張貴生,吳紅松,朱道玉,周長路,張紅梅
(菏澤學院 生命科學系,山東 菏澤 274015)
酞酸酯(PAEs)被廣泛應用于醫(yī)療產(chǎn)品、建筑材料、雨衣、油漆、顏料等,其中90%用作增塑劑,由于酞酸酯與聚氯乙烯塑料的結合是以氫鍵和范德華力結合,容易從塑料中滲漏出來,進入到大氣、水體和土壤中,因此酞酸酯已成為全球性無處不在的環(huán)境污染物[1].有研究表明,酞酸酯類化合物具有生殖毒性[2],遺傳毒性[3],能影響動物酸性和堿性磷酸酶活性[4]及抗氧化性能[5]等.魚類屬于較低等的脊椎動物,以血清免疫球蛋白為中心的特異性免疫還比較原始[6],非特異性細胞免疫在魚類的免疫防御中發(fā)揮著重要作用[7].魚類黏液細胞是普遍存在于魚類上皮中的一種腺體細胞,主要分布于魚的皮膚、鰓和消化道上皮,能分泌大量黏液,黏液中富含糖蛋白、免疫球蛋白、溶菌酶等多種活性物質,在魚類非特異性免疫中起重要作用.目前,關于PAEs對水生生物的毒性報道較少,對魚類黏液細胞的影響國內外鮮見報道.鄰苯二甲酸二乙酯(DEP)是PAEs類化合物中應用較廣泛的增塑劑,已被美國國家環(huán)保局及中國列為優(yōu)先控制的環(huán)境污染物之一[8].本課題組以DEP為研究對象,以中國第一大養(yǎng)殖魚種鯉魚(CyprinuscarpioLinnaeus)為受試動物,研究了DEP對鯉魚鰓及消化道黏液細胞密度的影響,期望能為PAEs的科學應用,探討PAEs對魚類的免疫毒性作用機制提供實驗依據(jù).
1.1.1 動物
鯉魚,由菏澤市牡丹區(qū)魚苗養(yǎng)殖場提供,體重為(65±4.2)g.染毒前在室溫條件下馴養(yǎng)7d.每日上午飼喂餌料1次,2天換水1次,每次換去1/3水量,24h充氧機充氧.
1.1.2 試劑
DEP(Eastman chemical company生產(chǎn));吐溫80、體積分數(shù)為95%的酒精、無水酒精、二甲苯、石蠟、鹽酸、阿利新藍等均為國產(chǎn)分析純;希夫試劑(南京建成生物工程研究所提供).
1.1.3 儀器
自動組織染色機、冷凍臺、電熱恒溫培養(yǎng)箱、輪轉組織切片機、自制玻璃缸(120cm×80cm×60cm)等.
1.2.1 動物的處理
將馴養(yǎng)好的鯉魚,挑選身體健康、無損傷、大小基本一致的鯉魚,平均分為6組,空白對照組(不添加吐溫80及 DEP),吐溫80組,0.125,0.5,2,8mg/L DEP組(各DEP處理組吐溫80質量分數(shù)均小于0.01%),每組10條,并設2個重復.染毒在同一規(guī)格的玻璃缸內進行,每天早晨8:00飼喂1次,充氧機24h不間斷充氧,每個實驗組2天換1次水,每次換1/3水量,并清除多余的殘餌,染毒20d.
1.2.2 切片的制作
染毒20d,從每組隨機取鯉魚6尾解剖,取鰓、口腔上皮、前腸、中腸、后腸,用質量分數(shù)為0.65%的生理鹽水沖洗,Bouins液固定24h,常規(guī)石蠟連續(xù)切片,AB-PAS(阿利新藍和過碘酸雪夫氏)染色方法染色[9].
1.2.3 黏液細胞的分類、計數(shù)及統(tǒng)計分析
在Motic Digital microscop系統(tǒng)下采像,為了減少誤差,同一條魚同一部位至少觀察12張切片,每張切片隨機觀察10個視野,記錄觀察到的黏液細胞的類型、數(shù)量、面積.黏液細胞密度以平均值±標準偏差來表示,并用SPSS軟件對吐溫80組和各DEP染毒組進行單因素方差分析(ANOVA),與吐溫80組間的兩兩比較采用最小顯著差數(shù)法(LSD),P<0.05表示差異顯著,P<0.01表示差異極顯著.各黏液細胞類型的密度以平均值來表示.
吐溫80組與對照組相比,鰓絲、口腔上皮、前腸、中腸、后腸處的黏液細胞密度變化并不明顯(表1),所以可以排除吐溫80對黏液細胞密度的影響.
