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        ITP小鼠模型中NO/NOS對(duì)ROS生成影響作用的研究

        2013-02-24 07:47:02金呈強(qiáng)董海新
        關(guān)鍵詞:紫癜外周血血小板

        金呈強(qiáng),董海新*,劉 仿

        (1.濟(jì)寧醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院 檢驗(yàn)科,山東 濟(jì)寧 272029;2.廣東醫(yī)學(xué)院 微生物與免疫學(xué)教研室,廣東 湛江 524023)

        特發(fā)性血小板減少性紫癜(idiopathic thrombocytopenic purpura,ITP),又稱自身免疫性血小板減少性紫癜(autoimmune thrombocytopenic purpura,AITP),是因免疫機(jī)制使血小板破壞增多的臨床綜合征,是較為常見(jiàn)的出血性疾病,也是最常見(jiàn)的一種血小板減少性紫癜[1]。為探討ITP模型小鼠體內(nèi)NO/NOS對(duì)ROS生成影響的作用,我們使用NO供體藥物硝普鈉稀釋液腹腔注射ITP模型小鼠后,用ELISA法分析不同時(shí)間點(diǎn)小鼠外周血中NO/NOS和ROS濃度的變化情況。

        1 材料及方法

        1.1 實(shí)驗(yàn)對(duì)象

        同齡SPF級(jí)云南昆明小鼠46只,雌雄兼用,體重(20±6)g,購(gòu)于廣東醫(yī)學(xué)院試驗(yàn)動(dòng)物中心。

        1.2 實(shí)驗(yàn)試劑

        注射用硝普鈉(規(guī)格:50 mg;北京雙鶴現(xiàn)代醫(yī)藥技術(shù)有限責(zé)任公司);NO及NOS試劑盒(南京建成生物工程研究所第一分所),F(xiàn)enton反應(yīng)活性氧(ROS)試劑盒(南京建成生物工程研究所)。

        1.3 ITP模型的建造

        將小鼠抗人C反應(yīng)蛋白(CRP)單抗、人血清白蛋白和抗小鼠血小板膜糖蛋白(GPIIb/IIIa)單抗(MWReg30)以一定比例混合后裝入微型滲透泵,將其植入小鼠皮下組織,使MWReg30以0.25μl/h的速度持續(xù)緩慢地釋放至小鼠體內(nèi)(持續(xù)14天)[2]。

        1.4 實(shí)驗(yàn)方法

        將注射用硝普鈉50 mg(1支)溶解于50 ml生理鹽水溶液中備用。將模型小鼠隨機(jī)分為2組:NO供體藥物硝普鈉(SNP)組和磷酸鹽緩沖液(PBS)對(duì)照組,SNP組用相同濃度(1 mg/ml)的 NO供體藥硝普鈉稀釋液0.5 ml進(jìn)行腹腔注射,PBS對(duì)照組使用相同體積的磷酸鹽緩沖液進(jìn)行腹腔注射,用藥第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min后(每個(gè)實(shí)驗(yàn)點(diǎn)至少3只)取血。具體方法為用乙醚麻醉小鼠后,進(jìn)行頸動(dòng)、靜脈分離手術(shù),待頸動(dòng)脈暴露清楚后,使用注射器刺入動(dòng)脈血管,抽取3 ml血量,離心分離血清,用ELISA法分別檢測(cè)血清中NO、NOS和ROS的含量。

        1.5 ELISA法檢測(cè)NO含量、總NOS活性及ROS濃度

        收集分離后的血清,嚴(yán)格按照硝酸還原酶法檢測(cè)NO含量。蒸餾水調(diào)零,于550 nm,0.5 cm光徑測(cè)量各管吸光度值,計(jì)算出NO的濃度,以μmol/L表示。嚴(yán)格按照一氧化氮合酶測(cè)定試劑盒說(shuō)明書(shū),分光光度計(jì)530 nm處,1 cm光徑,測(cè)各管的吸光度值,計(jì)算出總NOS的濃度,以U/ml表示。ROS濃度嚴(yán)格按照Fenton反應(yīng)活性氧(ROS)ELISA試劑盒說(shuō)明書(shū)進(jìn)行檢測(cè),以蒸餾水調(diào)零,于550 nm、0.5 cm光徑測(cè)定各管的吸光度值,計(jì)算ROS濃度,以U/ml表示。

        1.6 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

        全部數(shù)據(jù)用(±s)表示,均經(jīng)SPSS17.0統(tǒng)計(jì)軟件分析。兩樣本均數(shù)比較采用t檢驗(yàn),兩變量的相關(guān)程度用直線相關(guān)分析法,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。

