摘要:針對(duì)日益嚴(yán)重的土壤次生鹽堿化問(wèn)題,綜述了鹽脅迫下植物耐鹽分子機(jī)理的研究進(jìn)展。
關(guān)鍵詞:植物;耐鹽;分子機(jī)理;研究進(jìn)展
中圖分類號(hào):Q945.78 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:A 文章編號(hào):0439-8114(2013)02-0255-03
目前,全世界的鹽堿地面積約10億hm2,另外還有約1/5的灌溉農(nóng)業(yè)用地受到次生鹽堿化的影響[1],因此土壤鹽害已成為限制農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的主要因素[2]。中國(guó)有鹽堿地0.27億hm2,由于耕作和灌溉措施不當(dāng)、過(guò)度放牧等原因,又造成了近670萬(wàn)hm2的次生鹽堿化土地,發(fā)生土壤次生鹽堿化的往往是處于干旱半干旱地區(qū),沙漠綠洲等生態(tài)環(huán)境脆弱的地區(qū)。因此,土壤次生鹽堿化對(duì)生態(tài)環(huán)境造成嚴(yán)重的破壞,如果不及時(shí)地加以遏制,后果將會(huì)是不堪設(shè)想的。另外,隨著世界人口的劇增及發(fā)展中國(guó)家城市化和工業(yè)化進(jìn)程的加劇,加上土壤的次生鹽堿化,導(dǎo)致可耕地面積逐年下降,嚴(yán)重威脅著世界糧食生產(chǎn)安全,對(duì)于人均耕地面積相對(duì)較小的中國(guó)來(lái)說(shuō)這更是日益嚴(yán)重的問(wèn)題。因此,研究植物耐鹽機(jī)理、開(kāi)發(fā)利用耐鹽植物資源、培育耐鹽作物、有效利用鹽堿地對(duì)于農(nóng)業(yè)發(fā)展、糧食安全以及生態(tài)環(huán)境安全都具有重要意義。
鹽脅迫下植物體內(nèi)的離子平衡和水分平衡被打破,導(dǎo)致細(xì)胞毒性、滲透脅迫及因此而導(dǎo)致的氧化脅迫[3]。植物不同于動(dòng)物在遭受不良環(huán)境壓力時(shí)可以躲避不良環(huán)境,因而植物只能通過(guò)改變自身細(xì)胞和分子水平的代謝機(jī)制來(lái)適應(yīng)環(huán)境。鹽脅迫下植物通過(guò)小分子滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)和大分子滲透保護(hù)蛋白的積累、離子攝入和區(qū)室化以及抗氧化物酶合成等對(duì)鹽害做出響應(yīng)。
1 小分子滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的積累
正常情況下植物體內(nèi)的滲透保護(hù)物質(zhì)含量相對(duì)較低,當(dāng)植物受到鹽脅迫時(shí),由于外界滲透壓較低而對(duì)細(xì)胞產(chǎn)生滲透脅迫,為了維持胞內(nèi)滲透壓,植物會(huì)主動(dòng)積累一些滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),以便于從環(huán)境中不斷吸收水分并防止自身水分的滲出。
雖然鹽脅迫下碳的同化作用下降,但植物體內(nèi)的可溶性糖含量卻呈上升趨勢(shì)[4],可溶性糖一方面可作為滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)降低細(xì)胞水勢(shì),另一方面可參與隨后的生理恢復(fù)和修復(fù)過(guò)程[5],研究表明可溶性糖對(duì)鹽脅迫下甜土植物的滲透調(diào)節(jié)貢獻(xiàn)可達(dá)到50%以上[6]。
關(guān)于甜菜堿和脯氨酸(Pro)在鹽脅迫下的作用,有的學(xué)者認(rèn)為二者是植物對(duì)鹽害的積極響應(yīng),因?yàn)殡S著鹽濃度的增加二者含量也上升[7,8];但也有研究表明隨著鹽濃度的增加,甜菜堿量增大的幅度很小[9],而Pro含量雖然有所上升,但其濃度很小[10],說(shuō)明二者作為滲透調(diào)節(jié)物質(zhì)的調(diào)節(jié)能力很有限,因而認(rèn)為二者的積累并不代表抗鹽能力大小,不能作為抗鹽生理指標(biāo);還有學(xué)者認(rèn)為二者的積累是植物遭受脅迫的反應(yīng),是植物受害的產(chǎn)物[6]。
