李 茜,呂 萍,薛 波,孫瀟輝,丁之恩
(安徽農(nóng)業(yè)大學茶與食品科技學院,安徽合肥230036)
石榴(Punica granatum L.)又名海榴、若榴等,為石榴科石榴屬落葉灌木或小喬木,具有降血糖、血脂和抗菌、抗腫瘤等功效[1-2]。石榴汁中含豐富的維生素和礦物質(zhì),如VA、VB1、VB2、VC、鈣、鐵、鉀、鋅等[3-4];石榴籽中主要含有棕櫚酸、硬脂酸、亞油酸、油酸、花生酸、山崳酸、石榴酸、α-桐酸等脂肪酸[5];果皮中富含黃酮類化合物。原花青素(Proanthocyanidins,PC)是從植物中分離得到,在酸性條件下經(jīng)醇加熱處理后能產(chǎn)生花色素的多酚類物質(zhì),包括單體和聚合體:單體包含黃烷-4-醇和黃烷-3,4-二醇;聚合體由黃烷-3-醇的單體結構單位聚合而成[6]。原花青素抗氧化活性極強,可清除人體自由基,降低毛細血管通透性,緩解心血管疾病,改善視覺功能,抗輻射,抗過敏,還具有皮膚保健及美容作用[7]。本實驗以懷遠石榴(薄皮糙品種)為原料,對其原花青素的提取工藝進行探討,并利用響應面法對提取參數(shù)進行優(yōu)化,為石榴的深度開發(fā)提供科學依據(jù)。
安徽懷遠涂山石榴(品種:薄皮糙) 安徽省懷遠縣涂山石榴專業(yè)合作社提供;原花青素標準品、甲醇、乙醇、丙酮、乙酸乙酯、乙腈、香草醛、濃硫酸、六偏磷酸鈉(SH)、HCl、NaOH 均為分析純。
ML204/02 精密電子天平 梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;KQ-250DE 型數(shù)控超聲波清洗器 昆山市超聲儀器有限公司;GZX-9146 MBE 數(shù)顯鼓風干燥箱 上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設備廠;UV-1800 紫外可見分光光度計 上海美諾達儀器有限公司;DL-5-B 飛鴿離心機 上海安亭科學儀器廠;RV10 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 廣州儀科實驗室技術有限公司;DK-S24 型電熱恒溫水浴鍋 上海精宏實驗設備有限公司;SHA-B 雙功能水浴恒溫振蕩器 金壇市杰瑞爾電器有限公司;FDU-2100 真空冷凍干燥機 上海愛朗儀器有限公司。
1.2.1 標準曲線的建立[8]配制0.1mg/mL 原花色素標準溶液,分別吸取0.0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0mL 置于6 個10mL 容量瓶中,各加入乙醇溶液定容至10mL,各取1mL 于6 支試管中,分別加入2.5mL 3%香草醛乙醇溶液和2.5mL 30%硫酸乙醇溶液,搖勻后于30℃水浴保溫20min,然后在500nm 處測定吸光度,繪制標準曲線。
1.2.2 石榴籽原花青素的提?。?]將洗凈的石榴籽置于40℃烘箱內(nèi)干燥72h,取出粉碎,過40 目篩。精確稱取1.0g 石榴籽干粉于50mL 錐形瓶中,按要求加入一定量溶劑提取一段時間,離心,得到原花青素類物質(zhì)提取液。
1.2.3 石榴籽原花青素得率的測定[10]采用香草醛-硫酸法測定樣品中原花青素含量。取樣品溶液1mL 按標線制作方法操作,于500nm 處測定吸光度,根據(jù)原花青素標準工作曲線計算出樣品中原花青素含量,并按下式計算出原花青素得率。
得率(%)= 樣品中原花青素含量/樣品質(zhì)量×100
1.2.4 單因素實驗 根據(jù)參考文獻,考察提取溶劑的種類、提取溶劑濃度、pH、料液比、提取時間、提取功率對原花青素提取效果的影響。
1.2.4.1 提取溶劑的選擇[11-12]準確稱取1.0g 石榴籽干粉,選用pH4.5 的50%不同溶劑(丙酮、甲醇、乙醇、乙酸乙酯、乙腈),在料液比1 ∶30,超聲波功率150W 條件下浸提70min,離心,測定提取液吸光度,根據(jù)原花青素標準曲線計算出樣品中原花青素含量,從而換算出原花青素得率,以得率為考察指標,確定較佳的提取溶劑。重復3 次,取平均值。
1.2.4.2 提取溶劑濃度的確定 準確稱取1.0g 石榴籽干粉,其他條件保持不變,考察不同乙醇溶液濃度對原花青素得率的影響,重復3 次,取平均值。
1.2.4.3 pH 的確定 準確稱取1.0g 石榴籽干粉,選用50%乙醇溶液進行提取,其他條件保持不變,考察不同pH 對原花青素得率的影響,重復3 次,取平均值。
1.2.4.4 料液比的確定 準確稱取1.0g 石榴籽干粉,選用50%乙醇溶液在pH5.0 條件下進行提取,其他條件保持不變,考察不同料液比對原花青素得率的影響,重復3 次,取平均值。
1.2.4.5 提取時間的確定 準確稱取1.0g 石榴籽干粉,選用50%乙醇溶液在pH5.0,料液比1∶30 條件下進行提取,其他條件保持不變,考察不同提取時間對原花青素得率的影響,重復3 次,取平均值。
