亚洲免费av电影一区二区三区,日韩爱爱视频,51精品视频一区二区三区,91视频爱爱,日韩欧美在线播放视频,中文字幕少妇AV,亚洲电影中文字幕,久久久久亚洲av成人网址,久久综合视频网站,国产在线不卡免费播放

        ?

        血管內(nèi)皮糖萼研究進展

        2013-08-15 00:46:07姚杏紅
        四川解剖學雜志 2013年4期
        關(guān)鍵詞:細胞骨架肌動蛋白剪切力

        姚杏紅 曾 燁

        1(中山大學腫瘤防治中心放療科,華南腫瘤學國家重點實驗室,廣州 510060)

        2(四川大學華西基礎(chǔ)醫(yī)學與法醫(yī)學院生物醫(yī)學工程研究室,成都 610041)

        心血管病嚴重危害著人類的生命健康,近年來一直高居我國居民主要疾病死亡率的榜首[1]。研究行之有效的心血管病防冶策略是國家的重大戰(zhàn)略需求。心血管系統(tǒng)是一個以心為核心,血管網(wǎng)絡遍布全身的生物力學系統(tǒng)。流體力學因素,如剪切力(shear stress)通過調(diào)控內(nèi)皮細胞力傳導機制,進而影響血管張力、血凝過程、免疫和炎癥反應、血管生成與重建等功能及維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)。內(nèi)皮細胞感受剪切力、將剪切力信號轉(zhuǎn)導入細胞內(nèi)引起分子信號級聯(lián)反應,最終做出應答的機制即力傳導機制。力傳導機制是近年來醫(yī)學領(lǐng)域研究的一大焦點。

        過去20年,通過研究內(nèi)皮細胞已知受體/感受器在剪切力調(diào)節(jié)內(nèi)皮細胞形態(tài)與功能中的作用,探明了一些與力學信號傳導相關(guān)的內(nèi)皮結(jié)構(gòu)蛋白和受體,它們通稱為力學感受器(mechanosensor)。這些潛在的力學感受器主要包括血管內(nèi)皮糖萼(endothelial glycocalyx)、離子通道(例如Ca2+通道)、細胞骨架(cytoskeleton)(例如微管、肌動蛋白和中間絲)、G 蛋白耦聯(lián)受體(例如白介素-8 受體CXCR1和CXCR2)、酪氨酸激酶受體(例如血管內(nèi)皮生長因子受體flk-1(fetal liver kinase 1))和粘附蛋白分子(例如血管內(nèi)皮細胞鈣黏蛋白(vascular endothelial cadherin,VE-cadherin),血小板內(nèi)皮細胞黏附分子-1(platelet endothelial cell adhesion molecule-1,PECAM-1)和αvβ3 整 合素)等[2-6]。這些力學 元 件分布于內(nèi)皮細胞的不同部位,其中血管內(nèi)皮糖萼附著于內(nèi)皮細胞表面與血液直接接觸。

        最新研究表明,作為力學感受器家族中最新的一員,內(nèi)皮糖萼在維持正常的心血管功能中扮演著非常重要的角色。血管內(nèi)皮糖萼層的破壞與動脈粥樣硬化、肥胖、腫瘤轉(zhuǎn)移等眾多疾病的發(fā)生密切相關(guān)。人們逐漸領(lǐng)悟到血管內(nèi)皮糖萼在生理與病理過程中的重要性,對血管內(nèi)皮糖萼的結(jié)構(gòu)與功能的研究及其調(diào)控正在成為生命科學研究中值得深入的新熱點。

        1 血管內(nèi)皮糖萼的結(jié)構(gòu)

