任玉瑩,陳丹,郭玉爭,史洪娜,劉娟,班靖洋,劉亞寧,吳曉芳,王維龍,程海,李鼎鋒,劉勇,王立良
北京安百勝生物科技有限公司,北京 100176
視黃醇類 (Retinoids) 是維生素 A(VitaminsA,vitA) 在體內(nèi)各種代謝物的統(tǒng)稱,主要包括視黃醇 (Retinol)、視黃醛 (Retinene)和視黃酸 (Retinoic acid,RA),它們是一類疏水性分子,廣泛分布于細胞內(nèi)、外環(huán)境中[1]。視黃醇結(jié)合蛋白4 (Retinal binding protein4,RBP4) 是一種分泌型的運載蛋白,屬于疏水性的小分子結(jié)合蛋白家族,分子量約21 kDa,含有201個氨基酸殘基和 3個二硫鍵[2-3],正常生理情況下主要在肝臟中合成,釋放入血后與視黃醇 (ROH) (維生素 A)、甲狀腺素運載蛋白 (TTR) 以 1∶1∶1的比例形成三元復(fù)合物,是體內(nèi)運送視黃醇至其特定靶組織的運載蛋白[4]。當 RBP4與細胞表面的RBP4受體結(jié)合后,視黃醇進入細胞內(nèi),復(fù)合物解體,游離的 RBP從腎小球濾出,其中絕大部分被近端腎小管上皮細胞重吸收并被分解,供組織利用,僅有少量從尿中排出[5]。
目前,臨床上用于腎功能損傷早期診斷的尿小分子蛋白主要是 β2微球蛋白和 RBP4。β2微球蛋白在pH<5.5時很不穩(wěn)定,易降解,取尿液標本后應(yīng)立即調(diào)pH至中性。而且β2微球蛋白在尿液中的半衰期較短:pH 4.0、4 ℃放置4 h后有70%的降解,而RBP4在相同條件下僅降解5%[6]。因此,RBP4相對于 β2微球蛋白在腎功能損傷診斷中更穩(wěn)定、更可靠。
近年來大量研究報道,血清和尿液中 RBP4是一個較敏感的指標,且隨著病程發(fā)展在反映早期腎損害時優(yōu)于 β2微球蛋白和尿微量白蛋白[7-9],在糖尿病、腎病早期,尿RBP4排泄增加先于微白蛋白尿出現(xiàn),被認為是反映早期腎損害的標志[10]。
原核表達系統(tǒng)表達蛋白通常作為獲得目的蛋白的首選方案,其表達量高、周期短、成品低,但絕大多數(shù)重組蛋白都以包涵體形式存在且沒有活性或者活性很低,其蛋白構(gòu)象通常與天然蛋白差異很大,這些是研究人員考慮的主要問題。本實驗室曾用E. coli系統(tǒng)表達人RBP4與其他報道一致,重組蛋白全部為包涵體,且復(fù)性困難活性低下。因此本文選用昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)制備重組人 RBP4,獲得較高的表達量,并制備高質(zhì)量的抗體,為后續(xù)的產(chǎn)品開發(fā)提供理論依據(jù)及實驗數(shù)據(jù)。
Sf9昆蟲細胞,大腸桿菌TOP10、DH10Bac,pFastBac-dual 質(zhì)粒 (簡稱 pFBd)。
PyrobestTaq、DNA連接酶、限制性內(nèi)切酶(TaKaRa);DNA凝膠回收試劑盒、小量質(zhì)粒提取試劑盒 (OMEGA公司);BAC/PAC試劑盒(Sigma 公司);Grace’s Insect Medium (Gibco 公司);GPM-115培養(yǎng)基 (金普諾安公司);胎牛血清 (縮寫:FBS) (Gibco 公司);L-Glutamine (中文名稱:谷氨酰胺,縮寫L-Gln) (Hyclone公司);cellfectin reagent (Invitrogen 公司);DMSO(Sigma公司);山羊抗兔 IgG/辣根酶標記 (中杉金橋);人源RBP4 (購自桂林英美特公司);抗人RBP4兔多抗及大腸桿菌重組RBP4 (E-RBP4) 為實驗室自制。Ⅱ
桿狀病毒密碼子優(yōu)化的bRBP4基因由本實驗室保存。
1.4.1 信號肽與目的基因連接
