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        ?;撬徂D運體的調節(jié)機制及其在動物營養(yǎng)研究中的意義

        2013-09-20 03:05:08張小龍張素云唐志如
        動物營養(yǎng)學報 2013年10期
        關鍵詞:激酶磷酸化氧化應激

        張小龍 鄧 歡 陳 澄 張素云 唐志如*

        (1.西南大學動物科技學院,生物飼料與分子營養(yǎng)實驗室,重慶 400715;2.貴州大學生命科技學院,貴陽 550025)

        牛磺酸(taurine,Tau)又稱2-氨基乙磺酸,具有調節(jié)激素釋放、保持細胞內外滲透壓平衡、維持細胞鈣穩(wěn)態(tài)、清除自由基和抗脂質過氧化等作用。?;撬徂D運體(taurine transporter,TAUT)是一種Na+及Cl-依賴性轉運體,在哺乳動物組織內廣泛表達。TAUT對Tau的轉運起著重要的作用。Roig-Pérez等[1]發(fā)現(xiàn),Tau 能夠通過 TAUT 轉運進入人腸上皮Caco-2細胞,抑制脂質過氧化物的產生;敲除TauT基因后,血清中丙二醛(MDA)、一氧化氮(NO)和過氧化氫(H2O2)的水平升高,使腸道產生嚴重氧化應激反應。Ito等[2]同樣報道,敲除TauT基因會增加細胞炎癥和氧化應激反應,并使許多肌肉組織發(fā)生嚴重病變。這些研究表明TAUT對運輸Tau以及調節(jié)機體穩(wěn)態(tài)具有重要作用,因此研究TAUT的調節(jié)機制對Tau在養(yǎng)殖業(yè)中的應用具有重要意義。

        1 TAUT的種類與結構

        1.1 TAUT的種類

        TAUT廣泛存在于細胞膜上,也有少量存在于NIH3T3成纖維細胞中核區(qū)室內[3]。目前,TAUT已在多種動物的不同組織中得到了克隆,包括腦、腎臟、甲狀腺、小腸、胎盤、肝臟等部位。不同動物和組織中的TAUT具有高度的同源性,為包含599~638個氨基酸殘基的蛋白質(表1)。

        1.2 TAUT的結構

        TAUT具有許多絲氨酸(Ser)和Ser殘基,是蛋白激酶C(protein kinase C,PKC)介導磷酸化的潛在靶點。TauT基因的啟動子區(qū)包含p53、sp1、Wilms腫瘤 1 基因(Wilms tumor 1 gene,WT1)、滲透壓反應元件(tonicity-responsive element,TonE)、核因子 - κB(nuclear factor-κB,NF-κB)、抗氧化應激反應元件(antioxidant responsive element,ARE)、熱應激因子1(heat shock transcription factor 1,HSF1)和激活蛋白1(activated protein 1,AP1)的結合位點(圖1)。

        表1 不同動物和組織中TauT的分子質量和同源性Table 1 Molecular weight and homology of TauT in different animals and tissues[4-6]

        圖1 TauT mRNA的序列和潛在的轉錄因子結合位點Fig.1 Sequence and potential transcription factor binding sites of TauT mRNA[7]

        2 TAUT的調節(jié)機制

        TAUT的調節(jié)機制包括轉錄水平和轉錄后水平2方面。轉錄水平的調節(jié)主要是發(fā)生在TauT mRNA啟動子區(qū)的結合位點上,轉錄后水平的調節(jié)主要發(fā)生在TAUT S4跨膜區(qū)的Ser-322位點上。

        2.1 轉錄水平上的調節(jié)

        根據(jù)TauT mRNA啟動子區(qū)的結合位點,TauTmRNA轉錄水平上的調節(jié)主要分為:p53和c-Jun的調節(jié)、TonE的調節(jié)、NF-κB的調節(jié)和氧化應激元件的調節(jié)。