        血管內(nèi)皮糖萼是血管內(nèi)皮腔側(cè)表面覆蓋著的一層多糖-蛋白質(zhì)復合物。對內(nèi)皮細胞表面的這層活性物質(zhì)的認識可追溯到半個世紀前,1966年Luft[7]采用電子顯微鏡技術(shù)首次顯示了血管內(nèi)皮糖萼,但受技術(shù)條件限制,至今對其組成與功能等仍知之甚少。目前,研究者們總結(jié)過去十數(shù)年的研究,認為血管內(nèi)皮糖萼主要包括蛋白聚糖(proteoglycan,PG)及其上糖胺聚糖(glycosaminoglycan,GAG)鏈等。GAG 為糖萼中含量最多的成分,主要包括:硫酸乙酰肝素(heparan sulfate,HS)、硫酸軟骨素(chondroitin sulfate,CS)和透明質(zhì)酸(hyaluronic acid或hyaluronan,HA)等三種。在血管系統(tǒng)中HS最多,占GAG 總量的50%以上。內(nèi)皮細胞頂面(apical surface)的硫酸乙酰肝素蛋白聚糖(heparan sulfate proteoglycans,HSPG)主要包括跨膜syndecan 家族、糖磷脂酰肌醇(glycophosphatidylinositol,GPI)錨定的glypican家族。Syndecan家族中,內(nèi)皮細胞syndecan-1可與HS和CS結(jié)合[8],與剪切力關(guān)系最密切[9]。Glpyican-1 是唯一在內(nèi)皮細胞上表達 的glypican家族成員,它與syndecan-1不同,只鏈接有HS鏈,而沒有CS鏈[8]。HA 是非硫酸化的GAG,它不與PG 核心蛋白相連,與受體CD44結(jié)合。目前研究認為,胞膜窖(caveolae)與脂筏(lipid raft)為兩種不同的膜筏(membrane raft)[10,11],syndecan-1為跨膜蛋白,錨定于膜筏外的膜區(qū)域,而glypican-1則位于膜筏上(包括胞膜窖與脂筏)。

        2 血管內(nèi)皮糖萼的功能

        血管內(nèi)皮糖萼強烈影響內(nèi)皮細胞功能,可調(diào)節(jié)血細胞與內(nèi)皮細胞的相互作用,為維持血管內(nèi)皮細胞的正常結(jié)構(gòu)與功能所必須,它貢獻于血-組織通透性屏障的形成[12-14],是血流作用力的力學感受器[10,15],并可防止白細胞在內(nèi)皮細胞上的粘附[16]等,在多種生理學過程中發(fā)揮著重要作用。當前研究認為,糖萼的各成分維持著合成與降解的動態(tài)平衡,糖萼結(jié)構(gòu)的破壞會對其功能產(chǎn)生極大影響。糖萼的主要功能有:

        (1)血管壁的選擇性通透屏障

        帶負電荷的內(nèi)皮糖萼與吸附的血漿蛋白位于血液和內(nèi)皮細胞之間,通過限制液體和血漿大分子向內(nèi)皮細胞膜轉(zhuǎn)運,維持體液平衡,構(gòu)成了血管壁的天然選擇性通透屏障。研究表明,大分子右旋糖酐不能透過糖萼,而小分子的則容易透過[17]。糖萼破壞后,血管壁通透性增加[18]。目前認為,糖萼變化引起的通透性改變與細胞間連接這一影響通透性的主要結(jié)構(gòu)無關(guān)。

        (2)調(diào)節(jié)血細胞與血管內(nèi)皮細胞的相互作用

        內(nèi)皮糖萼的存在,限制了白細胞、血小板和紅細胞與內(nèi)皮細胞的接觸[16,19]。糖萼破壞以后,白細胞與內(nèi)皮細胞的相互作用增加。目前認為,糖萼對白細胞與內(nèi)皮細胞相互作用的調(diào)控與兩個方面有關(guān):一方面與可降解糖萼的細胞外蛋白酶(Extracellular Proteases)密切相關(guān)[16,19],主要是基質(zhì)金屬蛋白酶(Matrix metalloproteases,MMPs);另一方面,它掩蓋或減弱了內(nèi)皮細胞表面的粘附分子如ICAM-1等。研究表明,動脈粥樣硬化早期發(fā)生事件伴隨內(nèi)皮表面糖萼的損傷,使血管壁粘附性增加。

        (3)參與力傳導

        糖萼在內(nèi)皮細胞力學信號傳導中扮演著重要角色[20-23]。2003年,Weinbaum 等通過理論分析,指出糖萼的存在可將細胞表面的剪切力消弱至一個可忽略的水平,剪切力矩可通過PG(如syndecan-1)的跨膜域傳遞到膜下肌動蛋白骨架,繼而觸發(fā)細胞內(nèi)分子信號級聯(lián)反應[24]。2004年,Weinbaum 等的實驗結(jié)果進一步表明,糖萼破壞以后,細胞骨架對剪切力的應答被抑制,而細胞連接卻幾乎不受影響[25]。選擇性移除特定糖萼GAG 可抑制剪切力誘導的牛主動脈內(nèi)皮細胞的NO 生成[26-28]。