pMD18-T-bRBP4 (實驗室保存) PCR擴增bRBP4基因,(引物:bRBP4-for,bRBP4-rev見表1) 獲得bRBP4基因。小量提取bacmid質(zhì)粒,以其為模板,PCR方法擴增SS64信號肽片段 (引物:SS64-for,SS64-rev)。然后以bRBP4、SS64PCR產(chǎn)物為模板,PCR方法擴增SS64-bRBP4基因 (引物:SS64-for,bRBP4-rev) 反應(yīng)條件:94 3 min℃ ;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 90 s,共 30 個循環(huán);72 10 min℃ 。
1.4.2 重組轉(zhuǎn)移質(zhì)粒的構(gòu)建
將 pFBd質(zhì)粒與SS64-bRBP4基因分別用BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切,并分別膠回收、連接,轉(zhuǎn)化大腸桿菌 TOP10感受態(tài)細胞并涂布Amp-LB平板,37 ℃溫箱培養(yǎng)過夜。次日從平板上挑取單菌落培養(yǎng),提取質(zhì)粒經(jīng)雙酶切(BamHⅠ+EcoRⅠ) 初步鑒定并送檢測序。
表1 構(gòu)建載體所用的引物Table 1 Primers used in vector construction
1.4.3 重組桿狀病毒構(gòu)建
將已鑒定的重組轉(zhuǎn)移質(zhì)粒 pFBd-SShRBP4和空白載體pFBd質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化到DH10bac感受態(tài)細胞,37 ℃搖床培養(yǎng)4 h后涂三抗平板 (卡那霉素、四環(huán)素、慶大霉素、X-gal、IPTG),于37 ℃孵箱培養(yǎng)48 h。挑取陽性單菌落LB擴增,按BAC/PAC試劑盒方法提取bacmid質(zhì)粒。PCR擴增初步鑒定 (引物:PHsequ-F,M13-R) 反應(yīng)條件:94 3 min℃ ;94 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃90 s,共30個循環(huán);72 10 min℃ 。將鑒定正確的重組質(zhì)粒命名為rbacmid-RBP4,于?20 ℃冰箱凍存?zhèn)溆谩?/p>
Sf9細胞于Grace培養(yǎng)基 (10%胎牛血清、1% GLN) 中培養(yǎng),培養(yǎng)溫度 27 ℃,細胞調(diào)整到對數(shù)生長期。
將 Sf9細胞接種到六孔板,接種量為9×105cells/孔,貼壁15~30 min備用,余下細胞擴增維持培養(yǎng)。各取 rbacmid-RBP4、rbacmid-pFBd 1~2 μg 按說明書 (Bac-to-Bac expression manual,Invitrogen) 分別進行轉(zhuǎn)染。轉(zhuǎn)染混合物加入細胞后,27 ℃孵育5 h,然后換液繼續(xù)培養(yǎng),逐日觀察細胞病變。27 ℃培養(yǎng)72 h或出現(xiàn)明顯病變時結(jié)束培養(yǎng)。收集六孔板內(nèi)上清液作為P1代病毒進行轉(zhuǎn)接擴增,P1毒種取5 L接種到T25細胞瓶,繼續(xù)培養(yǎng)至出現(xiàn)明顯病變,無菌收集上清記為 P2代毒種。按試劑盒說明書進行滴定。
表達與鑒定:取 5瓶對數(shù)期 Sf9細胞 (T75培養(yǎng)瓶,密度70%),將P2代毒種以MOI=1接種,繼續(xù)培養(yǎng)至出現(xiàn)明顯病變后逐日收集樣品,1000 r/min離心5 min,分離細胞及上清。用適量PBS重懸細胞,按1×105cells量通過SDS-PAGE和Western blotting進行檢測和鑒定。抗RBP4的兔多抗和HRP標記的羊抗兔IgG被用于Western blotting來檢測目的蛋白。
