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        等位基因特異性PCR及MLPA檢測(cè)CMT患者PMP22突變基因的結(jié)果比較

        2013-08-05 01:27:30曹秉振
        山東醫(yī)藥 2013年4期
        關(guān)鍵詞:肌萎縮變性等位基因

        史 磊,曹秉振

        (遼寧醫(yī)學(xué)院濟(jì)南軍區(qū)總醫(yī)院研究生培養(yǎng)基地,濟(jì)南250031)

        腓骨肌萎縮癥即 Charcot-Marie-Tooth病(CMT),是一組由不同致病基因引起的臨床表型基本相似的周?chē)窠?jīng)單基因遺傳病,其主要特征為慢性進(jìn)行性加重的肢體遠(yuǎn)端無(wú)力、肌萎縮和感覺(jué)損害[1]。CMT的遺傳方式主要為常染色體顯性遺傳(AD),也可見(jiàn)常染色體隱性遺傳(AR)及X連鎖顯性或隱性遺傳(XD或XR)。最常見(jiàn)的類型為CMT1型,其中50% ~70%的CMT1患者及90%的散發(fā)病例為CMT1A型[2],多由17號(hào)染色體短臂11.2區(qū)(17p11.2)包含周?chē)枨实鞍譖MP22基因在內(nèi)的1.5 Mb的正向串聯(lián)重復(fù)突變所致。目前,有效檢測(cè)短片段重復(fù)突變的實(shí)驗(yàn)方法主要有實(shí)時(shí)熒光定量PCR、等位基因特異性PCR-雙酶切、短串聯(lián)重復(fù)序列分析(STR)、多重連接探針擴(kuò)增技術(shù)(MLPA)等。等位基因特異性PCR具有操作簡(jiǎn)便,對(duì)操作條件要求較低等優(yōu)點(diǎn),但其靈敏度與可靠性有待進(jìn)一步驗(yàn)證,且人為因素影響較大。MLPA技術(shù)是近年發(fā)展起來(lái)的一項(xiàng)新的基因定量技術(shù),可同時(shí)對(duì)多基因多外顯子進(jìn)行重復(fù)、缺失及定量分析,且已開(kāi)發(fā)出特異的CMT1型試劑盒,操作方便,靈敏度高。我們于2012年3~8月進(jìn)行本研究,初步探討等位基因特異性PCR及MLPA兩種方法對(duì)PMP22基因重復(fù)突變檢測(cè)的一致性。

        1 資料與方法

        1.1 臨床資料 CMT患者6例,均來(lái)源于近2年來(lái)就診于濟(jì)南軍區(qū)總醫(yī)院神經(jīng)內(nèi)科的散發(fā)病例,所有病例診斷均符合Harding于1980年制定的診斷標(biāo)準(zhǔn)[3]。正常對(duì)照為健康成人6例,均無(wú)肢體無(wú)力、肌萎縮及遺傳病家族史。所有受試者征得本人知情同意。

        1.2 方法

        1.2.1 標(biāo)本的采集與處理 抽取患者及健康對(duì)照外周靜脈血3~5 mL,用EDTA抗凝,Promega試劑盒提取全血標(biāo)本基因組DNA。

        1.2.2 等位基因特異PCR引物設(shè)計(jì)與合成 在PMP22基因重復(fù)片段遠(yuǎn)端和近端CMT1A-REP區(qū)域內(nèi)設(shè)計(jì)兩對(duì)引物,分別為 F1、R1、F2、R2,引物 F1與R1、F2與R2可擴(kuò)增出患者與正常人均有的遠(yuǎn)端和近端正常存在的2片段,而F1與R2可擴(kuò)增出特異性重復(fù)連接片段[4],引物序列見(jiàn)表1,由上海生工生物工程有限公司合成。

        表1 PMP22等位基因特異PCR引物序列表

        1.2.3 PCR反應(yīng)及條件 反應(yīng)體系:總體積25 μL,其中 dNTP Mixture(2 mmol/L)2.5 μL,10 ×PCR buffer 2.5 μL,TaqDNA 聚合酶 0.125 U,基因組DNA 1 μL,上下游引物(5 μmol/L)各 2.5 μL,三蒸水13.875 μL。反應(yīng)條件為在 GeneAmp PCR system 2400熱循環(huán)儀上94℃預(yù)變性5 min,然后94℃變性30 s,56 ℃ 退火 1 min,72 ℃ 延伸 3 min,25 次循環(huán),最后72℃延伸5 min,4℃保存。反應(yīng)完成后取5 μL PCR 產(chǎn)物與1 μL 溴乙錠混合,0.8%瓊脂糖凝膠電泳(加核酸染色液)檢測(cè)產(chǎn)物。