        (4)作為控制中心調(diào)節(jié)血管局部微環(huán)境穩(wěn)定

        糖萼GAG 鏈形成的非均相表面(heterogeneous surface)[29]為大量血源性分子的停泊提供了可能,并通過三種途徑影響著局部微環(huán)境:一是受體或者酶及其配體在內(nèi)皮糖萼上的結(jié)合造成其局部濃度的升高,如糖萼結(jié)合有脂蛋白脂肪酶及其配體低密度脂蛋白;二是血源性分子在糖萼上的結(jié)合可能會形成局部的濃度梯度;三是酶及其激動劑或抑制劑的停泊,增加了血管內(nèi)皮糖萼的血管保護功能。

        3 血管內(nèi)皮糖萼的常用研究技術(shù)

        近年來,流式細胞術(shù)、激光共聚焦熒光顯微鏡、電子顯微鏡和活體顯微術(shù)的應用發(fā)展為內(nèi)皮糖萼結(jié)構(gòu),特別是糖萼GAG 的深入研究提供了技術(shù)手段。綜合運用多種方法可檢測細胞表面的糖萼結(jié)構(gòu)與分布情況。

        (1)電子顯微鏡

        內(nèi)皮糖萼的顯示最先是利用釕紅(Ruthenium Red)染色實現(xiàn)的,其測得的厚度約為20nm。但釕紅可能會通過靜電作用影響糖萼的幾何結(jié)構(gòu),且分子較大,難以與糖萼分子完全接觸。為了克服該缺點,使用小分子阿利新藍(Alcian Blue)作為染料,測得糖萼厚度在45~80nm,而該法的缺點則是需洗去黏附的血漿蛋白,這一過程可能使糖蛋白的核心蛋白被溶解。隨后,通過使用碳氟化合物作為鋨酸溶劑的方法更好地減少了固定對糖萼結(jié)構(gòu)的破壞,使顯示厚度達60~110nm。

        (2)活體顯微術(shù)

        由于電子顯微鏡法中標本制備和染色會嚴重破壞富含水分的糖萼結(jié)構(gòu),在20世紀70年代后期,開始使用活體定量研究為糖萼厚度測定提供間接依據(jù)。該方法將糖萼視作紅細胞與內(nèi)皮細胞間的“隔離層”,測定該“隔離層”的范圍間接測得糖萼厚度為數(shù)百納米。

        盡管活體顯微術(shù)顯示法不會破壞糖萼完整性,但卻不能用于體外培養(yǎng)細胞的研究。對于體外培養(yǎng)內(nèi)皮細胞表面糖萼層進行電子顯微鏡測定時需要采用特殊處理盡可能恢復和保存糖萼層的完整性。最近,Ebong等利用冷凍電子顯微鏡技術(shù)觀察到了體外牛主動脈內(nèi)皮細胞上厚度為5μm 的糖萼。

        (3)流式細胞術(shù)

        最近,Koo和Dewey 等[9]利用流式細胞術(shù),檢測了人臍靜脈內(nèi)皮細胞表面糖萼成分在流動波形剪切力長時間作用下的合成情況。該方法的優(yōu)點是靈敏度高,缺點是需要將體外培養(yǎng)的內(nèi)皮細胞分離成單個細胞,對內(nèi)皮糖萼層的破壞有待評估。

        (4)激光共聚焦熒光顯微鏡

        我們先前利用激光共聚焦熒光顯微鏡對內(nèi)皮糖萼的成分、結(jié)構(gòu)及其在剪切力作用下的變化進行了研究[10,30-32]。但受顯微鏡的Z軸分辨率的限制,該方法無法準確顯示糖萼的厚度。

        而對于血管內(nèi)皮糖萼功能的認識,當前主要是通過選擇性降解酶作用糖萼的特定成分,特別是GAGs,然后分析整個細胞功能的變化。

        4 剪切力誘導血管內(nèi)皮糖萼的特異重構(gòu)

