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        表達(dá)在HEK293細(xì)胞上的BKCa通道基本特性與動力學(xué)調(diào)控研究*

        2013-03-04 00:39:20譚曉秋程秀麗曾曉榮曹濟(jì)民
        重慶醫(yī)學(xué) 2013年15期
        關(guān)鍵詞:研究

        譚曉秋,程 俊,程秀麗,李 暢,毛 亮,曾曉榮,曹濟(jì)民,楊 艷△

        (1.瀘州醫(yī)學(xué)院醫(yī)學(xué)電生理省部共建教育部重點實驗室,四川瀘州646000;2.中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院/北京協(xié)和醫(yī)學(xué)院基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所,北京100005)

        大電導(dǎo)鈣激活鉀通道(large-conductance calcium-activated potassium channels,BKCa)是血管平滑肌重要的鉀離子通道之一,攜帶了70%~80%的外向電流,在調(diào)節(jié)血管張力、血流量和血壓活動中起重要作用。了解作為調(diào)節(jié)血管張力的靶點及內(nèi)源性活性物質(zhì)配體的BKCa通道的特性,對于深入研究通道調(diào)控機制及臨床治療藥物篩選等有重要意義[1-4]。BKCa通道受細(xì)胞內(nèi)Ca2+濃度和膜電位二者的調(diào)節(jié)[5]。當(dāng)肌緊張性增高時,Ca2+內(nèi)流激活肌漿網(wǎng)釋放細(xì)胞內(nèi)鈣,再加上膜的去極化共同激活BKCa通道,使K+外流,膜電位向超極化方向變化而使血管舒張,從而對抗張力增高引起的去極化及收縮作用,使細(xì)胞恢復(fù)到下一次興奮前的備用狀態(tài)。BKCa通道就是通過環(huán)形負(fù)反饋機制來控制平滑肌細(xì)胞肌源性張力和靜息膜電位去極化的程度。而BKCa通道的高電導(dǎo)性及在平滑肌細(xì)胞上的高密度表達(dá)決定了它對血管張力的調(diào)節(jié)尤顯重要[6-9]。目前對于BKCa通道的研究更是深入基因和分析水平,而離子通道藥物作用的動力學(xué)調(diào)控更是研究的熱點之一[4,6]。但是天然細(xì)胞由于通道不單一、表達(dá)密度不確定等特點,在研究動力學(xué)調(diào)控方面,異源表達(dá)越來越受人們青睞。本研究以HEK293細(xì)胞系為載體,構(gòu)建穩(wěn)定表達(dá)人BKCa通道細(xì)胞系,研究其基本電生理學(xué)特征和建立動力學(xué)調(diào)控模型,為進(jìn)一步廣泛深入的研究藥物動力學(xué)作用機制奠定基礎(chǔ)。

        1 材料與方法

        1.1 材料 含有人血管平滑肌BKCa通道α亞單位的表達(dá)質(zhì)粒pcDNA3.1-BKα由丹麥NeuroSearch公司Philip K.Ahring教授饋贈,β1亞單位的表達(dá)質(zhì)粒pIRES-β1由本實驗室構(gòu)建。改良Eagle高糖培養(yǎng)基(DMEM)購自Invitrogen公司。

        1.2 方法

        1.2.1 HEK293細(xì)胞培養(yǎng)及轉(zhuǎn)染和篩選 HEK293細(xì)胞使用DMEM高糖培養(yǎng)基(含10%FBS)在5%CO2的培養(yǎng)箱中進(jìn)行培養(yǎng)和傳代。細(xì)胞密度80%左右使用脂質(zhì)體(lipofectamine 2000,Invitrogen)轉(zhuǎn)染法,將4μg的質(zhì)粒轉(zhuǎn)染到3.5mm的培養(yǎng)皿中。使用0.8mg/mL G418進(jìn)行篩選,得到穩(wěn)定表達(dá)pcDNA3.1-BKα和(或)β1的 HEK293細(xì)胞系用于進(jìn)一步實驗。