表1 DEP對鯉魚黏液細胞密度的影響Tab.1 Effects of DEP on mucous cells density of Cyprinuscarpio Linnaeus
表1顯示,各DEP處理組與吐溫80組相比,鰓絲、口腔上皮處黏液細胞密度均隨DEP質量濃度的升高而減小,且0.125mg/L組黏液細胞密度與吐溫80組相比無顯著性差異,0.5,2,8mg/L組鰓絲處黏液細胞密度極顯著低于吐溫80組,0.5mg/L組口腔上皮處黏液細胞密度顯著低于吐溫80組,2,8mg/L組極顯著低于吐溫80組.表1還顯示,0.125,0.5mg/L組前腸、中腸、后腸處黏液細胞密度與吐溫80組相比無顯著性差異,但2,8mg/L組前腸、中腸、后腸處黏液細胞密度均極顯著低于吐溫80組,且DEP質量濃度越大,黏液細胞密度降幅越大,8mg/L組前、中、后腸黏液細胞密度比吐溫80組分別降低了14.3%,20.6%,26.7%.以上分析結果表明:較低質量濃度的DEP對鰓及消化道黏液細胞密度無明顯影響,但較高質量濃度的DEP則能顯著降低鰓及消化道黏液細胞的密度.
魚類黏液細胞類型參考尹苗[10]的分類方法,分為4種類型(圖1),Ⅰ型,呈紅色,含PAS陽性的中性黏多糖;Ⅱ型,呈藍色,含AB陽性的酸性黏多糖;Ⅲ型,呈紫紅色,主要含有PAS陽性的中性黏多糖,同時含有少量AB陽性的酸性黏多糖;Ⅳ型,呈藍紫色,主要含有AB陽性的酸性黏多糖,同時含有少量PAS陽性的中性黏多糖.
圖1 空白對照組中腸,示 Ⅰ,Ⅱ,Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞Fig.1 Midgut with the blank control showing mucous cells of typeⅠ,Ⅱ,ⅢandⅣ
用不同質量濃度的DEP對鯉魚染毒20d后,其鰓及消化道不同部位4種類型黏液細胞密度的變化情況見表2.表2顯示,吐溫80組與對照組相比,鰓絲和消化道各類型黏液細胞的密度變化均不明顯,所以吐溫80對4種類型黏液細胞密度的影響可以不予考慮.
表2 DEP對鯉魚各類型黏液細胞密度的影響Tab.2 Effects of DEP on density of each types of mucous cells in Cyprinuscarpio Linnaeus
從表2中可看出,在DEP染毒20d后,與吐溫80組相比,鰓絲處Ⅰ,Ⅲ型黏液細胞密度,口腔上皮處Ⅰ型黏液細胞密度均隨DEP質量濃度的升高,表現(xiàn)為先升高后降低,口腔上皮處Ⅲ型黏液細胞密度表現(xiàn)為逐漸降低,但0.125,0.5,2mg/L組鰓絲處Ⅰ,Ⅲ型黏液細胞密度,口腔上皮處Ⅰ型黏液細胞密度及0.125,0.5mg/L組口腔上皮處Ⅲ型黏液細胞密度均高于吐溫80組,而8mg/L組鰓絲、口腔上皮處Ⅰ,Ⅲ型黏液細胞密度均低于吐溫80組.DEP各處理組鰓絲、口腔上皮處Ⅱ,Ⅳ型黏液細胞密度均低于吐溫80組,且DEP質量濃度越高,Ⅱ,Ⅳ型黏液細胞密度降幅越大.
表2還顯示,各DEP處理組,前腸Ⅱ型黏液細胞密度及較高質量濃度組(2,8mg/L組)Ⅰ,Ⅳ型黏液細胞密度與吐溫80組相比均有不同幅度的降低,且8mg/L組降幅最大.前腸各DEP處理組Ⅲ型黏液細胞密度及較低質量濃度組(0.125,0.5mg/L組)Ⅰ,Ⅳ型黏液細胞密度與吐溫80組相比均有不同幅度的增大.從表2還可看出,中腸0.125,0.5mg/L組Ⅰ型黏液細胞密度,中腸0.125mg/L組Ⅲ型黏液細胞密度及各DEP組Ⅱ型黏液細胞密度均高于吐溫80組,而較高質量濃度組(2,8mg/L組)Ⅰ,Ⅲ型黏液細胞密度及各DEP組Ⅳ型黏液細胞密度均低于吐溫80組.后腸0.125,0.5,2mg/L組Ⅰ型黏液細胞密度,后腸0.125,0.5mg/L組Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞密度均高于吐溫80組,而后腸8mg/L組Ⅰ型黏液細胞密度,后腸2,8mg/L組Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞密度及各DEP組Ⅱ型黏液細胞密度與吐溫80組相比均有不同幅度的降低.說明,一定劑量的DEP均能引起鰓絲及消化道各類型黏液細胞密度的變化,這種變化因DEP質量濃度不同、鰓絲及消化道部位不同而異.較高質量濃度的DEP能顯著降低鰓絲及消化道黏液細胞的密度,鰓絲、口腔上皮、前腸、后腸黏液細胞密度的降低主要是由于Ⅱ,Ⅳ型黏液細胞密度的降低所致,中腸黏液細胞密度的降低主要是由于Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞密度的降低所致.