        最近兩年,我們在剪切力誘導血管內(nèi)皮糖萼結(jié)構(gòu)重建方面獲得了一些研究成果。血管內(nèi)皮糖萼在剪切力作用下的改變可分為急性改變與適應性改變。急性改變[10]:15dyn/cm2生理剪切力作用內(nèi)皮細胞30分鐘后,部分glypican-1及其結(jié)合的HS呈現(xiàn)聚集現(xiàn)象,而跨膜syndecan-1 及其上附著的HS和CS,以及部分glypican-1則固定不動。適應性改變[32]:剪切力持續(xù)作用至24 小時后,HS 重新覆蓋細胞單層表面,這與在完全適應條件下的大鼠與小鼠主動脈中相似[33]。同時,值得注意的還有細胞骨架的變化,30 分鐘時,肌動蛋白纖維微絲在細胞頂部和底部均有增加;而24小時后,長應力纖維形成并主要集中分布于細胞頂部,細胞底部的肌動蛋白纖維微絲增加,但排布凌亂。利用cytochalasin D 擾亂肌動蛋白的重構(gòu),我們發(fā)現(xiàn)24小時以后的HS的合成與重新分布被阻止,而前30分鐘的聚集現(xiàn)象依然明顯存在?,F(xiàn)有研究表明,肌動蛋白細胞骨架為維持胞膜窖穩(wěn)定[34]所必須,同時與syndecan-1跨膜域有相互作用[35]。上述擾亂肌動蛋白的重構(gòu)廢除了血管內(nèi)皮糖萼的適應性重構(gòu)現(xiàn)象,其產(chǎn)生的原因似乎是cytochalasin D 僅破壞了細胞骨架與syndecan-1及胞膜窖的相互作用,但不影響脂筏。

        研究表明,急性與慢性改變的剪切力對內(nèi)皮細胞的力學傳導[36,37]與內(nèi)皮通透 性[38,39]具有不 同作用。急性改變的剪切力(15dyn/cm2 作用30 分鐘)可誘導NO 表達水平顯著增加[10]。急性改變的剪切力(10dyn/cm2作用30分鐘)活化細胞頂面的β1整合素[40];阻斷β1 整合素的活化可廢除剪切力誘導的PI3K-Akt-eNOS信號級聯(lián)這一與NO 表達密切相關(guān)的胞內(nèi)信號通路;急性剪切力誘導的這些變化依賴于胞膜窖的完整性,不依賴于肌動蛋白細胞骨架。肌動蛋白細胞骨架似乎與急性改變的剪切力誘導的NO 無關(guān)。

        綜上所述,研究血管內(nèi)皮糖萼的結(jié)構(gòu)與功能,對闡明剪切力調(diào)控內(nèi)皮細胞結(jié)構(gòu)與功能的力傳導途徑具有重要意義。急性改變的剪切力誘導的血管內(nèi)皮糖萼重構(gòu)與NO 的表達均不依賴肌動蛋白細胞骨架。而血管內(nèi)皮糖萼在NO 表達中有著重要作用,不可否認,通過深入認識血管內(nèi)皮糖萼的重構(gòu)機理,可以幫助我們更好地認識剪切力誘導內(nèi)皮細胞NO表達的作用機理,進而幫助我們更好地保護血管,預防和冶療心血管疾病。

        [1]中華人民共和國衛(wèi)生部.2011 年中國衛(wèi)生統(tǒng)計年鑒[J].2011,

        [2]Resnick N,Yahav H,Shay-salit A,et al.Fluid shear stress and the vascular endothelium:for better and for worse[J].Prog Biophys Mol Biol,2003,81(3):177-199.

        [3]Wang Y,Shyy J Y,Chien S.Fluorescence proteins,live-cell imaging,and mechanobiology:seeing is believing[J].Annu Rev Biomed Eng,2008,10:1-38.

        [4]Ando J,Yamamoto K.Vascular mechanobiology:endothelial cell responses to fluid shear stress[J].Circ J,2009,73(11):1983-92.

        [5]Zeng Y,Sun H R,Yu C,et al.CXCR1and CXCR2are novel mechano-sensors mediating laminar shear stress-induced endothelial cell migration[J].Cytokine,2011,53(1):42-51.

        [6]Hahn C,Schwartz M A.Mechanotransduction in vascular physiology and atherogenesis[J].Nat Rev Mol Cell Biol,2009,10(1):53-62.

        [7]LUFT J H.Fine structures of capillary and endocapillary layer as revealed by ruthenium red[J].Federation proceedings,1966,25(6):1773-1783.

        [8]Tarbell J M,Pahakis M Y.Mechanotransduction and the glycocalyx[J].Journal of internal medicine,2006,259(4):339-350.