        2 結(jié)果

        2.1 SNP對(duì)ITP模型小鼠NO含量的影響

        如表1所示,PBS對(duì)照組NO含量的測(cè)定結(jié)果各不同時(shí)間點(diǎn)測(cè)量值無(wú)顯著性差異(均P>0.05),而SNP組在第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min檢測(cè)的NO含量逐漸升高,各測(cè)量值之間有著顯著性差異(均P<0.05),試驗(yàn)組在第5 min,15 min,25 min,35 min、45 min測(cè)量結(jié)果和 PBS對(duì)照組相比有著顯著性差異(均P<0.05)。

        2.2 SNP對(duì)ITP模型小鼠NOS活性的影響

        如表2所示,對(duì)照組NOS活性的測(cè)定結(jié)果之間無(wú)顯著性差異(均P>0.05),而SNP組在第5 min,15 min,25 min,35 min、45 min檢測(cè)的 NOS活性逐漸升高,各測(cè)量值之間有著顯著性差異(均P<0.05),試驗(yàn)組在第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min測(cè)量結(jié)果和對(duì)照組相比有著顯著性差異(均P<0.05)。

        2.3 SNP對(duì)ITP模型小鼠ROS濃度的影響

        如表3所示,ROS濃度在PBS對(duì)照組中各測(cè)量值之間無(wú)顯著性差異(均P>0.05),而SNP組在第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min檢測(cè)的ROS濃度逐漸升高,各測(cè)量值之間有著顯著性差異(均P<0.05),試驗(yàn)組在第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min測(cè)量結(jié)果和PBS對(duì)照組相比有著顯著性差異(均P<0.05)。

        表1 SNP對(duì)ITP模型小鼠NO含量的影響檢測(cè)結(jié)果(±s,單位:μmol/L)用藥時(shí)間5 min 15 min 25 min 35 min 45 min SNP組 16.70±2.53△ 19.12±3.52△ 25.44±2.08△ 29.85±5.21△ 32.47±6.28△PBS對(duì)照組 7.44±2.85 7.43±2.04 7.19±1.89 7.83±2.19 7.88±1.32 SNP組和PBS對(duì)照組相比,△P<0.05;下同。

        表2 SNP對(duì)ITP模型小鼠NOS活性的影響檢測(cè)結(jié)果(±s,單位:U/ml)用藥時(shí)間5 min 15 min 25 min 35 min 45 min SNP組 0.806±0.120△ 1.058±0.262△ 1.427±0.243△ 1.824±0.320△ 2.041±0.288△PBS對(duì)照組 0.413±0.088 0.461±0.057 0.454±0.032 0.420±0.014 0.484±0.051

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        2.4 ROS濃度與NO含量的相關(guān)性分析

        ITP模型小鼠外周血ROS濃度與NO含量在加入藥物硝普鈉后第5 min,15 min,25 min,35 min和45 min均上升,如圖1所示。在用藥后ROS濃度變化與NO含量呈正相關(guān)(r=0.76,P<0.01)。

        2.5 ROS濃度與NOS活性的相關(guān)性分析

        ITP模型小鼠外周血ROS濃度與NOS活性在加入藥物硝普鈉后第5 min,15 min,25 min,35 min、45 min均上升,如圖2所示。在用藥后ROS濃度變化與NOS活性呈正相關(guān)(r=0.82,P<0.01)。

        3 討論

        圖1 NO含量和ROS濃度隨著用藥后不同時(shí)間的變化趨勢(shì)

        特發(fā)性血小板減少性紫癜是一種獲得性器官特異性自身免疫性疾病,臨床治療上以糖皮質(zhì)激素及免疫抑制劑為主,但其發(fā)病機(jī)制尚未完全清楚。本課題組曾用流式細(xì)胞儀檢測(cè)急性ITP患者外周血PAIgG和Tr細(xì)胞的數(shù)量,發(fā)現(xiàn)PAIgG含量明顯升高,而Tr細(xì)胞的數(shù)量明顯降低[3]。另外一些細(xì)胞因子也參與了該病的病理過(guò)程,如IL-7水平升高在AITP發(fā)病中具有重要作用,機(jī)制為降低有效免疫抑制作用,導(dǎo)致自身反應(yīng)性T細(xì)胞激活增多、凋亡減少,促進(jìn)了血小板破壞[4]。我們前期研究發(fā)現(xiàn),在Jurkat系T腫瘤細(xì)胞中,在沒(méi)有外在改變腫瘤細(xì)胞一氧化氮合酶(NOS)的前提下,隨著過(guò)氧化物酶體增生物激活受體γ(PPAR-γ)的活化劑曲格列酮作用時(shí)間的延長(zhǎng),腫瘤細(xì)胞NO含量相應(yīng)地增長(zhǎng)[5],隨后我們以特發(fā)性血小板減少性紫癜(ITP)模型小鼠為研究對(duì)象,發(fā)現(xiàn)曲格列酮以一種時(shí)間依賴的形式增加該模型小鼠血清中一氧化氮的含量,NO信號(hào)途徑在PPAR-γ的免疫調(diào)節(jié)功能中起到了一定的作用[6]。