        2.1.1 p53和c-Jun對TauT mRNA的調節(jié)機制

        p53的結合位點位于TauT mRNA啟動子下游的663~695區(qū)域[8]。TauT基因受p53負調節(jié),其過程如下:p53與轉錄因子sp1的GC框(GC-box)DNA結合位點的SV40區(qū)域結合后,p53通過干擾sp1介導的TauT mRNA轉錄,競爭結合到sp1位點,從而抑制TauT mRNA的表達。同時,sp1和p53可以形成1個雜絡合物,識別p53或sp1結合位點[9],進而抑制 TauT mRNA 的表達[10](圖 2)。

        圖2 p53對TauT mRNA的調節(jié)機制Fig.2 Regulation mechanism of TauT mRNA by p53[11-12]

        c-Jun氨基端激酶(c-Jun NH2-terminal kinase,JNK)是絲裂原活化蛋白(mitogen-activated protein,MAP)激酶的亞群,受細胞因子和應激環(huán)境激活。在應激狀態(tài)下,MAP激酶激酶激酶(MAPkinase kinase kinase,MAPKKK)亞群中蛋白激酶激活MAP激酶激酶亞群中的絲裂原活化蛋白激酶激酶4(MAP kinase kinase 4,MKK4)和絲裂原活化蛋白激酶激酶7(MAP kinase kinase 7,MKK7),這2種蛋白激酶分別磷酸化JNK的酪氨酸(Tyr)和蘇氨酸(Thr)位點[11]。JNK信號通路的主要靶點是通過磷酸化c-Jun和相關分子激活AP1 的轉錄因子[12]。Wagner等[13]報道,JNK 基因敲除的胚胎成纖維細胞中AP1轉錄水平明顯下降,這與生長素反應因子(ARF)、p53和p21表達量增加有關。研究發(fā)現(xiàn),c-Jun結合到腎細胞TauT mRNA啟動子的AP1的2個位點(Ser-63和Ser-73)上,并且與p53共同調節(jié)TauT mRNA的表達。細胞應激通過MAPKKK亞群中的蛋白激酶激活MKK4和MKK7,然后激活JNK,JNK磷酸化并激活p53和c-Jun,下調TauT mRNA的表達;研究還發(fā)現(xiàn),p53在JNK信號通路調節(jié)中占主導,提出p53和c-Jun在共同調節(jié)TauT mRNA表達過程中p53競爭性抑制c-Jun結合到TauT mRNA啟動子區(qū)域(圖3)。

        圖3 c-Jun通過JNK信號轉導通路調控TauT mRNAFig.3 c-Jun regulates TauT mRNA by JNK signaling pathway[14]

        同樣,在人類胚胎腎293細胞中發(fā)現(xiàn)WT1能夠通過與p53的相互作用結合到位于TauT mRNA啟動子169~171區(qū)域的WT1/EGR-1/SP重疊位點上,上調 TauT mRNA 的表達[15]。p53和 WT1之間的相互作用在腫瘤發(fā)生過程中起著非常重要的作用。體外免疫共沉淀和蛋白質印跡(Westernblot)分析顯示,p53和WT1在初生小鼠腎細胞中發(fā)生物理性的結合,WT1主要通過延長p53的半周期增加p53的穩(wěn)定性,并且抑制乳頭瘤病毒E6介導的 p53降解,從而調節(jié) TauT mRNA的表達[16]。