        1.2.2 全細(xì)胞膜片鉗實驗 選取電極阻抗3~5mΩ進(jìn)行。浴液為:NaCl 137.00mmol/L,KCl 5.90mmol/L,MgCl21.20 mmol/L,CaCl21.8mmol/L,葡萄糖 14.00mmol/L,4-羥乙基哌嗪乙磺酸(HEPES)10.00mmol/L(pH 7.4);電極液:KCl 128.00mmol/L,NaCl 12.00mmol/L,MgCl24.00mmol/L,HEPES 10.00mmol/L,乙二醇-雙-(2-氨基乙醚)四乙酸(EGTA)0.05mmol/L(pH 7.2)。鉗制電位為-80mV,刺激方案包括階躍刺激方案:-80mV~+90mV,時程400ms。

        1.2.3 單通道膜片鉗實驗 本實驗采用的單通道膜片鉗記錄方式包括細(xì)胞貼附式、內(nèi)面向外式和外面向外式,浴液和電極液使用對稱性高鉀溶液,電極阻抗12~15mΩ。電極液和浴液根據(jù)細(xì)胞膜的方式選擇,保持細(xì)胞內(nèi)液:天門冬氨酸鉀(KAsp)100.00mmol/L,KCl 40.00mmol/L,HEPES 10.00/L mmol(pH 7.2),EGTA 1.00mmol/L;細(xì) 胞 外 液:K-Asp 40.00mmol/L,KCl 100.00mmol/L,HEPES-K 10.00mmol/L (pH 7.4),EGTA 2.00mmol/L。

        1.2.4 內(nèi)面向外式宏觀電流(macro-insideout)檢測 選擇離子通道表達(dá)密度較高的細(xì)胞,使用電極阻抗為3~5mΩ,形成內(nèi)面向外式膜片,使用宏觀電流記錄方案,觀察局部膜片電流,研究其動力學(xué)調(diào)控。電極液:K-Asp 40.00mmol/L,KCl 100.00mmol/L,HEPES 10.00mmol/L (pH 7.2),EGTA 2.00mmol/L;浴液:K-Asp 100.00mmol/L,KCl 40.00mmol/L,HEPES 10.00mmol/L (pH 7.4),EGTA 1.00mmol/L。

        1.3 統(tǒng)計學(xué)處理 采用SPSS14.0統(tǒng)計學(xué)軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,數(shù)據(jù)采用Clampfit10.1進(jìn)行處理。計量資料采用±s表示,以P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

        2 結(jié) 果

        2.1 HEK293細(xì)胞上BKCa的基本電生理學(xué)特性 轉(zhuǎn)染在HEK293細(xì)胞系的BKCa電流基本電生理學(xué)特性,全細(xì)胞構(gòu)型下,轉(zhuǎn)染BKCa通道α亞單位的HEK293細(xì)胞能夠記錄到一較大外向電流,I-V曲線呈現(xiàn)外向整流特性,能夠被BKCa特異性阻斷劑IbTX(200nmol/L)所阻斷(圖1),表明所記錄到的外向電流主要為BKCa所攜帶。在單通道構(gòu)型下,細(xì)胞貼附式和內(nèi)面向外式均能記錄到電流幅度隨著電壓增加而增大的單通道電流,開放概率呈現(xiàn)明顯的電壓依賴性。在cell-attached和inside-out構(gòu)型下,BKCa通道具有明顯的電壓依賴性(圖2);cell-attached和inside-out BKCa單通道斜率電導(dǎo)分別為(212.64±4.86)pS(n=12)和(216.38±3.55)pS(n=10),二者之間差異無統(tǒng)計學(xué)意義(圖3);在inside-out構(gòu)型下(+40mV膜電位)BKCa通道鈣離子依賴性的典型電流記錄圖,見圖4;BKCa通道IbTX敏感性,在outside-out構(gòu)型下,BKCa通道能夠被200nmol/L IbTX阻斷(圖5)。在外面向外式膜片構(gòu)型下,200nmol/L IbTX幾乎完全阻斷該單通道電流,進(jìn)一步證明該電流為BKCa電流。同時,通過圖3的I-V曲線可以看,I-V曲線通過0點,反轉(zhuǎn)電位為0mV,這與對稱性高鉀時的平衡電位一致,表明為鉀離子選擇性電流。