植物體內(nèi)的甜菜堿由膽堿單加氧酶(CMO)和甜菜堿醛脫氫酶(BADH)催化合成。研究表明轉(zhuǎn)CMO和BADH基因的植物在鹽脅迫下的膜結(jié)構(gòu)損傷降低,抗鹽性提高[11]。植物體內(nèi)Pro通過(guò)谷氨酸和鳥(niǎo)氨酸兩條途徑合成,鹽脅迫下雖然植物體內(nèi)的Pro大量積累,但是谷氨酸途徑的關(guān)鍵酶P5CS活性及其基因表達(dá)沒(méi)有變化[12],可見(jiàn)Pro的積累與P5CS的調(diào)控?zé)o關(guān),且Pro的積累與蛋白質(zhì)分解也沒(méi)有相關(guān)性[13],這說(shuō)明鹽脅迫下Pro的積累是鳥(niǎo)氨酸途徑產(chǎn)生的。研究表明鹽脅迫明顯激活了大麥的鳥(niǎo)氨酸途徑,使大麥Pro含量上升,且幼苗耐鹽性增強(qiáng)[14],而將鳥(niǎo)氨酸途徑的關(guān)鍵酶OAT基因轉(zhuǎn)入水稻后,鹽脅迫下轉(zhuǎn)基因水稻Pro大量積累并獲得了耐鹽性[15]。
雖然生理生化研究結(jié)果對(duì)甜菜堿和Pro在植物耐鹽性中的貢獻(xiàn)存在爭(zhēng)議,但是將甜菜堿和Pro合成的關(guān)鍵酶基因轉(zhuǎn)入甜土植物后的研究證實(shí)二者的積累對(duì)植物耐鹽性具有重要意義,這也說(shuō)明分子機(jī)理的研究對(duì)于闡明植物耐鹽機(jī)理具有重要的作用。
2 大分子滲透保護(hù)蛋白的積累
水通道蛋白(AQPs)是水選擇性通透的膜內(nèi)在蛋白,根據(jù)氨基酸序列同源性及結(jié)構(gòu)特征可將植物AQPs分為5類,即質(zhì)膜內(nèi)在蛋白(PIP)、液泡膜內(nèi)在蛋白(TIP)、類Nod26膜內(nèi)蛋白(NIP)、小堿性膜內(nèi)蛋白(SIP)及類 GlpF膜內(nèi)在蛋白(GIPs)。植物通過(guò)調(diào)節(jié)AQPs的活性協(xié)同微調(diào)水分的跨膜運(yùn)輸,進(jìn)而維持高滲條件下的水分平衡以抵御各種逆境脅迫。目前關(guān)于鹽脅迫下AQPs表達(dá)調(diào)控的研究主要集中在PIPs和TIPs亞類。
鹽脅迫下AQPs基因的調(diào)節(jié)是一個(gè)復(fù)雜的過(guò)程,不同植物AQPs的調(diào)控方式不同,鹽脅迫下AQPs的轉(zhuǎn)錄和表達(dá)水平可被下調(diào)[16,17],亦可被上調(diào)[18],也可因鹽濃度、處理時(shí)間或組織不同而處于波動(dòng)變化之中[19,20]。
胚胎發(fā)生晚期豐富蛋白(LEA)是當(dāng)前逆境生理學(xué)研究的熱點(diǎn)之一,大多數(shù)LEA蛋白主要由親水性氨基酸組成,其高級(jí)結(jié)構(gòu)含無(wú)規(guī)則線團(tuán)和α-螺旋[21],表明LEA蛋白具有較高的水合能力,可能通過(guò)結(jié)合水分或替代水分子保護(hù)細(xì)胞免受脅迫的傷害。研究表明在非生物脅迫下,LEA蛋白大量積累并提高了植物抗性[22],將LEA基因轉(zhuǎn)入擬南芥后提高了其耐鹽性[23],說(shuō)明LEA蛋白積累是植物對(duì)環(huán)境適應(yīng)的重要表現(xiàn),其基因表達(dá)的變化與植物抗逆性有關(guān)。
3 離子攝入和區(qū)室化
高濃度的Na+嚴(yán)重阻礙植物對(duì)K+的吸收和運(yùn)輸,導(dǎo)致K+缺失,雖然細(xì)胞可通過(guò)犧牲K+的吸收換取Na+積累的減少來(lái)提高耐鹽性,但胞質(zhì)中適當(dāng)?shù)腒+是維持滲透平衡所必需的,且K+在控制氣孔的開(kāi)關(guān)中有重要作用[24]。另外,許多胞質(zhì)酶能被K+活化而受Na+的抑制,因此胞內(nèi)必須維持一定的K+才能維持正常生長(zhǎng)。
在高鹽環(huán)境中Na+的吸收、轉(zhuǎn)運(yùn)和區(qū)室化作用是植物生存的關(guān)鍵因素[25],耐鹽植物通過(guò)Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)體將Na+轉(zhuǎn)運(yùn)到液泡中或從胞質(zhì)中轉(zhuǎn)運(yùn)到胞外,從而避免Na+毒害并保持離子平衡。表達(dá)Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)體基因的擬南芥耐鹽性提高[26],表明Na+/H+反向轉(zhuǎn)運(yùn)體與植物耐鹽性關(guān)系密切,且可提高非鹽生植物的抗鹽能力。研究表明梭梭(Haloxylon ammodendron)在鹽脅迫下主要通過(guò)離子區(qū)室化作用進(jìn)行滲透調(diào)節(jié),其中Na+對(duì)滲透壓的貢獻(xiàn)率超過(guò)50%[27],在此基礎(chǔ)上只需積累少量的有機(jī)滲透調(diào)節(jié)物質(zhì),就可使梭梭植物獲得很強(qiáng)的耐鹽性。