1.2.4.6 提取功率的確定 準確稱取1.0g 石榴籽干粉,選用50%乙醇溶液在pH5.0,料液比1∶30 條件下提取70min,考察不同提取功率對原花青素得率的影響,重復3 次,取平均值。
1.2.5 響應面實驗設計[13]響應面實驗設計因素與水平見表1。
表1 響應面實驗設計表Table 1 Factors and the level of response surface analysis
以原花青素濃度為橫坐標,吸光度為縱坐標,得回歸方程:y = 3.55x + 0.0011,R2= 0.9995。結果表明,測定在0~0.2mg/mL 范圍內(nèi)線性良好。
圖1 原花青素標準曲線Fig.1 The standard curve of proanthocyanidins
2.2.1 提取溶劑的選擇 原花青素含有羥基,易發(fā)生氫鍵締合作用,因此要求提取溶劑不僅對其具有良好的溶解性,而且具有氫鍵斷裂作用[6]。由圖2 可知,丙酮提取效果最好,但溶劑殘留不易除盡,對人體有一定毒害,不適合在食品、藥品和化妝品中使用。而乙醇來源豐富,價格低廉,能有效提取原花青素且提取液易于保存、回收,安全性也較高,因此選用乙醇作為提取溶劑。
圖2 不同溶劑對原花青素提取效果的影響Fig.2 The impact of proanthocyanidins extracted effect with different solvents
2.2.2 提取溶劑濃度的確定 由圖3 可知,原花青素得率隨乙醇濃度變化先升后降??赡苡捎谠ㄇ嗨卦谥参矬w內(nèi)常與蛋白質(zhì)、多糖以氫鍵和疏水鍵的形式形成穩(wěn)定的復合物,水可以提高原花青素的溶解度,而有機溶劑能促進氫鍵斷裂,使其變成小分子物質(zhì),易于游離到胞外,從而萃取到溶劑中[6]。隨著乙醇濃度的增加,水溶解帶出的原花青素濃度逐漸達到飽和。當水溶解帶出的分子與乙醇斷開氫鍵形成的分子數(shù)達到平衡時得率最高。繼續(xù)增大乙醇濃度,一些醇溶性雜質(zhì)和親脂性強的成分溶出增加,與原花青素競爭同乙醇-水分子結合,導致提取得率下降[14]。提取液體積分數(shù)的增大使原花青素氧化速率加快也是得率下降的原因之一。故而選擇濃度為50%的乙醇溶液進行提取。
圖3 乙醇濃度對原花青素得率的影響Fig.3 The impact of procyanidins yield with different ethanol concentration
2.2.3 pH 的確定 從圖4 可知,加入少量酸可以打開以氫鍵和疏水鍵與蛋白質(zhì)、多糖以及本身相連的原花青素和以共價鍵與植物組織分子相連的多酚,形成更多的游離多酚和原花青素,酸還可以抑制酚類物質(zhì)與金屬離子發(fā)生的沉淀反應,從而提高多酚的得率。但是pH 過小,多酚的溶解性能反而減小,降低得率,可能由于原花青素含有多個羥基,一般呈弱酸性,易溶于堿性溶液中,酸度過低降低其溶解性。pH 過高,可能發(fā)生酸堿中和反應破壞原花青素的結構,導致得率下降。故選擇pH 為5.0。
圖4 pH 對原花青素得率的影響Fig.4 The impact of procyanidins yield with different pH
2.2.4 料液比的確定 根據(jù)圖5 可以看出,當料液比小于1∶30 后,隨溶劑用量增大,得率開始下降。因為料液比達一定程度時,有效成分基本完全析出,此時繼續(xù)增大料液比,會使更多雜質(zhì)溶出,而且增加了生產(chǎn)成本[15]。因此選擇料液比為1∶30。
2.2.5 提取時間的確定 由圖6 可知,在一定時間范圍內(nèi),原花青素的得率隨著提取時間的延長而增加,原因是原花青素沒有完全提出。70min 得率達到最大。70min 以后,大部分原花青素被浸提出來,原花青素的氧化處于主導地位,發(fā)生自身氧化還原反應,而且原花青素遭到超聲波破壞,得率下降[16-17]。故選擇提取時間為70min。
圖5 料液比對原花青素得率的影響Fig.5 The impact of procyanidins yield with different solid-liquid ratio
圖6 提取時間對原花青素得率的影響Fig.6 The impact of procyanidins yield with different extraction time
2.2.6 提取功率的確定 根據(jù)圖7 可知,在一定功率下,超聲波產(chǎn)生的強烈振動、高加速度、強烈的空化效應和攪拌等特殊作用,可以使植物的細胞壁破壞,溶劑滲透到細胞,令原花青素溶于其中,從而提高提取效率。功率過大,細胞中其他物質(zhì)溶出率也提高,這些物質(zhì)與原花青素競爭同乙醇-水分子結合,而且,高功率的超聲波放出大量的熱,破壞原花青素的結構,導致原花青素得率下降[18]。因此選擇125W作為提取功率。