        圖1 表達(dá)在HEK 293細(xì)胞系上的BK通道全細(xì)胞電流

        圖2 BKCa通道電壓依賴性電流圖

        圖3 BKCa單通道斜率電導(dǎo)比較電流圖

        圖4 BKCa通道鈣離子依賴性的典型電流圖

        圖5 BKCa通道被bTX阻斷電流圖

        2.2 HEK293細(xì)胞上BKCa動力學(xué)調(diào)控模型研究 本研究采用兩種方式研究BKCa動力學(xué)調(diào)控模型(圖6),一種為內(nèi)面向外式單通道膜片鉗,一種為內(nèi)面向外式宏觀電流(圖6A)。在內(nèi)面向外式單通道下,共轉(zhuǎn)染BKCa通道α和(或)β1亞單位發(fā)現(xiàn),β1的表達(dá)一方面增加了通道的開放該概率,另一方面可以明顯增加通道的開放時程(即平均開放時間,見圖6A彩色)。通過增加通道表達(dá)密度,使用內(nèi)面向外式宏觀電流記錄方式研究通道電壓依賴性、Ca2+敏感性和通道動力學(xué)。在內(nèi)外向外式宏觀電流記錄中可以分析通道從關(guān)閉向開放(C→O)和開放向關(guān)閉(O→C)之間轉(zhuǎn)變的動力學(xué)特征(圖6B)。從-80mV去極化到+150mV通道完全開放,通過擬合得到時間常數(shù)為Tau=1.76ms,而當(dāng)通道由+150mV超極化到-80mV時,通道關(guān)閉。在此過程中產(chǎn)生尾電流,可以反映通道從開放向關(guān)閉轉(zhuǎn)換的過程,通過擬合得到本例的時間常數(shù)Tau=0.27ms。通過在階躍(step)刺激方案得到的內(nèi)面向外式宏觀電流(圖6C),隨著去極化電壓的增加,電流幅度增加。計算得到不同電壓下的電導(dǎo)值(G),以G/Gmax-Vm作圖,曲線經(jīng)Boltzmann方程擬合,得到通道的半數(shù)最大激活電壓(V1/2),本實驗在細(xì)胞內(nèi)游離鈣濃度([Ca2+]free)為 0.01μmol/L 的是 V1/2為(86.0±9.9)mV,見圖6D。

        圖6 表達(dá)在HEK293細(xì)胞系上的BKCa通道動力學(xué)特性

        3 討 論

        3.1 BKCa通道在HEK293細(xì)胞中的表達(dá) 作為血管平滑肌細(xì)胞膜上表達(dá)最為豐富的BKCa通道,一直以來是從事血管活動調(diào)控研究的熱點和重點。BKCa通道是很多臨床降血壓藥物中的作用靶點之一,包括一些常見的活血化淤中藥也可以通過激活該通道而發(fā)揮調(diào)控血壓的作用[10-13]。隨著研究的深入,僅僅利用急性酶分離的細(xì)胞從事BKCa通道調(diào)控研究是遠(yuǎn)遠(yuǎn)不夠的,尤其是血管平滑肌細(xì)胞培養(yǎng)之后常常發(fā)生表型的改變,BKCa通道的表達(dá)和功能也發(fā)生變化。因此,將通道克隆到工具細(xì)胞進(jìn)行研究是常見的研究方法之一。尤其是一些針對BKCa通道功能結(jié)構(gòu)域和位點突變以及動力學(xué)研究。本實驗通過構(gòu)建和篩選穩(wěn)定的單克隆細(xì)胞株并通過電生理學(xué)和分子生物學(xué)的方法進(jìn)行鑒定。表達(dá)在HEK293細(xì)胞上BKCa通道電生理學(xué)特性與文獻(xiàn)和本研究報道的急性酶分離天然細(xì)胞是一致的,主要包括大電導(dǎo)特性[本實驗內(nèi)面向外式構(gòu)型下的電導(dǎo)值為(216.38±3.55)pS]、電壓依賴性、Ca2+敏感性和IbTX敏感性。通過多種技術(shù)和手段證明本實驗構(gòu)建的細(xì)胞株能夠很好的用于BKCa通道功能調(diào)控研究。

