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        基于TaqMan探針的幽門螺桿菌實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測方法的建立

        2013-09-26 09:57:00石建玲吳西釗權(quán)蘭菊丁姍姍孫鎖柱
        關(guān)鍵詞:標(biāo)準(zhǔn)檢測方法

        石建玲,程 波,劉 珊,吳西釗,權(quán)蘭菊,丁姍姍,孫鎖柱

        (中國人民解放軍第二炮兵總醫(yī)院,北京100088)

        幽門螺桿菌(Helicobacter pylori,HP)自1983年被澳大利亞學(xué)者沃倫(Warren)與馬歇爾(Marshal1)[1]發(fā)現(xiàn)以來,國內(nèi)外對(duì)它的分子生物學(xué)、致病機(jī)制、流行病學(xué)、相關(guān)疾病等方面進(jìn)行了大量的研究[2-5],現(xiàn)代醫(yī)學(xué)也已經(jīng)證明,HP可以導(dǎo)致慢性胃炎、十二指腸腸炎、消化性潰瘍、胃癌、粘膜相關(guān)性淋巴瘤(MALT)等疾病的發(fā)生。WHO將HP作為胃癌的主要致病因子。因此,快速、準(zhǔn)確的檢測HP的感染對(duì)大眾健康具有重要意義,對(duì)醫(yī)生治病也有巨大幫助。

        實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)具有高靈敏度和高特異性的優(yōu)點(diǎn),目前,國內(nèi)已應(yīng)用該技術(shù)檢測了百日咳鮑特菌[6]和沙眼衣原體[7]等多種微生物的感染。我們以HP高度保守的23SrDNA基因片段序列設(shè)計(jì)引物和探針,建立實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法來檢測HP。

        1 材料與方法

        1.1 樣品

        選取市售的HP菌株26695,對(duì)照菌株有Brevibacterium casei,Klebsiella pneumonia,Staphylococcus capitis,Microbulbifer elongates,Microbacterium sp,Streptococcus cristatus,Pichia anomala,EHEC,EIEC,Salmonella typhi,Dysentery bacterium,Vibrio Cholerae。

        1.2 試劑與儀器

        Taq DNA聚合酶、dNTPs、pEASY-T載體、DNA提取的試劑盒(Omega E.Z.N.A.MicroElute Genomic DNA Kit)、大腸桿菌DH5a、幽門螺桿菌抗體、DAB顯色液、W-S銀染試劑、SMA4000核酸蛋白分析儀、ABI7500P實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增儀等。

        1.3 引物和探針的設(shè)計(jì)

        選取高度保守的HP特異性的23SrDNA基因序列,利用Primer Express 3.0軟件進(jìn)行引物和探針的設(shè)計(jì)。引物和探針序列如下:

        P1:gattcagtgaaattgtagtggagg

        P2:tcccattagcagtgctaagttg

        探針:5′-gcggcaagacggaaagaccccgtgg-3′

        引物及探針由英俊公司合成,擴(kuò)增目的片段長度為99bp,其他實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)體系組分(ExTaq酶等)購自takar公司。

        1.4 模板DNA的制備

        按照購買的DNA提取試劑盒標(biāo)明的方法進(jìn)行基因組DNA的提取。

        1.5 制備質(zhì)粒

        反應(yīng)體系為20μl,以P1、P2為引物,反應(yīng)條件為:95℃5min;95℃10s,60℃45s,40個(gè)循環(huán)。擴(kuò)增得到的目的片段克隆至pEASY-T載體,轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞DH5α,提取質(zhì)粒,測序驗(yàn)證后作為熒光定量PCR的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品,梯度稀釋成1.0×107~1.0×101拷貝每微升作為陽性標(biāo)準(zhǔn)品。