懸浮培養(yǎng)表達:將rbacmid-RBP4 P2代毒種接種到300 mL懸浮的培養(yǎng)細胞中,擴增培養(yǎng),逐日取樣 (1 mL) 分離上清、細胞進行SDS-PAGE和Western blotting檢測和鑒定,其余按1.7操作。取表達樣品 (上清、細胞裂解液) 做2n(n=0,1,2) 倍比稀釋并進行 SDS-PAGE檢測,用標準品500 ng估測目的蛋白表達量。
細胞培養(yǎng)上清經(jīng)0.45 μm濾膜過濾后,上樣于金屬 (Ni2+) 螯合瓊脂糖凝膠層析柱 (26 mm×20 cm),流速8 mL/min。上樣結(jié)束后,用平衡液(50 mmol/L PB+0.5 mol/L NaCl+ 20 mmol/L咪唑,pH 7.4) 充分洗平層析柱,依次用不同咪唑濃度的緩沖液洗脫 (50 mmol/L PB+0.5 mol/L NaCl+100 mmol/L咪唑,50 mmol/L PB+0.5 mol/L NaCl+500 mmol/L咪唑),收集A280吸收峰。SDS-PAGE檢測純化過程中RBP4的純度,凝膠成像掃描分析蛋白純度。
選擇2月齡健康新西蘭大白兔制備多克隆抗體,抗原為桿狀病毒系統(tǒng)表達并純化的RBP4蛋白 (I-RBP4),同時將原核表達系統(tǒng)獲得的同種蛋白 (E-RBP4,實驗室保存)、購進的人尿液提純的RBP4蛋白 (H-RBP4) 進行免疫,對比免疫效果,每個實驗組5只兔。
初免用抗原0.25 mg/只 (0.25 mL) 與等體積弗氏完全佐劑混合,乳化1 h以混合物滴到液面不擴散為乳化完全,免疫時脊柱兩側(cè)皮下多點注射0.05 mL/點。并于第2周、4周用不完全佐劑加強免疫,第6周頸動脈取血,分離抗血清檢測待用。
天然的人RBP4 (0.4 μg/mL) 包板檢測血清效價,將血清樣品以 10?3、10?4、10?5三個稀釋度稀釋,100 μL/孔 37 ℃孵育 30 min后洗板 5次,加入山羊抗兔IgG/辣根酶標記 (1∶3 000稀釋) 100 μL/孔 37 ℃孵育 30 min后洗板 5次,室溫顯色 10 min后終止。Thermo酶標儀檢測450 nm及630 nm的吸光度值。
同時將 Sf9細胞的培養(yǎng)上清、Sf9細胞破碎液 (超聲破碎離心的上清液) 分別包板,檢測血清樣品,并確定其特異性。
取80 nm微球8 mL活化30 min,pH 7.2 MES過柱,按 20∶3的量分別偶聯(lián)硫銨初純后抗體(E-RBP4 PcAb、I-RBP4 PcAb、H-RBP4 PcAb)(PcAb,polyclonal antibody 即多克隆抗體),室溫混勻過夜,甘氨酸封閉1 h。用0.05% SDS洗滌微球3次,最后重懸于儲存液中備用。測定前微球超聲5 S:3 S,4次使其具有良好的分散度。將偶聯(lián)抗體配入R2試劑。
參照安徽大千視黃醇結(jié)合蛋白檢測試劑盒的檢測方法,順序加入S (S為安徽大千RBP4標準品),R1試劑 (Tris 50 mmol/L+NaCl 1 mol/L+BSA 0.1% pH 7.2),R2試劑 (偶聯(lián)抗體+表面活性劑+穩(wěn)定劑),R2加入后迅速混勻,測定A546,5 min后再次測定。
隨機挑選3~5個陽性克隆經(jīng)LB (100 μg/mL Amp) 過夜培養(yǎng),提取重組質(zhì)粒、經(jīng)BamHⅠ和EcoRⅠ雙酶切、1%瓊脂糖凝膠電泳檢測 (圖1),有一條800 bp左右的片段產(chǎn)生,表明RBP4基因已經(jīng)成功克隆至pFBd載體中,隨后的測序結(jié)果顯示目的基因RBP4序列與預(yù)期完全一致,命名為 pFBd-SShRBP4。
圖1 重組轉(zhuǎn)移質(zhì)粒pFBd-SShRBP4的酶切鑒定Fig. 1 Identification of the recombinant pFBd-SShRBP4 by restriction endonulease digestion. M1:DNA marker DL2 000; M2: DNA marker DL15 000; 1:pFBd-SShRBP4 digested with BamH I and EcoR I.