由魚類的黏液細胞分泌的黏液組成的黏液性免疫系統(tǒng),被認為是魚類的第二免疫系統(tǒng),同哺乳類分泌性免疫系統(tǒng)相似[11],具有抵制病菌、寄生蟲侵襲,抑制病毒復制,形成機械屏障、化學屏障,保護自身等重要作用.此外,分布于消化道的黏液細胞分泌的黏液還有助于魚類獲取食物及吞咽,調節(jié)胃中pH值及助消化等作用[12].安利國等[13]認為含中性黏多糖的Ⅰ型黏液細胞和含酸性黏多糖的Ⅱ型黏液細胞為幼稚型,同時含有酸性和中性黏多糖的Ⅲ型、Ⅳ型黏液細胞為成熟型.本實驗研究表明,較低質量濃度的DEP,鰓絲及消化道黏液細胞密度與吐溫80組相比無顯著性差異,但能使鰓絲、口腔上皮、前腸、后腸Ⅱ型,中腸Ⅳ型黏液細胞的密度有不同幅度的減小,能使鰓絲、口腔上皮、中腸Ⅰ,Ⅲ型、前腸、后腸Ⅰ,Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞密度有不同幅度的增加,說明較低質量濃度的DEP能誘導Ⅰ型黏液細胞的增殖,抑制Ⅱ型黏液細胞的發(fā)生(中腸除外),促進Ⅰ,Ⅱ型向Ⅲ型或Ⅳ型轉化.原因可能與4種黏液細胞所含黏多糖的性質,DEP的毒性性質及所處的環(huán)境,如鰓絲、口腔上皮直接暴露于水體,前腸腸腔內為酸性環(huán)境等有關,是魚類對不良環(huán)境的一種保護性適應[12].較高質量濃度的DEP均能顯著降低鰓絲及消化道黏液細胞的密度,這種密度的降低與各類型黏液細胞密度的變化也密切相關,8mg/L組除前腸Ⅲ型、中腸Ⅱ型黏液細胞密度高于吐溫80組外,其余各部位各類型黏液細胞密度均低于吐溫80組,但從表1、表2可發(fā)現(xiàn),較高質量濃度的DEP組,鰓絲、口腔上皮、前腸、后腸黏液細胞密度的降低主要是由于Ⅱ,Ⅳ型黏液細胞密度的降低所致,中腸黏液細胞密度的降低主要是由于Ⅲ,Ⅳ型黏液細胞密度的降低所致.原因可能是較高質量濃度的DEP引起了相應類型黏液細胞的退化分解[14],也可能與基因的表達有關,有研究表明[15-16]杯狀細胞的數(shù)目及其分泌的糖蛋白的物理化學性質可能受基因控制.目前,DEP對魚類各類型黏液細胞密度的影響機理尚不清楚,有待進一步深入研究.
[1]張征,吳振斌.酞酸酯對水生生物的生物學效應[J].淡水漁業(yè),2006,36(1):57-59.
ZHANG Zheng,WU Zhenbin.Biological effect of phthalicacid ester on aquatic animals[J].Freshwater Fusheries,2006,36(1):57-59
[2]崔月美,葉建新,吳茂聰,等.鄰苯二甲酸酯對小鼠雄性生殖系統(tǒng)的毒性作用[J].大連醫(yī)科大學學報,2009,31(4):260-263.
CUI Yuemei,YE Jianxin,WU Maocong,et al.Preconception injuries of male mice induced by diethylhexyl phthalate[J].Journal of Dalian Medical University,2009,31(4):260-263.
[3]胡存麗,仲來福.鄰苯二甲酸(2-乙基己基)酯遺傳毒性研究進展[J].大連醫(yī)科大學學報,2007,29(2):185-190.