        2.1.2 TonE對TauT mRNA的調節(jié)機制

        TonE的序列位點位于TauT mRNA啟動子的100~110區(qū)域,是高滲上調TauT mRNA表達的反應元件。在高滲或低滲調節(jié)下,TonE通過TonE/TonE結合蛋白(tonicity-responsive element binding protein,TonEBP)途徑調節(jié) TauT mRNA的表達。在高滲調節(jié)下培養(yǎng)HepG2細胞,發(fā)現(xiàn)誘變TonE可消除高滲對TauT mRNA啟動子活性的調節(jié),過量表達的TonEBP增加TonE的活性[17]。TonEBP作為廣泛表達蛋白,能夠通過Rel蛋白的氨基末端區(qū)域結合到 TonE上。TonEBP是 Rel/NF-κB/NFAT家族的轉錄因子,被認為是參與高滲細胞應激的轉錄因子。TonEBP不僅受滲透壓的調節(jié),在阿霉素(DOX)作用下TonEBP還可以通過蛋白酶途徑降解。有研究發(fā)現(xiàn)DOX促進TonEBP的降解,從而下調TauT mRNA的表達,同時TonEBP的降解能被蛋白酶抑制劑所阻斷,推測TonE可能通過蛋白酶途徑影響TonEBP與TonE的結合來調節(jié)TauT mRNA的表達(圖4),但是具體機制尚需進一步究。

        圖4 TonE對TauT mRNA可能的調節(jié)機制Fig.4 Possible regulation mechanism of TauT mRNA by TonE[18]

        2.1.3 NF-κB對TauT mRNA的調節(jié)機制

        Mochizuki等[19]在 Caco-2 細胞中發(fā)現(xiàn) TauT mRNA的表達受腫瘤壞死因子-α(TNF-α)的調節(jié)。電泳遷移率變動分析(EMSA)法顯示NF-κB能夠結合到TauT mRNA啟動子NF-κB相似序列上,抗腫瘤壞死因子受體1(TNFR1)抗體抑制TauT mRNA的上調,提出TNF-α通過NF-κB通路調節(jié)TauT mRNA的表達。NF-κB通路是一條抗細胞凋亡的信號通路。TNFR1是抗TNF-α受體,含有富半胱氨酸重復序列和死亡結構域(DD)。TNF-α誘導細胞凋亡信號通過含有分子適配器的DD轉導,激活胱門蛋白酶。TNF-α能與TNFR1結合形成1個受體復合物而產生內化,并募集腫瘤壞死因子受體相關DD蛋白(TRADD)。受體復合物能夠激活NF-κB介導激酶(NIK)和NF-κB抑制因子(I-κB)激酶(IKK)。激活 IKK磷酸化NF-κB 抑制蛋白 α(IκBα)的 Ser-32 和 Ser-36 位點,導致Lys-21和Lys-22位點蛋白化,并引發(fā)后繼蛋 白 酶依賴性降 解[20]。IκBα 的 降解 導致NF-κB核移位,然后基因表達啟動,上調 TauT mRNA的表達。還有一種調節(jié)機制可能是TNF-α促進活性氧(ROS)的產生,導致氧化應激激活NF-κB上調 TauT mRNA 的表達[21],具體機制尚需進一步研究。

        2.1.4 氧化應激元件對TauT mRNA的調節(jié)機制

        氧化應激對TauT mRNA的調節(jié)通過2條途徑:一條調節(jié)途徑是通過調節(jié)TauT基因的啟動子區(qū) ARE。TauT mRNA 的啟動子含有 ARE[22],被促氧化劑激活,上調TauT mRNA的表達,使細胞免受損傷。ARE的調節(jié)涉及到堿性亮氨酸拉鏈(bZIP)蛋白質一類(基本區(qū)域含有亮氨酸拉鏈基因)的轉錄基因。bZIP轉錄因子NF-E2的相關因子2(Nrf2)介導ARE驅動的氧化應激,對許多受氧化應激調控基因的轉錄活化非常重要[23]。Nrf2能調節(jié)ARE的活性,Nrf2能被KELCH-ECH相關蛋白1(Keap1)所抑制。Keap1是Nrf2在細胞質中的富含半胱氨酸的結合蛋白,通過結合Nrf2使之無法進入細胞核,從而抑制Nrf2的活性,避免細胞對應激源的敏感性升高,例如敲除Keap1基因導致NRF2信號非?;钴S。在無應激條件下,Nrf2在細胞質中通過與Keap1結合而被抑制,而當在氧化應激和過量ROS刺激時,半胱氨酸在Keap1中的殘留量會增加,隨后Keap1作為E3連接酶的活性變弱,Nrf2和Keap1之間的連接被打亂,導致Nrf2泛化和衰退減少,細胞質中自由的Nrf2增多,轉移進細胞核的 Nrf2增多,進入細胞核的Nrf2與小Maf蛋白形成異源二聚體并且和ARE連接在一起[24]。隨后,ARE被激活并且啟動抗氧化基因的轉錄,從而使TauT mRNA表達上調。另外一條調節(jié)途徑是通過激活HSF1上調TauT mRNA的轉錄。氧化應激產生的生理信號通過激活HSF1使HSF1結合到許多基因啟動子特定序列熱反應元件(HSE),如熱休克蛋白(HSPs)中。熱休克蛋白90(HSP90)是量最大的伴侶蛋白,能夠抑制 HSF1的激活。正常狀態(tài)下,HSP90與HSF1以動態(tài)復合物的形式存在。在應激狀態(tài)下,外來蛋白累積并競爭HSF1結合到HSP90上,HSP90-HSF1復合物分解,未結合的HSF1多肽累積,導致HFS1三聚體的大量形成。HSF1單體寡聚成同型三聚體占領TauT mRNA啟動子區(qū)域附近隱匿的順式元件上調TauT mRNA的表達(圖5)。