        急性期血栓性血小板減少性紫癜(TTP)的血漿能夠誘導(dǎo)人類單核細(xì)胞的ROS的產(chǎn)生,增強(qiáng)中性粒細(xì)胞CD11b的表達(dá),血液中吞噬細(xì)胞的激活可能參與TTP的病理生理過(guò)程[7]。Ruiz-Torres MP發(fā)現(xiàn)內(nèi)皮損傷是導(dǎo)致血栓性微血管?。═MA)事件中的核心因素,在該疾病的急性相中性粒細(xì)胞釋放過(guò)量的活性氧,參與了血栓性微血管病的釋放[8]。另外TNF-α能夠顯著增強(qiáng)免疫球蛋白誘導(dǎo)純化的嗜中性粒細(xì)胞中ROS的釋放[9]。在自身免疫性血小板減少癥中,鐵離子可以誘導(dǎo)活性氧(ROS)的生成,鐵超載導(dǎo)致ROS的產(chǎn)生過(guò)剩[10],而高濃度活性氧也可能對(duì)腫瘤細(xì)胞有抑制和殺傷作用[11]。

        圖2 NOS活性和ROS濃度隨著用藥后不同時(shí)間的變化趨勢(shì)

        綜上所述,氧化應(yīng)激和自由基可能在慢性ITP的發(fā)病過(guò)程中起到重要作用,但至今尚未見(jiàn)相關(guān)文獻(xiàn)報(bào)道。而本研究發(fā)現(xiàn)在慢性ITP小鼠模型中,外用NO供體藥物硝普鈉后,其外周血中ROS水平明顯升高,且有時(shí)間依賴性,另外NO、NOS均與ROS呈正相關(guān),提示ROS在ITP病理發(fā)展中可能與NO具有協(xié)同作用,該效應(yīng)可能會(huì)加重血小板的破壞過(guò)程,導(dǎo)致病情的進(jìn)一步惡化發(fā)展,NO/NOS、ROS的檢測(cè)對(duì)慢性ITP的診治具有潛在的臨床指導(dǎo)意義。

        [1]王香梅,金 萊,胡慧仙,等.聯(lián)合檢測(cè)血小板相關(guān)抗體及T細(xì)胞亞群在血小板減少性紫癜中的臨床應(yīng)用[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)診斷學(xué),2007,11(1):127.

        [2]宋 麗,金呈強(qiáng),劉 仿.ITP動(dòng)物模型建立方法的研究進(jìn)展[J].國(guó)際免疫學(xué)雜志,2009,36(5):45.

        [3]金呈強(qiáng),董海新,劉 仿,等.急性特發(fā)性血小板減少性紫癜患兒外周血血小板抗體、調(diào)節(jié)性T淋巴細(xì)胞水平的檢測(cè)及臨床意義[J].國(guó)際檢驗(yàn)醫(yī)學(xué)雜志,2010,31(10):1073.

        [4]金呈強(qiáng),劉 仿,宋麗,等.急性ITP患兒外周血CD4+CD25+Foxp3+Tr細(xì)胞、IL-7水平變化及意義[J].山東醫(yī)藥,2009,49(11):4.

        [5]金呈強(qiáng),劉 仿,肖 紅,等.活化的PPAR-γ對(duì)Jurkat系T腫瘤細(xì)胞 NO生成誘導(dǎo)的研究[J].中國(guó)免疫學(xué)雜志,2008,24:6.

        [6]王文龍,金呈強(qiáng),劉仿,等.PPAR-γ配體對(duì)ITP模型小鼠NO生成誘導(dǎo)時(shí)間效應(yīng)的研究[J].中國(guó)免疫學(xué)雜志,2010,26(7):591.

        [7]Alvarez-Larrán A,Petriz J,Martínez A,et al.Plasma from patients with thrombotic thrombocytopenic purpura induces activation of human monocytes and polymorphonuclear neutrophils[J].Br J Haematol,2003,120(1):129.

        [8]Ruiz-Torres MP,Casiraghi F,Galbusera M,et al.Complement activation:the missing link between ADAMTS-13 deficiency and microvascular thrombosis of thrombotic microangiopathies[J].Thromb Haemost,2005,93(3):443.

        [9]Higurashi S,Machino Y,Suzuki E,et al.Both the Fab and Fc domains of IgG are essential for ROS emission from TNF-α-primed neutrophils by IVIG[J].Biochem Biophys Res Commun,2012,417(2):794.

        [10]Biro C,Kopani M,Kopaniova A,et al.Iron accumulation in human spleen in autoimmune thrombocytopenia and hereditary spherocytosis[J].Bratisl Lek Listy,2012,113(2):92.

        [11]馬 波,趙吉生.胃癌患者外周血中性粒細(xì)胞產(chǎn)生活性氧的臨床意義[J].中國(guó)實(shí)驗(yàn)診斷學(xué),2001,5(4):180.

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