4 抗氧化物酶的合成
鹽脅迫導(dǎo)致的滲透脅迫和離子毒害使植物產(chǎn)生大量的活性氧(ROS),ROS濃度的提高會(huì)積累丙二醛(MDA)等有害的過(guò)氧化物,造成膜脂過(guò)氧化,使ROS產(chǎn)生與清除之間的動(dòng)態(tài)平衡被破壞,如果ROS不能及時(shí)清除就會(huì)造成氧化脅迫[28,29]。植物體內(nèi)的抗氧化酶系統(tǒng)主要包括SOD、POT、CAT等酶。研究表明鹽脅迫下鹽生植物抗氧化酶活性高于非鹽生植物[30],鹽脅迫下植物體內(nèi)抗氧化酶的活性上升可清除過(guò)多的活性氧,從而保護(hù)膜系統(tǒng)不受破壞并提高植物耐鹽性[31]。另外,鹽脅迫下抗氧化酶基因的過(guò)表達(dá)可使轉(zhuǎn)基因植株抗氧化酶活性增強(qiáng),從而減少了鹽脅迫的傷害[32],可見(jiàn)抗氧化酶系統(tǒng)對(duì)植物耐鹽性具有重要作用。
綜上所述,鹽處理對(duì)植物的影響包括離子脅迫、滲透脅迫和氧化脅迫,而植物的耐鹽性涉及生理生化及分子等多個(gè)水平,盡管國(guó)內(nèi)外學(xué)者對(duì)植物耐鹽性進(jìn)行了大量的研究,獲得了很多耐鹽相關(guān)基因與蛋白,但到目前為止植物耐鹽的分子機(jī)制并不十分清楚。由于植物的耐鹽性是多基因調(diào)控的,因而,繼續(xù)深入進(jìn)行植物耐鹽機(jī)理研究,分離并鑒定出新的耐鹽基因和蛋白,是對(duì)植物耐鹽機(jī)理進(jìn)行全面闡明的前提。
另外,青海柴達(dá)木盆地大量的鹽堿地孕育了豐富的鹽生植物資源,這些植物資源不僅擁有很強(qiáng)的耐鹽性,同時(shí)還具有重要的藥用價(jià)值、經(jīng)濟(jì)價(jià)值以及生態(tài)價(jià)值。因而,加強(qiáng)這些耐鹽植物的耐鹽生理及分子機(jī)理的研究,不僅可為合理地開(kāi)發(fā)利用這些鹽生植物資源以及改良鹽堿土奠定基礎(chǔ),同時(shí)也為耐鹽作物的培育提供新的有效的基因資源,從而為擴(kuò)大優(yōu)良作物的分布范圍并推動(dòng)鹽堿地農(nóng)業(yè)的發(fā)展奠定基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1] CHINNUSAMY V,JAGENDORF A,ZHU J K.Understanding and improving salt tolerance in plants[J]. Crop Science,2005,45(2):437-448.
[2] MUNN R.Comparative physiology of salt and water stress[J]. Plant,Cell Environment,2002,25(2):239-250.
[3] ZHU J K. Salt and drought stress signal transduction in plants[J].Annu Rev Plant Biol,2002,53:247-273.
[4] LI R, SHI F, FUKUD K.Interactive effects of various salt and alkali stresses on growth, organic solutes, and cation accumulation in a halophyte Spartina alterniflora(poaceae)[J].Environmental and Experimental Botany,2010,68(1):66-74.
[5] 趙江濤,李曉峰,李 航,等.可溶性糖在高等植物代謝調(diào)節(jié)中的生理作用[J].安徽農(nóng)業(yè)科學(xué),2006,34(24):6423-6427.
[6] ASHRAF M, HARRIS P J C. Potential biochemical indicators of salinity tolerance in plants[J]. Plant Science,2004,166(1):3-16.
[7] NEDJIMI B.Salt tolerance strategies of lygeum spartum L.: A new fodder crop for algerian saline steppes[J]. Flora,2009, 204(10):747-754.