        1.2.4 MLPA檢測(cè) MLPA檢測(cè)試劑盒 SALSA P033購(gòu)自MRC-Holland,具體操作過(guò)程如下:①DNA定量及變性:取基因組DNA 1 μL,加TE稀釋至5 μL,在熱循環(huán)儀上98℃變性5 min后冷卻至25℃。SALSA MLPA 探針雜交:分別加入 1.5 μL P033 探針混合物及1.5 μL MLPA buffer,小心混勻后 95 ℃變性1 min,60℃下雜交16~20 h。②連接及擴(kuò)增:雜交后在54℃下加入連接混合物(25 μL三蒸水、3 μL連接緩沖液 A、3 μL 連接緩沖液 B、1 μL 連接酶)孵育15 min,然后98℃加熱5 min以滅活連接酶,待溫度降至20℃后,加入PCR反應(yīng)混合物(7.5 μL 三蒸水、2 μL SALSA PCR 引物混合物、0.5 μL SALSA聚合酶),PCR反應(yīng)條件為95℃變性30 s,60℃退火30 s,72℃延伸60 s,循環(huán)35次,72℃延伸20 min。③毛細(xì)管凝膠電泳檢測(cè):取0.7 μL PCR反應(yīng)產(chǎn)物加入0.2 μL LIZ-500標(biāo)記物及9 μL甲酰胺(LIZ-500及甲酰胺均為美國(guó)ABI公司生產(chǎn)),80℃變性2 min后立即置冰架上冷卻,最后用毛細(xì)管凝膠電泳檢測(cè)(在ABI3130基因測(cè)序儀上進(jìn)行),程序結(jié)束后導(dǎo)出數(shù)據(jù),結(jié)果用Coffalyser軟件分析。

        2 結(jié)果

        2.1 等位基因特異性PCR產(chǎn)物檢測(cè)結(jié)果 6例患者及6例健康對(duì)照均出現(xiàn)F1與R1、F2與R2引物擴(kuò)增出來(lái)的正常條帶,均未出現(xiàn)F1與R2擴(kuò)增的特異性短片段重復(fù)的異常條帶。

        2.2 MLPA檢測(cè)分析 根據(jù)Coffalyser軟件說(shuō)明,將各目的片段的峰面積除以全部?jī)?nèi)參照峰面積之和,所得該目的片段的峰面積比值,再將此峰面積比值除以相對(duì)應(yīng)的正常外對(duì)照峰面積,所得比值即為拷貝數(shù)比值,從而可計(jì)算出目的片段的拷貝數(shù)。正常人該比值波動(dòng)在0.7 ~1.3,1.7 ~2.3 為重復(fù)性患者[5]。運(yùn)行軟件分析得出:6例患者及6例健康對(duì)照的PMP22基因全部在0.7~1.3,表明所有被檢測(cè)患者及對(duì)照的PMP22基因均未出現(xiàn)重復(fù)突變。

        3 討論

        CMT是一組臨床較多見(jiàn)的周?chē)窠?jīng)單基因遺傳病,最常見(jiàn)的是17號(hào)染色體短臂11.2區(qū)(17p11.2)正向串聯(lián)重復(fù)突變所導(dǎo)致的CMT1A型,此外還有40個(gè)其他不同的致病基因被定位[6],這些基因可導(dǎo)致CMT2(軸突型)、CMT3、CMT4、CMTX、CMTDI等類型,所有類型的CMT患者的臨床表型基本相似。目前,該病的診斷主要依靠家族史、臨床表現(xiàn)、神經(jīng)電生理及周?chē)窠?jīng)活檢,致病基因的檢測(cè)應(yīng)用較少,但其可以更進(jìn)一步確診并明確該病的亞型,為臨床診斷提供更準(zhǔn)確的依據(jù)。根據(jù)國(guó)內(nèi)外文獻(xiàn)的報(bào)道,PMP22基因重復(fù)突變所致CMT的患病率最高,所以本研究我們主要檢測(cè)了臨床搜集的CMT患者PMP22基因是否存在短片段重復(fù)突變。