挑選 3~5個純白色陽性克隆經(jīng) LB (含50 μg/mL 卡那霉素、10 μg/mL 四環(huán)素、7 μg/mL慶大霉素) 過夜培養(yǎng)并提取 bacmid DNA,以引物 (PHsequ-F、M13R) 進行 PCR進一步篩選鑒定,PCR產(chǎn)物的經(jīng)1%瓊脂糖凝膠檢測,結(jié)果如圖2所示,重組bacmid PCR產(chǎn)物在1 600 bp左右出現(xiàn)特異性條帶 (而陰性對照 rbacmid-pFBd在800 bp處擴出單一條帶,未附圖),表明bacmid構(gòu)建成功,命名rbacmid-RBP4。
提取rbacmid-RBP4 DNA轉(zhuǎn)染單孔細胞,逐日觀察病變情況,結(jié)果見圖3,細胞生長停止,腫脹、變圓,折光性增強,細胞核呈充滿狀態(tài)。部分細胞逐漸壞死、脫落,與正常細胞形成明顯對比,表明轉(zhuǎn)染成功 (圖3)。
圖2 重組rbacmid-RBP4的PCR鑒定Fig. 2 Identification of the recombinant rbacmid-RBP4 by PCR. M1: DNA marker DL 15 000; M2: DNA marker DL1 kb; 1: PCR production from rbacmid-RBP4.
按實驗要求留取細胞懸液,離心,上清細胞分離,SDS-PAGE或Western blotting檢測如下。
2.4.1 方瓶胞內(nèi)表達
以rbacmid-RBP4 P2代毒種接種T75細胞,從細胞出現(xiàn)明顯病變起開始收集樣品,每天收集1瓶感染細胞,分離細胞、上清,分別電泳檢測。結(jié)果見圖4,在23 kDa處可看到清晰的特異性條帶,與預(yù)測蛋白的分子量大小一致,表明 RBP4蛋白在Sf9細胞中成功表達。
2.4.2 懸浮擴增培養(yǎng)
以rbacmid-RBP4 P2代毒種感染懸浮培養(yǎng)細胞,感染4 d后取1 mL細胞懸液,1 000 r/min離心10 min,取10 L上清液加入等量緩沖液混勻,煮沸3 min,10 L點樣檢測目的蛋白分泌表達量。結(jié)果見圖 5,表明 RBP4在懸浮培養(yǎng)的 Sf9細胞中得到高效表達。經(jīng)與標準品對照計算表達水平不低于100 mg/L。
圖3 正常Sf9細胞與轉(zhuǎn)染Sf9細胞的形態(tài)對比 (400×)Fig. 3 Morphological comparison of the normal and transfected Sf9 cells (400×). (A) Normal Sf9 cells. (B)Transfected Sf9 cells.
圖4 Western blotting鑒定RBP4在Sf9細胞內(nèi)的表達Fig. 4 Western blotting analysis of recombinant RBP4 protein in Sf9 cells. M: protein marker; 1?4: infected cells at 3rd/4th/5th/6th day post-infection; 5: RBP4 positive control.
目標蛋白經(jīng)金屬 (Ni2+) 螯合層析柱純化,產(chǎn)物SDS-PAGE分析,在分子量約23 kDa可見單一條帶 (圖 6)。純化后 I-RBP4含量為36.5 mg/L,收獲率為37%。
分別用桿狀病毒系統(tǒng)表達的 I-RBP4、原核表達的 E-RBP4、人源 H-RBP4抗原免疫新西蘭白兔,三針免疫獲得高效價抗血清,I-RBP4三免后 1:105稀釋度的血清OD450-630平均值為0.8850,而 E-RBP4三免后 1:105稀釋度的OD450-630平均值為0.1575低于臨界點,其抗體水平低于真核表達的,H-RBP4三免后1:105稀釋度的OD450-630平均值為 1.2604 (圖 7)。NC (兔陰性血清 1∶100稀釋)OD450-630平均值為 0.047,BC (空白對照)OD450-630平均值為0.009,血清無非特異性結(jié)合,實驗成立。從圖上可以看出,桿狀病毒系統(tǒng)表達的 I-RBP4抗原的免疫原性與人源H-RBP4抗原免疫原性接近,而遠好于原核表達的E-RBP4抗原的免疫原性,提示桿狀病毒系統(tǒng)表達的 I-RBP4蛋白具有類似人源 H-RBP4抗原的活性,而原核表達的 E-RBP4蛋白與人源H-RBP4抗原的活性相差很大??寡逄禺愋詸z測結(jié)果表明:RBP4兔抗血清與 Sf9細胞 (培養(yǎng)基、細胞代謝物、細胞成分) 無交叉反應(yīng),驗證其專屬性。
圖5 懸浮培養(yǎng)Sf9細胞表達RBP4的SDS-PAGE和Western blotting鑒定Fig. 5 SDS-PAGE and Western blotting analysis of recombinant RBP4 secreted by suspension cultured Sf9 cells. M:protein marker; 1: the supernatant from rbacmid-pFBd infected Sf9 cells at 72 h post-infection; 2: the supernatant from rbacmid-RBP4 infected Sf9 cells at 72 h post-infection.