        圖5 氧化應激通過HFS1調節(jié)TauT mRNA的機制Fig.5 Mechanism of oxidant stress regulating TauT mRNA by HFS1[25-26]

        2.2 轉錄后水平上的調節(jié)

        12-肉豆蔻佛波醇酯(PKM)或13-乙酸酯激活PKC下調非洲爪蛙卵母細胞TAUT的活性。Lee等[27]發(fā)現(xiàn)PKC的激活影響TAUT的活性,但是對TauT mRNA的表達沒有影響,從而得出PKC對TAUT的調節(jié)發(fā)生在轉錄后水平上。Han等[28]早期研究發(fā)現(xiàn),位于TAUT S4跨膜區(qū)的Ser-45和Ser-321是PKC磷酸化的關鍵位點,在后續(xù)的研究中證實,PKC通過磷酸化位于TAUT S4跨膜區(qū)并包含12個帶點殘基的Ser-322位點降低TAUT的活性(圖6)。

        圖6 TAUT S4跨膜區(qū)的Ser-322是PCK磷酸化關鍵位點Fig.6 Ser-322 is a critical site of PCK phosphorylation located in the S4intracellular segment of TAUT[29]

        PKC是一個由多基因家族編碼的多肽類物質,其N-末端結構域的C1區(qū)是甘油二酯(DG)或DG結構類似物佛波酯結合位點;C2區(qū)與酶對鈣的敏感性有關[30]。PKC通常以無活性的形式存在于細胞中,細胞外信號分子與受體結合通過偶聯(lián)蛋白活化磷脂酶C(PLC),使磷脂酰肌醇4,5-二磷酸(PIP2)分解,產生三磷酸肌醇(IP3)和DG。IP3促鈣池中的Ca2+釋放,使胞漿中Ca2+濃度升高,PKC被激活。石彥榮等[31]培養(yǎng)的鈣化大鼠心肌細胞發(fā)現(xiàn)TAUT的活性降低,推測其機制可能是胞漿中Ca2+濃度升高,與PKC的C2區(qū)作用,從而激活PKC,降低TUAT的活性。過去曾認為磷脂酰肌醇(IP)水解是DG產生的唯一來源。但研究表明,刺激細胞表面受體可產生一系列膜磷脂的降解過程,其磷脂的降解產物可直接控制細胞反應。不飽和脂肪酸、磷脂酶D(PLD)和磷脂酶A2(PLA2)催化磷脂酰膽堿(PC)降解,以及微粒體的磷脂酸磷酸脂酶(PAP)降解磷脂酸后均可產生DG,進而激活PKC調節(jié)TAUT的活性[32]。

