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        腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子對持續(xù)驚厥后海馬凋亡調(diào)控基因表達的影響①

        2013-09-23 01:54:30苑愛云蔣莉侯梅李欣
        中國康復理論與實踐 2013年1期
        關(guān)鍵詞:腦損傷海馬免疫組化

        苑愛云,蔣莉,侯梅,李欣

        國內(nèi)外動物實驗均證實,持續(xù)驚厥發(fā)作將導致選擇性海馬區(qū)神經(jīng)元死亡,產(chǎn)生不可逆性腦損傷。大量實驗提示,腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain-derived neurotrophic factor,BDNF)是神經(jīng)元生長、存活的必需因子。研究發(fā)現(xiàn),BDNF對驚厥持續(xù)狀態(tài)(status convulsivus,SC)后海馬神經(jīng)元的凋亡有一定抑制作用[1-2]。本研究觀察外源性BDNF對驚厥后大鼠海馬凋亡調(diào)控基因表達的影響,探討B(tài)DNF對驚厥性腦損傷可能的調(diào)控機制。

        1 材料和方法

        1.1 模型制備和分組 健康成年Wistar大鼠64只,重慶醫(yī)科大學實驗動物中心提供。其中32只采用氯化鋰-匹羅卡品(SIGMA公司)腹腔注射誘發(fā)SC模型(SC)[3]。在驚厥發(fā)作30 min后腹腔注射水合氯醛(上海禾豐制藥有限公司)300 mg/kg止驚。另32只為正常對照組(NC)。所有大鼠行側(cè)腦室內(nèi)注射,根據(jù)注射內(nèi)容不同,進一步分為生理鹽水(NS)注射組、BDNF注射組、抗BDNF抗體注射組(美國PEPROTECH公司)和無注射組,每組8只。

        1.2 腦室內(nèi)注射 按鼠腦解剖圖譜確定側(cè)腦室定位參數(shù)。在前囟尾側(cè)3.7 mm、中線左側(cè)4.1 mm、顱骨表面以下5.5 mm為定向部位,手術(shù)刀尖鉆透顱骨后,10 μl微量注射器緩慢注入 0.1 μg/μl BDNF 4 μl(SC-或NC-BDNF 組)、200 μg/ml抗 BDNF 抗 體 2 μl(SC-或NC-抗BDNF組)或者生理鹽水2 μl(SC-或NC-NS組),于10~15 min內(nèi)注射完畢,留針2 min后拔出注射器。右側(cè)海馬未做處理。

        腦室內(nèi)注射后6 h(為SC后海馬細胞凋亡早期事件變化最明顯時點[4])斷頭取腦,取雙側(cè)海馬,分別留取約50 mg海馬組織;余海馬組織分別采用免疫組化和原位雜交(In Situ Hybridization,ISH)觀察bcl-2蛋白/mRNA、c-jun蛋白/mRNA的分布,并進行半定量分析。

        1.3 免疫組化檢測 海馬連續(xù)冠狀冰凍切片,片厚8 μm,按SP法進行免疫組化染色(兔抗鼠bcl-2、c-jun多抗及SP免疫組化試劑盒均購自武漢博士德生物工程有限公司)。每只大鼠取3張切片,分別在海馬CA1區(qū)、CA3區(qū)和齒狀回各隨機取3個視野(20×10),應用北航CM-2000B型生物醫(yī)學圖像分析系統(tǒng)測定其平均光密度(OD)。

        1.4 原位雜交 取與免疫組化相鄰的腦組織切片原位雜交觀察bcl-2和c-jun mRNA的表達(bcl-2、c-jun原位雜交檢測試劑盒購自武漢博士德生物工程有限公司)。測定每張切片的OD。

        1.5 RT-PCR檢測 對預留的50 mg海馬組織,采用RT-PCR檢測bcl-2和c-jun mRNA的表達(RNA提取試劑盒和RT-PCR檢測試劑盒購自大連寶生物工程有限公司)。引物由上海生物工程有限公司合成(表1)。采用凝膠成像分析系統(tǒng)測定擴增產(chǎn)物條帶平均光密度。將bcl-2、c-jun條帶OD值與相應β-actin光密度值比較,計算平均OD比值。

        表1 RT-PCR引物序列及長度

        2 結(jié)果

        2.1 bcl-2 在注射(左)側(cè),NC各組海馬c-jun蛋白和mRNA表達均無顯著性差異;SC各組中,bcl-2蛋白和mRNA表達由高到低依次為:BDNF組>無注射組=NS組>抗BDNF組(α=0.05)。注射對(右)側(cè),海馬bcl-2蛋白和mRNA表達各組無顯著性差異。見表2~表4。

        2.2 c-jun 在注射(左)側(cè),NC組中,NS組、抗BDNF組海馬bcl-2蛋白和mRNA表達較其他兩組增高;SC各組中,c-jun蛋白和mRNA表達由高到低依次為:抗BDNF組>NS組>BDNF組=無注射組(α=0.05)。注射對(右)側(cè),NC各組海馬c-jun蛋白和mRNA表達無顯著性差異,SC各組海馬c-jun蛋白和mRNA表達也無顯著性差異,但均高于NC-無注射組。見表5~表7。

        表2 各大鼠海馬Bcl-2蛋白表達(OD)

        表3 各大鼠海馬bcl-2 mRNA表達(RT-PCR法,OD比值)