圖6 Sf9細胞表達RBP4蛋白的純化鑒定Fig. 6 Purification of protein secreted by Sf9 cells. M:protein marker; 1: after purification.
圖7 RBP4兔抗血清ELISA效價測定Fig. 7 ELISA analysis of RBP4 rabbit antiserum.
利用抗原 (RBP4標準品) 與特異性抗體(兔抗人視黃醇結(jié)合蛋白抗血清) 相結(jié)合,形成不溶性免疫復(fù)合物,使反應(yīng)液產(chǎn)生混濁,其濁度即反應(yīng)樣品中視黃醇結(jié)合蛋白的濃度。
試驗中將不同來源的多克隆抗體與微球偶聯(lián),放大信號更有效地檢測血清中低濃度的蛋白,紫外分光光度檢測確定抗原抗體的結(jié)合率。由表2可見,I-RBP4多抗與H-RBP4結(jié)合效果相近,遠高于E-RBP4多抗的效果。這提示本研究桿狀病毒系統(tǒng)表達生產(chǎn)的重組蛋白 I-RBP4具有和人源H-RBP4相似的生物學(xué)特性 (活性、高級結(jié)構(gòu)),而這些生物學(xué)特性為大腸桿菌生產(chǎn)的重組蛋白E-RBP4所不具備;這也驗證了桿狀病毒表達系統(tǒng)具有的優(yōu)越性之一,即其重組產(chǎn)品絕大多數(shù)具有很好的活性。
表2 抗原抗體親和力試驗Table 2 Antigen-antibody affinity test
目前獲得RBP4蛋白的方法主要有兩個:其一,天然提純化。正常人體液中,RBP4含量甚微,血液中,RBP4濃度維持在25~70 mg/L;尿液中含量為0.7 mg/L[11]。在腎功能損傷病人中,尿液含量仍然較低,約1~3 mg/24 h尿,且尿液中的RBP4以多聚物形式存在,蛋白純化繁瑣,成本較高,得率較低[12],不利于大量提取。其二,DNA重組技術(shù)制備。利用原核系統(tǒng)、真核系統(tǒng)表達目的蛋白。
原核系統(tǒng)表達目的產(chǎn)物主要為包涵體形式,多為錯誤折疊的RBP4和一些菌體蛋白以及核酸和一些脂類物質(zhì),需要復(fù)性才能得到具有活性及實際的應(yīng)用價值,操作繁瑣、難度大、收率低、成本高,在結(jié)構(gòu)與功能上與天然蛋白有一定的差距;即使是在E. coli細胞內(nèi)直接表達的可溶性蛋白,在與特異性抗體的識別上也有明顯的差異。我們的動物免疫結(jié)果也證明了這點。
真核表達首選 Bac-to-Bac桿狀病毒表達系統(tǒng)。此系統(tǒng)利用昆蟲細胞高效表達多種重組蛋白,在生物制品的研發(fā)與生產(chǎn)中有很大的應(yīng)用潛力[13-14],并且有各種優(yōu)化方案可供選擇[15-17]。采用該系統(tǒng)重組病毒 DNA不含有親代病毒,免除空斑純化,節(jié)省成本提高效率。高滴度的病毒通過初步的轉(zhuǎn)染而獲得,這一特性將鑒定純化重組病毒的時間從4~6周縮減到7~9 d[18],同時陽性克隆的轉(zhuǎn)化率從0.1%~1%提高到接近30%[19-20]。對脊椎動物而言意味著較好的生物安全性[21]。桿狀病毒系統(tǒng)還具有其他表達系統(tǒng)不具有的特性,如容納較大的外源 DNA (10 kb) 而不影響病毒的復(fù)制和裝配;適合表達細胞毒性蛋白[22];可同時表達多種蛋白并完成病毒樣顆粒的構(gòu)建[23-24];利用生物反應(yīng)器進行大規(guī)模的擴增培養(yǎng)[25];可以在蟲體內(nèi)表達生產(chǎn)蛋白,大大節(jié)約成本[26]等。
實驗中利用EcoRⅠ和BamHⅠ兩個酶切位點將RBP4片段亞克隆到pFBd供體質(zhì)粒中,重組病毒的構(gòu)建在 DH10Bac感受態(tài)細胞中完成,通過pFBd供體質(zhì)粒上的mini-Tn7序列與bacmid上的 mini-attTn7序列進行轉(zhuǎn)座,獲得重組rbacmid-RBP4,并轉(zhuǎn)染到Sf9細胞而獲得重組的RBP4蛋白。