        3.2 BKCa通道動力學(xué)調(diào)控 目前,對于BKCa通道的功能調(diào)控研究已比較的深入,但是從文獻(xiàn)報道看不同藥物表現(xiàn)出不同的作用特點,主要表現(xiàn)在動力學(xué)的差異[12]。所謂的通道動力學(xué)主要是指通道開放和關(guān)閉狀態(tài)相互轉(zhuǎn)變過程中的機制。這是一個非常復(fù)雜的過程。膜片鉗技術(shù)是研究離子通道動力學(xué)調(diào)控的最有效的技術(shù),一方面可以通過單通道記錄技術(shù)研究某一單個的離子通道的開放和關(guān)閉的動力學(xué)特點(圖6A),另一方面也可通過全細(xì)胞記錄研究整個細(xì)胞的離子通道宏觀動力學(xué),二者互為補充。BKCa通道由α和β1亞單位組成,β1亞單位是通道發(fā)揮正常功能的組成部分,研究表明β1亞單位的功能異常與高血壓的發(fā)生存在密切關(guān)系[14-15]。本課題前期研究提示,在高血壓患者存在β1亞單位水平的下調(diào)[16]。本研究通過共表達(dá)α和β1亞單位可以看出,β1亞單位通過增加通道的開放時程而使通道的開放增加。另外,由于很多物質(zhì)對BKCa通道的作用位點是在細(xì)胞內(nèi)(如Ca2+),因此單通道記錄上多采用內(nèi)面向外式膜片鉗。由于傳統(tǒng)全細(xì)胞膜片鉗技術(shù)胞內(nèi)換液非常困難而且穩(wěn)定性較差,因而全細(xì)胞膜片鉗在研究BKCa通道胞內(nèi)作用物質(zhì)動力學(xué)機制上表現(xiàn)出一定的不足之處。本實驗通過增加BKCa通道在HEK293細(xì)胞上的表達(dá)密度,同時實驗過程中增大記錄電極的口徑(本實驗為3~5mΩ,而不是常用的單通道阻抗12~15mΩ),這樣在一個膜片上就有幾十或者上百個離子通道表達(dá),從而記錄到與全細(xì)胞類似的電流,稱之為macro-insideout current(圖6C)。在此基礎(chǔ)上,可以很方便地進(jìn)行細(xì)胞內(nèi)物質(zhì)作用研究,比如改變不同的鈣離子濃度。該記錄方式還有一個有單通道記錄相同的優(yōu)點就是記錄更加穩(wěn)定,對防震的要求比傳統(tǒng)全細(xì)胞低。因此,該記錄方式可以很好的研究通道的開關(guān)動力學(xué)、電壓依賴性和鈣離子敏感性。但是,該記錄方式適用于一些直接作用于通道內(nèi)側(cè)的物質(zhì)進(jìn)行研究,而對于直接細(xì)胞外作用或者與細(xì)胞膜上的受體結(jié)合而間接作用于通道的物質(zhì)不適宜選用此種方法。

        綜上所述,本實驗構(gòu)建的穩(wěn)定表達(dá)BKCa通道的HEK293細(xì)胞系及在此基礎(chǔ)上建立的動力學(xué)模型可以很好的用于部分BKCa通道功能研究。

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