        表4 各大鼠海馬bcl-2 mRNA表達(ISH法,OD)

        表5 各大鼠海馬c-Jun蛋白表達(OD)

        表6 各大鼠海馬c-jun mRNA表達(RT-PCR法,OD比值)

        表7 各大鼠海馬c-jun mRNA表達(ISH法,OD)

        3 討論

        BDNF作為神經(jīng)營養(yǎng)素家族的重要成員,與神經(jīng)元的生長、再生密切相關(guān)。我們的前期實驗發(fā)現(xiàn),BDNF可以抑制SC后海馬神經(jīng)元的凋亡[2],本研究進一步在凋亡調(diào)控基因的水平探討B(tài)DNF對驚厥性腦損傷的作用及其調(diào)控機制。

        凋亡是細胞受基因調(diào)控的程序性死亡過程,c-jun和bcl-2均是調(diào)控細胞凋亡的關(guān)鍵基因。bcl-2與細胞凋亡密切相關(guān),具有“主開關(guān)”的作用[5]。bcl-2編碼的蛋白具有線粒體膜穩(wěn)定功能,可阻止線粒體凋亡早期因子的釋放,抑制細胞凋亡過程。因此,bcl-2被認為是細胞凋亡中的潛在抑制因子。c-jun編碼的蛋白在正常情況下可參與細胞生長、發(fā)育、分化等生理過程;病理狀況下,可通過對bcl-2家族的抑制,促進線粒體功能障礙,誘導細胞凋亡[6]。

        大量研究證實,BDNF可減輕和阻止癲癇發(fā)作,對腦損傷具有保護作用[1-2,7]。bcl-2家族的調(diào)節(jié)可能是BDNF抵抗神經(jīng)元凋亡的機制之一[1];BDNF還可抑制c-jun的活化[8]。Jeanneteau等證實,BDNF可通過促分裂素原活化蛋白激酶磷酸酶1(MKP-1)引起c-jun氨基末端激酶(JNK)的滅活[9]。新生鼠視皮質(zhì)切除后可引起背側(cè)膝狀體快速而幾乎完全的神經(jīng)元變性,外源性BDNF可以顯著削弱上述神經(jīng)元病變[10]。

        本組研究顯示,在誘發(fā)SC后,注射BDNF可上調(diào)注射側(cè)海馬bcl-2表達,下調(diào)c-jun表達;而注射抗BDNF抗體能對抗這一作用。提示對凋亡調(diào)控基因的調(diào)節(jié)可能是BDNF腦損傷作用的機制之一。

        本研究還顯示,注射對側(cè)海馬bcl-2及c-jun的表達無顯著改變,提示腦室內(nèi)注射BDNF,其在腦內(nèi)擴散有限。由于腦室內(nèi)注射為有創(chuàng)損傷,且臨床操作困難、實用性差,在臨床的應用受到限制。而BDNF易被肝臟攝取滅活,且難以通過血腦屏障,經(jīng)口服或外周血管給藥均不能在中樞神經(jīng)系統(tǒng)發(fā)揮作用。促進內(nèi)源性BDNF表達,尋找更安全、方便的給藥途徑,將成為今后研究的重點。

        [1]Almeida RD,Manadas BJ,Melo CV,et al.Neuroprotection by BDNF against glutamate-induced apoptotic cell death is mediated by ERK and PI3-kinase pathways[J].Cell Death Differ,2005,12(10):1329-1343.

        [2]胡越,蔣莉,李欣.腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子對大鼠驚厥性腦損傷的作用及調(diào)控因素[J].中國循證兒科雜志,2008,3(3):208-211.

        [3]胡越,蔣莉.有效控制氯化鋰-匹羅卡品誘發(fā)驚厥持續(xù)狀態(tài)發(fā)作的實驗研究[J].兒科藥學雜志,2003,9:5-8.

        [4]苑愛云,蔣莉,王貞,等.年齡和驚厥持續(xù)時間對持續(xù)驚厥后大鼠海馬細胞線粒體膜電位的影響[J].中國康復理論與實踐,2010,16(11):1027-1029.

        [5]Martinou JC,Youle RJ.Mitochondria in apoptosis:Bcl-2 family members and mitochondrial dynamics[J].Dev Cell,2011,21(1):92-101.

        [6]Schenkel J.Activation of the c-Jun transcription factor following neurodegeneration in vivo[J].Neurosci Lett,2004,361(1-3):36-39.

        [7]Isokawa M.N-methyl-D-aspartic acid-induced and Ca-dependent neuronal swelling and its retardation by brain-derived neurotrophic factor in the epileptic hippocampus[J].Neuroscience,2005,131(4):801-812.

        [8]Yamagishi S,Matsumoto T,Yokomaku D,et al.Comparison of inhibitory effects of brain-derived neurotrophic factor and insulin-like growth factor on low potassium-induced apoptosis and activation of p38 MAPK and c-Jun in cultured cerebellar granule neurons[J].Brain Res Mol Brain Res,2003,119(2):184-191.

        [9]Jeanneteau F,Deinhardt K,Miyoshi G,et al.The MAP kinase phosphatase MKP-1 regulates BDNF-induced axon branching[J].Nat Neurosci,2010,13(11):1373-1379.

        [10]Madeddu F,Naska S,Bozzi Y.BDNF down-regulates the caspase 3 pathway in injured geniculo-cortical neurones[J].Neuroreport,2004,15(13):2045-2049.

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