jiàn)圖2。
2.3 AQP5蛋白的表達(dá) 外源AQP5轉(zhuǎn)染AGS細(xì)胞后,AQP5蛋白表達(dá)水平顯著上調(diào),AQP5組與對(duì)照組、空載組比較,AQP5蛋白水平顯著上調(diào),差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而對(duì)照組與空載組比較蛋白表達(dá)差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.181),見(jiàn)圖3。
水的微環(huán)境是細(xì)胞內(nèi)外一切生命活動(dòng)進(jìn)行的場(chǎng)所,腫瘤的發(fā)生、發(fā)展也離不開(kāi)水的微環(huán)境。而且,腫瘤細(xì)胞為了滿足快速增殖、分裂及向周?chē)|(zhì)侵襲和轉(zhuǎn)移的需要,一系列酶的活性和表達(dá)發(fā)生改變,細(xì)胞基本結(jié)構(gòu)成分合成明顯加強(qiáng);同時(shí)癌細(xì)胞向周?chē)|(zhì)侵襲和進(jìn)出血管/淋巴管時(shí)需要體積和外形發(fā)生相應(yīng)改變[4]。因此,腫瘤細(xì)胞比正常細(xì)胞更需要水分子的快速跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)。
近年文獻(xiàn)報(bào)道AQP5蛋白過(guò)度表達(dá)于多種腫瘤組織中[5-8],并與某些腫瘤的進(jìn)展、化療藥物的耐受及患者的預(yù)后相關(guān)。體外實(shí)驗(yàn)表明,AQP5參與腫瘤生物學(xué)行為的形成。Chae等[9]發(fā)現(xiàn)過(guò)表達(dá)AQP5的K562細(xì)胞和LAMA84細(xì)胞增殖能力增強(qiáng)。Chen等[10]采用RNA干擾(RNAi)技術(shù)沉默 AQP5基因表達(dá)可明顯減少人肺癌細(xì)胞株SPC-A1細(xì)胞的遷移和侵襲能力,且認(rèn)為其遷移和侵襲能力下降與沉默AQP5基因,降低細(xì)胞水的通透性,調(diào)節(jié)細(xì)胞大小和形態(tài)有關(guān)。Jung等[11]在乳腺癌研究中亦發(fā)現(xiàn)乳腺癌細(xì)胞MCF7AQP5表達(dá)與腫瘤細(xì)胞的增殖和轉(zhuǎn)移能力相關(guān)。Chae等[7]的研究表明,外源性表達(dá)AQP5的正常肺上皮細(xì)胞株BEAS-2B可發(fā)生上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化(epithelial mesenchymal transition,EMT),細(xì)胞呈成纖維樣改變,失去細(xì)胞-細(xì)胞間連接和細(xì)胞極性,而且細(xì)胞上皮標(biāo)志蛋白表達(dá)下調(diào)、間質(zhì)標(biāo)志蛋白表達(dá)則上調(diào),提示AQP5可通過(guò)EMT促進(jìn)腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移。此外,動(dòng)物實(shí)驗(yàn)表明AQP5過(guò)表達(dá)可誘導(dǎo)荷瘤動(dòng)物腫瘤發(fā)生轉(zhuǎn)移[12]。目前病理組織學(xué)研究發(fā)現(xiàn)[13-14],正常胃黏膜組織中AQP5呈低表達(dá),而胃癌組織中AQP5呈高表達(dá),提示AQP5可能參與胃癌的發(fā)生與發(fā)展。但是,AQP5基因在胃癌發(fā)生發(fā)展中究竟發(fā)揮何種作用,有待深入研究。
總之,本研究通過(guò)Western Blot和RT-PCR實(shí)驗(yàn)證實(shí)已成功篩選出穩(wěn)定表達(dá)外源性人AQP5基因的AGS胃癌細(xì)胞株,這為進(jìn)一步研究AQP5基因在胃癌發(fā)生發(fā)展中可能扮演的角色奠定實(shí)驗(yàn)基礎(chǔ)。
[1]張景熙,李強(qiáng),劉忠令.AQP5的結(jié)構(gòu)功能及其調(diào)節(jié)[J].國(guó)外醫(yī)學(xué):生理、病理科學(xué)與臨床分冊(cè),2003,23(6):599-601.
[2]Woo J,Lee J,Chae YK,et al.Overexpression of AQP5,a putative oncogene,promotes cell growth and transformation[J].Cancer Letters,2008,264(1):54-62.
[3]Chen ZH,Wang XD,Bai CX,et al.Regulation of MUC5AC mucin secretion by depletion of AQP5in SPC-A1cells[J].Biochem Biophys Res Commun,2006,342(3):775-781.
[4]Verkman AS,Hara-Chikuma M,Papadopoulos MC.Aquaporins-new players in cancer biology[J].J Mol Med,2008,86(5):523-529.
[5]Burghardt B,Elkj?r ML,Kwon TH,et al.Distribution of aquaporin water channels AQP1[J].Gut,2003,52(7):1008-1016.
[6]Kang SK,Chae YK,Woo J,et al.Role of human aquaporin 5in colorectal carcinogenesis[J].Am J Pathol,2008,173(2):518-525.
[7]Chae YK,Kang SK,Kim MS,et al.Expression of aquaporin 5(AQP5)promotes tumor invasion in human non small cell lung cancer[J].PLoS ONE,2008,3(5):e2162.
[8]Zhang Z,Chen Z,Song Y,et al.Expression of aquaporin 5 increases proliferation and metastasis potential of lung cancer[J].J Pathol,2010,221(2):210-220.
[9]Chae YK,Kang SK,Kim MS,et al.Human AQP5plays a role in the progression of chronic myelogenous leukemia(CML)[J].PLoS ONE,2008,3(7):e2594.
[10]Chen Z,Zhang Z,Gu Y,et al.Impaired migration and cell volume regulation in aquaporin 5-deficient SPC-A1cells[J].Respir Physiol Neurobiol,2011,176(3):110-117.
[11]Jung HJ,Park JY,Jeon HS,et al.Aquaporin-5:a marker protein for proliferation and migration of human breast cancer cells[J].PLoS ONE,2011,6(12):e28492.
[12]Zhang ZQ,Zhu ZX,Bai CX.Lung fluorescence imaging to evaluate tumor metastasis induced by AQP5expression in murine model[J].Med Oncol,2012,29(1):205-211.
[13]Watanabe T,F(xiàn)ujii T,Oya T,et al.Involvement of aquaporin-5in differentiation of human gastric cancer cells[J].J Physiol Sci,2009,59(2):113-122.
[14]Shen L,Zhu Z,Huang Y,et al.Expression profile of multiple aquaporins in human gastric carcinoma and its clinical significance[J].Biomed Pharmacother,2010,64(5):313-318.