        3 TAUT調節(jié)機制在動物營養(yǎng)研究中的意義

        3.1 TAUT與斷奶應激

        斷奶應激使動物機體產生嚴重的炎癥反應和氧化應激反應,導致嚴重的胃腸道疾病以及腹瀉。TNF-α是通過NF-κB通路誘導腸上皮細胞發(fā)生炎癥反應的重要因子。Bauer等[33]研究發(fā)現(xiàn)斷奶仔豬腸上皮細胞中NF-κB和TNF-α含量明顯升高。有學者報道,TNF-α通過上調TauT mRNA表達量增加Tau的轉運,從而抑制人腸道Caco-2細胞炎癥反應[34]。據(jù)此推測飼料中添加 Tau可以通過TauT mRNA表達的上調抑制斷奶應激所誘導的炎癥反應。早期斷奶后,短期采食量下降,消化吸收功能降低,有益菌減少,有害菌增加和代謝增強可能是導致機體氧化應激的主要原因。Zhu等[35]報道,21日齡斷奶仔豬血清中過氧化氫酶(CAT)、超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)活性明顯下降,MDA和H2O2水平顯著升高。斷奶應激產生的大量氧自由基能夠激活ARE和HSF1并上調TauT mRNA的表達,從而增加Tau的轉運,緩解氧化應激所誘導的機體損傷。Brandsch等[36]發(fā)現(xiàn)大腸桿菌耐熱性腸毒素(STa)能夠通過PKC下調人腸道Caco-2細胞TAUT的活性,從而使Tau的轉運量明顯下降,這為以后研究飼料中添加Tau能緩解斷奶仔豬腸道中由STa所致的腹瀉提供了重要的理論依據(jù)。

        3.2 TAUT介導的營養(yǎng)物質代謝

        高滲條件下,許多營養(yǎng)物質(如葡萄糖)的吸收都會受到影響[37]。TonE能通過TonE/TonEBP途徑上調TauT mRNA的表達,增加Tau的轉運量來調節(jié)細胞滲透壓平衡,從而平衡營養(yǎng)物質的吸收。同樣,不飽和脂肪酸和鈣能夠激活PKC降低TAUT的活性,顯示不飽和脂肪酸和鈣是Tau的營養(yǎng)拮抗物質,高不飽和脂肪酸和高鈣飼料都會抑制 TAUT的活性,從而減少 Tau的轉運量[38]。Tau屬于β-氨基酸,Tau的攝入可被Tau結構類似物(亞?;撬帷ⅵ?丙氨酸)強烈抑制,被L-丙氨酸部分抑制,因為Tau結構類似物會競爭Tau結合到TAUT轉運位點上,從而抑制 Tau的轉運[39]。以上研究對飼料中Tau與其他營養(yǎng)物質的相互作用有重要指導意義。

        4 小結

        綜上所述,TAUT的調節(jié)發(fā)生在轉錄和轉錄后水平上。轉錄水平上的調節(jié)主要是對TauT mRNA啟動子的調節(jié),包括對 p53、c-Jun、WT1、TonE、NF-κB、ARE和HSF1結合位點的調節(jié)。轉錄后水平上的調節(jié)主要是通過PKC磷酸化對TAUT的調節(jié),位于TAUT S4跨膜區(qū)Ser-322是PKC磷酸化關鍵位點。PKC受許多因素的激活,如高鈣、PMA以及細胞膜表面刺激物等。雖然對TAUT已經有了大量的研究,但是還是存在很多問題,如對TAUT的研究對象大多以人、小鼠、爪蛙為主,在家畜、家禽中的研究較少,特別是TAUT調節(jié)機制在動物營養(yǎng)中的應用;并且有些調節(jié)機制尚不清楚,如TonE是否是通過蛋白酶途徑影響TonEBP與TonE的結合來調節(jié)TauT mRNA的表達,TNF-α上調TauT mRNA的表達是否還通過促進ROS的產生,導致氧化應激激活NF-κB這條途徑等,需要進一步探究。

        致謝:

        感謝西南大學動物科技學院孫志洪教授對文稿提出的寶貴意見。

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