實驗初期,采用Grace (含F(xiàn)BS 10%) 培養(yǎng)基進行貼壁培養(yǎng)的Sf9細胞表達目的蛋白,自感染第3天起收集細胞和上清檢測,上清中表達量低未能檢出目的蛋白,而胞內(nèi)的表達從第3天起逐步加大,第5天達到最高。由上述摸索實驗得出如下結(jié)論:Grace培養(yǎng)基能夠支持目的蛋白的表達,但不是最佳的選擇。在此基礎(chǔ)上,逐步更換培養(yǎng)體系,用GPM-115 (含F(xiàn)BS 3%) 培養(yǎng)基逐步取代Grace培養(yǎng)基,實現(xiàn)細胞的懸浮培養(yǎng),馴化后細胞從擴增速度、感染速度以及分泌表達上都有了一定的提高,當采用Grace培養(yǎng)基貼壁培養(yǎng)時,目的蛋白最大表達量出現(xiàn)在5~6 d,且僅為胞內(nèi)表達;而優(yōu)化條件后,細胞第3天即分泌大量目的蛋白并可持續(xù)到第5天,在無補料添加的條件下,表達量達100 mg/L以上。
真核細胞重組蛋白的優(yōu)點通過家兔免疫實驗得以證實。桿狀病毒系統(tǒng)表達的RBP4蛋白,其免疫原接近人源的RBP4,而優(yōu)于E. coli表達的 RBP4。這也從另一個角度證明了桿狀病毒表達系統(tǒng)生產(chǎn)的蛋白具有天然免疫原性。
[1]Chen J, Zhou DJ. The classification, structure and function of retinol-binding proteins. Chem Life,2004, 24(2): 112?115 (in Chinese).
陳健, 周度金. 視黃醇類結(jié)合蛋白的分類、結(jié)構(gòu)及功能. 生命的化學(xué), 2004, 24(2): 112?115.
[2]Wang SS, Xu QS. Studies on retinol-binding proteins. Chem Life, 2000, 20(4): 165?167 (in Chinese).
王世春, 徐琪壽. 視黃醇結(jié)合蛋白研究. 生命的化學(xué), 2000, 20(4): 165?167.
[3]Lin WP, Li SG, Xu QS. Molecular mechanism and clinical application of retinol-binding protein. Bull Acad Milit: Med Sci, 2005, 29(5): 492?495 (in Chinese).
林維平, 李思光, 徐琪壽. 視黃醇結(jié)合蛋白的分子機制及臨床應(yīng)用. 軍事醫(yī)學(xué)科學(xué)院院刊, 2005,29(5): 492?495.
[4]Smith CW, Patton JG, Nadal-Ginard B. Alternative splicing in the control of gene expression. Annu Rev Genet, 1989, 23: 527?577.
[5]Monaco HL, Rizzi M, Coda A. Structure of a complex of two plasma proteins: transthyret in and retinol-binding protein. Science, 1995, 268(5213):1039?1041.
[6]Blumsohn A, Morris BW, Griffiths H, et al.Stability of beta 2-microglobumin and retinol binding protein at different values of pH and temperature in normal and pathological urine. Clin Chim Acta, 1991, 195(3): 133?137.
[7]Xing JH, Wu K, Gao L. Diagnostic values of CysC,RBP, MA, NAG and β2-MG during early renal damage in type 2 diabetes. Exper Lab Med, 2010,28(3): 243?244 (in Chinese).
熊建輝, 吳凱, 高龍. 辨析 CysC、RBP、MA、NAG、β2-MG對2型糖尿病腎臟早期損害的診斷價值. 實驗與檢驗醫(yī)學(xué), 2010, 28(3): 243?244.
[8]Wei YP, Zhang J, Yang JP. Diagnostic values of combined detection of serum cystatin C and four classes of urine proteins in early diabetic nephropathy. Chin J Clin Res, 2011, 24(8): 722 (in Chinese).