圖7 提取功率對原花青素得率的影響Fig.7 The impact of procyanidins yield with different extraction power
2.3.1 響應面實驗設計及結果 采用Design-Expert V8.0.6 軟件對實驗數(shù)據(jù)進行回歸分析,可以求出影響各因素一次效應、二次效應及其交互效應的關聯(lián)方程,對超聲波輔助提取石榴籽原花青素的影響因素進行條件優(yōu)化,并作出響應面圖。多元回歸擬合分析得到的得率與各因素變量間的二次方程模型為:
表2 響應面分析實驗設計及結果Table 2 Experimental design for response surface analysis and corresponding experimental data
根據(jù)表3 可知,用上述回歸方程描述各因素與響應值間的關系時,因變量與各自變量間的線性關系顯著,模型的顯著水平小于0.05,回歸方程模型極顯著,且方程失擬項不顯著,表明該方程對實驗的擬合情況好。模型的校正決定系數(shù)為0.9904,說明該模型能解釋99.04%響應值的變化,僅有約0.96%不能用該模型解釋。信噪比為43.573,遠大于4,說明可信度很高。相關系數(shù)為0.9952,說明該模型擬合程度良好,預測值和真實值之間有較好的相關性,實驗誤差小,因此可用此回歸方程對實驗結果進行分析預測[19-20]。由F 值可以得到各因素對得率影響從大到小的順序依次為:料液比(X3)、pH(X2)、乙醇濃度(X4)、功率(X1)。
圖8~圖12 是從實驗得到的回歸優(yōu)化響應面圖,從圖中可看出各因素在提取過程中的交互作用,由于X1X3交互作用不顯著,故不再列出。響應面圖的曲面越陡,交互作用越顯著,反之越不顯著。等高線的形狀也可反映交互效應的強弱,橢圓形表示交互作用顯著,圓形則與之相反[21]。比較圖8~圖12 可知,料液比(X3)曲線相對較陡,因此對原花青素得率的影響最顯著;而功率(X1)曲線較為平滑,響應值變化隨其數(shù)值的變化較小,因此對原花青素得率影響較小。pH(X2)和料液比(X3)的交互作用最顯著,表現(xiàn)為等高線形狀為橢圓形。
圖8 功率、pH 及其相互作用對原花青素得率影響的響應面Fig.8 Response surface showing the effects of power and pH on extraction yield of PC
圖9 功率、濃度及其相互作用對原花青素得率影響的響應面Fig.9 Response surface showing the effects of power and concentration on extraction yield of PC
圖10 pH、料液比及其相互作用對原花青素得率影響的響應面Fig.10 Response surface showing the effects of pH and solid-liquid ratio on extraction yield of PC
表3 方差分析Table 3 Analysis of variance
圖11 pH、濃度及其相互作用對原花青素得率影響的響應面Fig.11 Response surface showing the effects of pH and concentration on extraction yield of PC
圖12 料液比、濃度及其相互作用對原花青素得率影響的響應面Fig.12 Response surface showing the effects of solid-liquid ratio and concentration on extraction yield of PC
2.3.2 驗證實驗 根據(jù)模型可預測提取的最優(yōu)工藝條件為:功率124.06W,pH4.89,料液比1∶33.38,濃度50.88%,在此條件下,原花青素得率理論值可達4.41%。
為檢驗實驗結果是否與真實情況一致,進行近似驗證實驗??紤]實際操作條件,將最佳工藝條件定為:功率125W,pH5.0,料液比1∶33,濃度51%,進行3 次平行實驗,原花青素得率為4.40%,與理論值相比,相對誤差約為0.23%,且重復性較好,證明結果可靠。
采用超聲輔助提取石榴籽中原花青素,通過單因素實驗和響應面實驗設計對提取工藝條件進行優(yōu)化,得到較優(yōu)工藝條件為:功率125W,pH5.0,料液比1∶33,濃度51%,在此條件下,石榴籽原花青素得率為4.40%。
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