        1.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR反應(yīng)條件的優(yōu)化

        以陽性質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板,在不同退火溫度下進(jìn)行常規(guī)PCR反應(yīng),電泳分析擴(kuò)增產(chǎn)物,確定最佳退火溫度。20μl體系Taqman熒光定量PCR反應(yīng)程序?yàn)?5℃ 5min;95℃ 10s,60℃ 45s,40個(gè)循環(huán);應(yīng)用矩陣法對(duì)熒光定量PCR的引物、探針濃度進(jìn)行優(yōu)化,以達(dá)到最佳反應(yīng)條件。

        1.7 標(biāo)準(zhǔn)品的擴(kuò)增曲線及標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        以每微升拷貝數(shù)為107、106、105、104、103、102、101的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板,最佳反應(yīng)條件下在ABI-7500熒光定量PCR儀上檢測,得出各自的動(dòng)力學(xué)曲線,儀器自動(dòng)生成標(biāo)準(zhǔn)曲線。

        1.8 敏感性試驗(yàn)

        取不同拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品,進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測。根據(jù)樣品拷貝數(shù)與CT值之間的線性關(guān)系和相關(guān)系數(shù)確定最小檢測量。

        1.9 特異性試驗(yàn)

        對(duì)選取的對(duì)照菌株進(jìn)行DNA提取,按照建立的實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法進(jìn)行測定,建立特異性試驗(yàn)。

        1.10 可重復(fù)性試驗(yàn)

        將105、104、103、102不同拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品重復(fù)測定3次,并進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,根據(jù)變異系數(shù)確定檢測體系的可重復(fù)性。

        1.11 臨床胃鏡標(biāo)本檢測

        對(duì)2012年5月至10月收集的100份胃鏡樣本進(jìn)行檢測同時(shí)用免疫組化方法和銀染進(jìn)行比較分析。

        2 結(jié)果

        2.1 標(biāo)準(zhǔn)品的擴(kuò)增曲線及標(biāo)準(zhǔn)曲線的建立

        每微升拷貝數(shù)為107、106、105、104、103、102、101的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測,得到標(biāo)準(zhǔn)品的擴(kuò)增曲線(圖1),同時(shí)儀器自動(dòng)生成標(biāo)準(zhǔn)曲線(圖2),線性關(guān)系為Y=-3.605X+42.853。標(biāo)準(zhǔn)品的擴(kuò)增曲線顯示107-102有明顯的S型擴(kuò)增曲線,而且指數(shù)增長期的曲線平行,說明PCR的擴(kuò)增效率相近;不同稀釋度標(biāo)準(zhǔn)品之間的Ct值相差均勻,這與定量PCR的Ct值與起始拷貝數(shù)之間有嚴(yán)格的線性關(guān)系相一致。

        圖1 幽門螺桿菌Taqman探針實(shí)時(shí)熒光定量PCR質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品擴(kuò)增曲線

        圖2 幽門螺桿菌Taqman探針實(shí)時(shí)熒光定量PCR質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品標(biāo)準(zhǔn)曲線

        對(duì)標(biāo)準(zhǔn)曲線進(jìn)行分析,R2值為1。因此,標(biāo)準(zhǔn)曲線在107至102拷貝每微升范圍內(nèi)存在良好的線性關(guān)系。

        2.2 檢測方法的敏感性

        將以上拷貝數(shù)的質(zhì)粒標(biāo)準(zhǔn)品為模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測,結(jié)果表明,該方法至少可以檢測出每微升102拷貝數(shù)的HP樣品。

        2.3 檢測方法的特異性

        用建立的實(shí)時(shí)熒光定量PCR的方法對(duì)HP和對(duì)照菌株進(jìn)行檢測,只有HP為陽性,其余均為陰性,表明該方法具有良好的特異性。

        2.4 重復(fù)性試驗(yàn)

        重復(fù)性分析不同拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品批內(nèi)重復(fù)測定3次,其變異系數(shù)在1%-2%范圍之間,均在可接受的范圍內(nèi),說明本實(shí)驗(yàn)建立的熒光定量PCR方法檢測幽門螺桿菌具有良好的穩(wěn)定性。