魏宇鵬, 張季, 楊金萍. 血胱抑素 C和尿中 4種蛋白聯(lián)合檢測對早期糖尿病腎病的診斷價值. 中國臨床研究, 2011, 24(8): 722.
[9]Liu N, Wang XZ. Early diagnostic markers of acute renal failure. Exper Lab Med, 2009, 27(1): 72?74(in Chinese).
劉寧, 王小中. 急性腎衰竭的早期診斷標志物.實驗與檢驗醫(yī)學(xué), 2009, 27(1): 72?74.
[10]Koch A, Weiskirchen R, Sanson E, et al.Circulating retinol binding protein 4 in critically ill patients before specific treatment: prognostic impact and correlation with organ function,metabolism and inflammation. Crit Care, 2010,14(5): R179.
[11]Deng RC, Shi QF. Progresses in clinical application of retinol-binding protein. Exper Lab Med, 2012,30(1): 40?43 (in Chinese).
鄧榮春, 施橋發(fā). 視黃醇結(jié)合蛋白臨床應(yīng)用進展.實驗與檢驗醫(yī)學(xué), 2012, 30(1): 40?43.
[12]Jin H, Gao LX, Wang ZY, et al. Purification of retinol-binding protein and preparation of its antiserum. Progr Biochem Biophys, 1993, 20(6):460?463 (in Chinese).
金宏, 高蘭興, 王宗印, 等. 視黃醇結(jié)合蛋白的分離純化及其抗血清的制備. 生物化學(xué)與生物物理進展, 1993, 20(6): 460?463.
[13]Cox MM. Recombinant protein vaccines produced in insect cells. Vaccine, 2012, 30(10): 1759?1766.
[14]Vicente T, Rold?o A, Peixoto C, et al. Large-scale production and purification of VLP-based vaccines.J Invertebr Pathol, 2011, 107(Suppl): S42?S48.
[15]Hitchman RB, Locanto E, Possee RD, et al.Optimizing the baculovirus expression vector system. Methods, 2011, 55(1): 52?57.
[16]Li SF, Wang HL, Hu ZH, et al. Genetic modification of baculovirus expression vectors.Virol Sin, 2012, 27(2): 71?82.
[17]Aucoin MG, Mena JA, Kamen AA. Bioprocessing of baculovirus vectors: a review. Curr Gene Ther,2010, 10(3): 174?186.
[18]Zhang WY, Yang XN, Jin DZ, et al. Expression and enzyme activity determination of human cyclooxygenase-1 and -2 in a baculovirus-insect cell system. Acta Pharmacol Sin, 2004, 25(8):1000?1006.
[19]Hartig PC, Cardon MC. Rapid efficient production of baculovirus expression vectors. J Virol Methods,1992, 38(1): 61?70.
[20]Kitts PA, Ayres MD, Possee RD. Linearization of baculovirus DNA enhances the recovery of recombinant virus expression vectors. Nucleic Acids Res, 1990, 18(19): 5667?5672.
[21]Van Oers MM. Opportunities and challenges for the baculovirus expression system. J Invertebr Pathol, 2011, 107 (suppl): S3?S15.
[22]Bel Haj Rhouma R, Cérutti-Duonor M, Benkhadir K, et al. Insecticidal effects ofButhus occitanustunetanus BotIT6 toxin expressed inEscherichia coliand baculovirus/insect cells. J Insect Physiol,2005, 51(12): 1376?1383.
[23]Chung CY, Chen CY, Lin SY, et al. Enterovirus 71 virus-like particle vaccine: improved production conditions for enhanced yield. Vaccine, 2010,28(43): 6951?6957.
[24]Palomares LA, Mena JA, Ramírez OT.Simultaneous expression of recombinant proteins in the insect cell-baculovirus system: production of virus-like particles. Methods, 2012, 56(3): 389?395.
[25]Maranga L, Cunha A, Clemente J, et al. Scale-up of virus-like particles production: effects of sparging,agitation and bioreactor scale on cell growth,infection kinetics and productivity. J Biotechnol,2004, 107(1): 55?64.
[26]Wu TY, Chen HA, Li FY, et al. High-level expression, purification and production of the fungal immunomodulatory protein-gts in baculovirus-infected insect larva. Appl Biochem Biotechnol, 2013, 169(3): 976?989.