        等位基因特異性PCR是直接對(duì)PMP22基因交換熱點(diǎn)區(qū)設(shè)計(jì)引物擴(kuò)增出特異性連接片段,再經(jīng)限制性酶切來(lái)驗(yàn)證產(chǎn)物。Kon-Ping Lin等根據(jù)已被共識(shí)的近端和遠(yuǎn)端CMT1A-REP序列設(shè)計(jì)出了PMP22等位基因特異性引物,共有4種擴(kuò)增方式,擴(kuò)增產(chǎn)物可進(jìn)一步被EcoRI和NsiI兩種酶驗(yàn)證[7],由于我們的樣本均未擴(kuò)增出異常的片段條帶,故無(wú)需用兩種酶進(jìn)行驗(yàn)證。該方法的應(yīng)用現(xiàn)已比較成熟,其優(yōu)點(diǎn)是簡(jiǎn)便易行,對(duì)操作條件及成本要求較低,但其靈敏度和準(zhǔn)確性仍需進(jìn)一步驗(yàn)證,因此可作為臨床上基因篩查的第一步。而新技術(shù)MLPA-CMT1A試劑盒的探針基本覆蓋了PMP22基因外顯子的所有熱點(diǎn)區(qū)域,且能同時(shí)檢測(cè)基因的重復(fù)與缺失,敏感度及準(zhǔn)確度較等位基因特異性PCR更高,且MLPA與熒光定量PCR、STR等方法相比也具有一定的優(yōu)勢(shì):①可同時(shí)檢測(cè)多基因多外顯子的重復(fù)或缺失,②對(duì)DNA模板定量及純度要求較低。當(dāng)然,MLPA也有自身的缺點(diǎn)和限制,比如價(jià)格稍昂貴、對(duì)實(shí)驗(yàn)室的配置條件要求較高等。因此,兩種方法對(duì)特異性短片段重復(fù)突變的檢測(cè)都具有不可替代的作用和意義。在臨床患者初篩或基礎(chǔ)設(shè)施比較簡(jiǎn)單的實(shí)驗(yàn)室條件下,可以先采用等位基因特異性PCR進(jìn)行檢測(cè),對(duì)可疑陽(yáng)性患者再進(jìn)一步選擇靈敏度和準(zhǔn)確度更高的ML-PA確定診斷。

        本研究中對(duì)同一樣本同時(shí)應(yīng)用了這兩種方法,目的是檢測(cè)兩種方法對(duì)于PMP22基因突變檢查的一致性,指導(dǎo)臨床建立基因篩查的程序。研究結(jié)果顯示,在6例CMT患者和6例正常對(duì)照中,兩種檢查手段都得出了陰性結(jié)果,提示兩種方法在檢測(cè)結(jié)果上的一致性。但由于本研究樣本數(shù)量較小,且缺少真正的短片段重復(fù)突變陽(yáng)性結(jié)果,使得結(jié)論的說(shuō)服性比較局限,故仍需擴(kuò)大樣本量以進(jìn)一步證實(shí)。另外CMT涉及致病基因很多,其臨床表型和基因類型缺乏一致性,陰性結(jié)果并不排除患者存在其他的基因異常,因此仍需要進(jìn)一步基因檢查以明確致病基因。

        [1]Berger P,Young P,Suter U.Molecular cell biology of Charcot-Marie-Tooth disease[J].Neurogenetics,2002,4(1):1-15.

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        [5]林齊防,陳萬(wàn)金,王檸,吳志英,等.應(yīng)用多重連接依賴性探針擴(kuò)增定量技術(shù)檢測(cè)假肥大型肌營(yíng)養(yǎng)不良重復(fù)突變及攜帶狀態(tài)[J].中華神經(jīng)科雜志,2011,44(10):568-573.

        [6]張如旭,郭鵬,任志軍,等.LITAF、RAB7、LMNA 和 MTMR2 基因在中國(guó)人腓骨肌萎縮癥患者的突變分析[J].遺傳,2010,32(8):818.

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