        [9]Koo A,Dewey C F,JR.,Garcia-cardena G.Hemodynamic shear stress characteristic of atherosclerosis-resistant regions promotes glycocalyx formation in cultured endothelial cells[J].American journal of physiology Cell physiology,2013,304(2):C137-146.

        [10]Zeng Y,Waters M,Andrews A,et al.Fluid shear stress induces the clustering of heparan sulfate via mobility of glypican-1in lipid rafts[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2013,305(6):H811-820.

        [11]Lindner R,Naim H Y.Domains in biological membranes[J].Experimental cell research,2009,315(17):2871-2878.

        [12]Michel C C,Curry F E.Microvascular permeability [J].Physiol Rev,1999,79(3):703-761.

        [13]Levick J R,Michel C C.Microvascular fluid exchange and the revised Starling principle[J].Cardiovasc Res,2010,87(2):198-210.

        [14]Vink H,Duling B R.Identification of distinct luminal domains for macromolecules,erythrocytes,and leukocytes within mammalian capillaries[J].Circ Res,1996,79(3):581-589.

        [15]Tarbell J M.Shear stress and the endothelial transport barrier[J].Cardiovascular research,2010,87(2):320-330.

        [16]Lipowsky H H.The endothelial glycocalyx as a barrier to leukocyte adhesion and its mediation by extracellular proteases[J].Annals of biomedical engineering,2012,40(4):840-848.

        [17]Van Haaren P M,Vanbavel E,et al.Localization of the permeability barrier to solutes in isolated arteries by confocal microscopy[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2003,285(6):H2848-H2856.

        [18]Van den berg B M,Vink H,Spaan J A.The endothelial glycocalyx protects against myocardial edema[J].Circulation research,2003,92(6):592-594.

        [19]Lipowsky H H,Gao L,Lescanic A.Shedding of the endothelial glycocalyx in arterioles,capillaries,and venules and its effect on capillary hemodynamics during inflammation[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2011,301(6):H2235-2245.

        [20]Tarbell J M,Ebong E E.The endothelial glycocalyx:a mechano-sensor and-transducer[J].Science signaling,2008,1(40):pt8.

        [21]Curry F E,Adamson R H.Endothelial glycocalyx:permeability barrier and mechanosensor[J].Annals of biomedical engineering,2012,40(4):828-839.

        [22]鄧小燕,康紅艷.血管內(nèi)皮細胞糖萼與力傳導[J].力學與實踐,2010,32(1):1-9.

        [23]Yao Y,Rabodzey A,Dewey C F,JR.Glycocalyx modulates the motility and proliferative response of vascular endothelium to fluid shear stress [J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2007,293(2):H1023-1030.

        [24]Wwinbaum S,Zhang X,Han Y,et al.Mechanotransduction and flow across the endothelial glycocalyx[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2003,100(13):7988-7995.

        [25]Thi M M,Tarbell J M,Weinbaum S,et al.The role of the glycocalyx in reorganization of the actin cytoskeleton under fluid shear stress:a"bumper-car"model[J].Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America,2004,101(47):16483-16488.

        [26]Florian J A,Kosky J R,Ainslie K,et al.Heparan sulfate proteoglycan is a mechanosensor on endothelial cells[J].Circulation research,2003,93(10):e136-e142.

        [27]Mochizuki S,Vink H,Hiramatsu O,et al.Role of hyaluronic acid glycosaminoglycans in shear-induced endothelium-derived nitric oxide release[J].Am J Physiol Heart Circ Physiol,2003,285(2):H722-H726.

        [28]Pahakis M Y,Kosky J R,Dull R O,et al.The role of endothelial glycocalyx components in mechanotransduction of fluid shear stress[J].Biochemical and biophysical research communications,2007,355(1):228-233.

        [29]Reitsma S,Slaaf D W,Vink H,et al.The endothelial glycocalyx:composition,functions,and visualization[J].Pflugers Archiv:European journal of physiology,2007,454(3):345-359.

        [30]Zeng Y,Adamson R H,Curry F R,et al.Sphingosine-1-phosphate protects endothelial glycocalyx by inhibiting syndecan-1shedding[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2013.

        [31]Zeng Y,Ebong E E,F(xiàn)u B M,et al.The structural stability of the endothelial glycocalyx after enzymatic removal of glycosaminoglycans[J].PloS one,2012,7(8):e43168.