        2.5 臨床胃鏡標(biāo)本檢測

        實(shí)時(shí)熒光定量PCR以Ct值≤35并且擴(kuò)增曲線呈 “S”形為陽性的判定原則。對(duì)100份樣本進(jìn)行檢測,實(shí)時(shí)熒光定量PCR能檢出31份陽性,而免疫組化方法能檢出25份陽性,銀染方法能檢出28份陽性(圖3、圖4)。

        圖3 免疫組化法染色陽性結(jié)果(10×40)

        圖4 銀染法染色陽性結(jié)果(10×40)

        3 討論

        眾所周知,實(shí)時(shí)熒光定量PCR技術(shù)是一種直接檢測核酸的分子生物學(xué)技術(shù),該方法靈敏度高、特異性好、操作簡單,它已廣泛應(yīng)用于多種微生物感染的檢測[6,7],國 內(nèi) 外 亦 有 用 該 方 法 檢 測 HP 的 報(bào)道[8,9]。江南[10]和李廣云[11]的熒 光定量 PCR 檢測選用的是HP的16SRNA基因,而我們選用的是HP的23SrDNA基因,DNA比RNA穩(wěn)定,不易降解,提取DNA比提取RNA的技術(shù)要求要低,操作簡單;同時(shí)江南采用的是SYBR GreenⅠ,而我們采用的是Taqman探針的方法,Taqman探針是一種寡核苷酸探針,熒光基團(tuán)連接在5′末端,淬滅基團(tuán)連接在3′末端,一分子的產(chǎn)物生成伴隨著一分子的熒光信號(hào)的產(chǎn)生,因此Taqman探針檢測的是積累熒光,由于增加了探針的識(shí)別步驟,它的特異性更高。而SYBR GreenⅠ屬于非探針類,是一種能與雙鏈DNA結(jié)合發(fā)光的熒光染料,由于它不能識(shí)別特定的雙鏈,因此它的特異性較差,對(duì)PCR反應(yīng)中的非特異性擴(kuò)增或引物二聚體也會(huì)產(chǎn)生熒光,所以會(huì)有假陽性的發(fā)生。

        用該方法與免疫組化、銀染共同檢測100例臨床胃鏡標(biāo)本,結(jié)果顯示,實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法具有較高的敏感性,可以大大降低漏檢率。免疫組織化學(xué)和銀染是將所取的胃黏膜標(biāo)本切片染色鏡檢,通過實(shí)踐發(fā)現(xiàn)。免疫組織化學(xué)和銀染容易發(fā)生染液的雜質(zhì)干擾,產(chǎn)生假陽性,它的敏感性和特異性都依賴于觀察者的經(jīng)驗(yàn)和技術(shù)。

        本研究結(jié)果顯示,所建立的實(shí)時(shí)熒光定量PCR方法具有以下特點(diǎn):(1)檢測范圍寬,在107-102copies/ul范圍內(nèi)均呈現(xiàn)良好的線性關(guān)系,相關(guān)系數(shù)為1;(2)靈敏度高,可檢測102copies/ul的樣本;(3)特異性高,與多種細(xì)菌均無交叉反應(yīng)。(4)檢測速度快,整個(gè)PCR反應(yīng)過程僅需70min。(5)重復(fù)性好,不同拷貝數(shù)的標(biāo)準(zhǔn)品批內(nèi)重復(fù)測定3次,其變異系數(shù)在1%-2%范圍之間范圍。

        實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測方法是近年來應(yīng)用較為廣泛的一種檢測方法,具有快速準(zhǔn)確等優(yōu)點(diǎn)。本文從引物和探針的設(shè)計(jì)、PCR程序的設(shè)計(jì)等方面建立了HP檢測的一種方法,是對(duì)目前臨床HP檢測方法的一種補(bǔ)充與完善,具有重要的臨床意義。

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