HU Cunli,ZHONG Laifu.Genotoxic effects of di(2-ethylbexyl)phthalate in humans and animails[J].Journal of Dalian Medical University,2007,29(2):185-190.
[4]祁明亮,朱敏,趙曉祥.DEP、DOP暴露對鯉魚的酸堿性磷酸酶的影響[J].安全與環(huán)境學報,2012,12(2):10-13.
QI Mingliang,ZHU Min ,ZHAO Xiaoxiang.Effects of DEP and DOP exposure on the acid phosphatase and alkaline phosphatase in the carp[J].Journal of Safety and Environment,2012,12(2):10-13.
[5]趙偉,童麗麗,喬永康,等.鄰苯二甲酸二乙基己酯對小鼠血液中的SOD及 MDA的影響[J].公共衛(wèi)生與預防醫(yī)學,2007,18(1):12-15.
ZHAO Wei,TONG Lili,QIAO Yongkang.Effect of di-(2-ethylhexyl)phthalate(DEHP)on the activity of superoxide dismutase(SOD)and the concentration of malondialdehyde(MDA)in the red blood cell and the serum of the mice[J].Journal of Public Health and Preventive Medicine,2007,18(1):12-15.
[6]李亞南,陳全震,邵建忠,等.魚類免疫學研究進展[J].動物學研究,1995,16(1):83-94.
LI Yanan,CHEN Quanzhen,SHAO Jianzhong,et al.Advances in research of fish imunology[J].Immunological Journal,1995,16(1):83-94.
[7]李學軍,彭新亮,喬志剛.ConA或PHA對鲇(Silurusasotus)皮膚和鰓粘液細胞密度的影響[J].河南師范大學學報:自然科學版,2009,37(6):108-111.
LI Xuejun,PENG Xinliang,QIAO Zhigang.Effect of ConA or PHA on mucous cells density in the skin and cill ofSilurusasotus[J].Journal of Henan Normal University:Natural Science,2009,37(6):108-111.
[8]石志博,姚寧,朱玉,等.鄰苯二甲酸酯類增塑劑的正確評價和使用[J].塑料助劑,2009(5):43-49.
SHI Zhibo,YAO Ning,ZHU Yu,et al.Correct evalution and application for phthalate plasticizers[J].Plastic Additives,2009(5):43-49.
[9]張貴生,朱道玉.鑭長期暴露對鯉魚粘液細胞的影響[J].四川動物,2008,27(5):860-861,863.
ZHANG Guisheng,ZHU Daoyu.Effect of lanthanum on mucous cells ofCyprinuscarpioLinnaeus[J].Sichuan Journal of Zoology,2008,27(5):860-861,863.
[10]尹苗,安利國,楊桂文,等.鯉魚粘液細胞類型的研究[J].動物學雜志,2000,35(1):8-10.
YIN Miao,AN Liguo,YANG Guiwen,et al.Types of mucous cells in carps(Cyprinuscarpio)[J].Chinese Journal of Zoology,2000,35(1):8-10.
[11]ROMBOUT J H,TAVERNE-THIELE A J,VILLENA M I.The gut-associated lymphoid tissue(GALT)of carp(CyprinuscarpioL):an immunocytochemical analysis.[J].Dev Comp Immunal,1993(17):55-66.
[12]楊桂文,安利國.魚類粘液細胞研究進展[J].水產(chǎn)學報,1999,23(4):403-406.
YANG Guiwen,AN Liguo.Review on the researches of fish mucous cells[J].Journal of Fisheries of China,1999,23(4):403-406.
[13]安利國,孟廣勛,楊桂文,等.鯉稚幼體早期發(fā)育過程中粘液細胞的發(fā)生和變化[J].水生生物學報,2001,25(2):191-194.
AN Liguo,MENG Guangxun,YANG Guiwen,et al.Mucous cells in the early developmental stage of carp[J].Acta Hydrobiologica Sinica,2001,25(2):191-194.
[14]PRASAD M S.Histochemical observation on crude oil poisoning in the respiratory in the respiratory epithelium ofPuntiussophore[J].Acta hydrochim hydrubiol,1987,15(5):535-539.
[15]SANDS H E,OGATA H,LANCH-DEVANEY K,et al.Molecular cloning of the rat intestinal trefoil factor gene:characterization of an intestinal goblet cell-associated promoter[J].J Biol Chem,1995,270(16):9353-9361.
[16]KOMIYA T,ANIGAWA Y,HIROHASHI S.Loning of the gene gob-4,which is expressed in intestinal goblet cell in mice[J].Biochem Biophys Acta Cene Struct Expression,1999,1444(3):434-438.