        [32]Zeng Y,Tarbell J M.The adaptive remodeling of endothelial glycocalyx in response to fluid shear stress[J].PloS one,2014,9(1):e86249.

        [33]Yen W Y,Cai B,Zeng M,et al.Quantification of the endothelial surface glycocalyx on rat and mouse blood vessels[J].Microvascular research,2012,83(3):337-346.

        [34]Thomsen P,Roepstorff K,Stahlhut M,et al.Caveolae are highly immobile plasma membrane microdomains,which are not involved in constitutive endocytic trafficking[J].Molecular biology of the cell,2002,13(1):238-250.

        [35]Couchman J R.Transmembrane signaling proteoglycans[J].Annual review of cell and developmental biology,2010,26:89-114.

        [36]White C R,F(xiàn)rangos J A.The shear stress of it all:the cell membrane and mechanochemical transduction[J].Philosophical transactions of the Royal Society of London Series B,Biological sciences,2007,362(1484):1459-1467.

        [37]Chien S.Mechanotransduction and endothelial cell homeostasis:the wisdom of the cell[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2007,292(3):H1209-1224.

        [38]Zhang J,F(xiàn)riedman M H.Adaptive response of vascular endothelial cells to an acute increase in shear stress magnitude[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2012,302(4):H983-991.

        [39]Warboys C M,Eric berson R,Mann G E,et al.Acute and chronic exposure to shear stress have opposite effects on endothelial permeability to macromolecules[J].American journal of physiology Heart and circulatory physiology,2010,298(6):H1850-1856.

        [40]Yang B,Rizzo V.Shear Stress Activates eNOS at the Endothelial Apical Surface Throughβ1 Containing Integrins and Caveolae[J].Cellular and molecular bioengineering,2013,6(3):346-354.

        猜你喜歡
        細胞骨架肌動蛋白剪切力
        細胞骨架
        一種汽車發(fā)動機用橡膠減震器
        土槿皮乙酸對血管內(nèi)皮細胞遷移和細胞骨架的影響
        基于Fluent的不同彎道剪切力分布特性數(shù)值研究
        肌動蛋白結(jié)構(gòu)及生物學功能的研究進展
        “洋蔥細胞骨架的制作技術(shù)研究”一 文附圖
        生物學通報(2019年3期)2019-06-15 03:35:04
        水流剪切力對供水管道管壁生物膜生長的影響
        細胞骨架在ns脈沖誘導腫瘤細胞凋亡中的作用
        肌動蛋白清除系統(tǒng)與凝血—纖溶系統(tǒng)在子癇前期患者外周血中的變化
        主動免疫肌動蛋白樣蛋白7a蛋白引起小鼠睪丸曲細精管的損傷
        少妇中文字幕乱码亚洲影视| 久久久久国产一级毛片高清版A| 精品国产亚洲一区二区在线3d | 久久99精品久久久66| 日韩肥熟妇无码一区二区三区| 水蜜桃视频在线观看入口| 麻花传媒68xxx在线观看| 最新国产乱人伦偷精品免费网站| 伊人亚洲综合网色AV另类| 亚洲中文字幕一二区精品自拍 | 精品蜜桃av免费观看| 亚洲精品一区二区三区麻豆| 丰满熟女人妻中文字幕免费| 久久国产A√无码专区亚洲| 亚洲粉嫩av一区二区黑人| 亚洲国产色婷婷久久精品| 一本色道久久综合无码人妻| 国产美女白浆| 老熟女一区二区免费| 高清中文字幕一区二区三区| 久久久久亚洲av片无码| 中国内射xxxx6981少妇| 欧美亚州乳在线观看| 高清av一区二区三区在线| 爆操丝袜美女在线观看| 国产真实强被迫伦姧女在线观看 | 国产丰满老熟女重口对白| 日韩精品视频在线一二三| 漂亮丰满人妻被中出中文字幕| 18禁裸男晨勃露j毛网站| 国产午夜福利短视频| 亚洲精品中文字幕乱码二区| 色熟妇人妻久久中文字幕 | 久热综合在线亚洲精品| 国产在线欧美日韩精品一区二区| 久久婷婷色香五月综合激激情| 最近更新中文字幕一区二区| 最爽无遮挡行房视频| 欧美深夜福利网站在线观看| 在线观看免费的黄片小视频| 青青草大香蕉视频在线观看|