[8] PAGTER M, BRAGATO C, MALAGOLI M,et al.Osmotic and ionic effects of NaCl and Na2SO4 salinity on Phragmites australis[J]. Aquatic Botany,2009,90(1):43-51.
[9] PIQUERAS A,HERNANDEZ J A,OLMOS E,et al.Changes in antioxidant enzymes and organic solutes associated with adaptation of citrus cells to salt stress[J]. Plant Cell Tissue and Organ Culture,1996,45(1):53-60.
[10] JAMPEETONG A,BRIX H.Effects of NaCl salinity on growth, morphology, photosynthesis and proline accumulation of Salvinia natans[J]. Aquatic Botany,2009,91(3):181-186.
[11] WANG S H,TAO J M, ZHANG H M,et al. Molecular cloning of betaine synthetase in suaeda salsa and construction of plant co-expression vector in a single open reading frame with the 2A region of FMDV[J]. Acta Botanica Boreali-occidentalia Sinica,2007,27(2):215-222.
[12] WANG Z Q, YUAN Y Z, OU J Q,et al. Glutamine synthetase and glutamate dehydrogenase contribute differentially to proline accumulation in leaves of wheat (Triticum aestivum) seedlings exposed to different salinity[J]. Journal of Plant Physiology,2007,164(6):695-701.
[13] SILVA-ORTEGA C O, OCHOA-ALFARO A E, REYES-AGUERO J A,et al. Salt stress increases the expression of p5cs gene and induces proline accumulation in cactus pear[J].Plant Physiology and Biochemistry,2008,46(1):82-92.
[14] 趙福庚,孫 誠(chéng),劉友良.鹽脅迫激活大麥幼苗脯氨酸合成的鳥(niǎo)氨酸途徑[J].植物學(xué)報(bào),2001,43(1):36-40.
[15] WU L Q, FAN Z M, GUO L,et al. Over-expression of an arabidopsis δ-OAT gene enhances salt and drought tolerance in transgenic rice[J]. Chinese Science Bulletin,2003,48(23):2594-2600.
[16] MARTINEZ-BALLESTA M C, APARICIO F, PALLAS V,et al. Influence of saline stress on root hydraulic conductance and PIP expression in Arabidopsis[J]. Journal of Plant Physiology,2003,160(6):689-697.
[17] BOURSIAC Y, CHEN S, LUU D T,et al. Early effects of salinity on water transport in arabidopsis roots, molecular and cellular features of aquaporin expression[J]. Plant Physiology,2005,139(2):790-805.
[18] LOPEZ-PEREZ L,MARTINEZ-BALLESTA M C, Maurel C, et al. Changes in plasma membrane lipids,aquaporins and proton pump of broccoli roots, as an adaptation mechanism to salinity[J].Phytochemistry,2009,70(4):492-500.
[19] ZHU C F, SCHRAUT D, HARTUNG W. Differential responses of maize MIP genes to salt stress and ABA[J]. Journal of Experimental Botany, 2005,56(421):2971-2981.
[20] LI G W, PENG Y H, YU X, et al. Transport functions and expression analysis of vacuolar membrane aquaporins in response to various stresses in rice[J]. Journal of Plant Physiology,2008,165(18):1879-1888.
[21] SHAO H B, LIANG Z S, SHAO M A. LEA proteins in higher plants: Structure,function,gene expression and regulation[J]. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces,2005,45(3-4):131-135.
[22] CHOUREY K, RAMANI S, APTE S K.Accumulation of LEA proteins in salt (NaCl) stressed young seedlings of rice (Oryza sativa L.) cultivar bura rata and their degradation during recovery from salinity stress[J]. Journal of Plant Physiology,2003,160(10):1165-1174.
[23] DALAL M, TAYAL D, CHINNUSAMY V,et al. Abiotic stress and ABA-inducible group 4 LEA from brassica napus plays a key role in salt and drought tolerance[J]. Journal of Biotechnology,2009,139(2):137-145.
[24] NIU X, BRESSAN R A, HASEGAWA P M,et al.Ion homeostasis in NaCl stress environments[J]. Plant Physiol,1995, 109(3):735-742.
[25] SUN J, CHEN S L, DAI S X,et al. Ion flux profiles and plant ion homeostasis control under salt stress[J]. Plant Signaling Behavior,2009,4(4):261-264.
[26] AN B Y, LUO Y, LI J R,et al.Expression of a vacuolar Na+/H+ antiporter gene of alfalfa enhances salinity tolerance in transgenic arabidopsis[J].Acta Agron Sin,2008,34(4):557-564.
[27] SONG J,F(xiàn)ENG G,TIAN C Y, et al.Osmotic adjustment traits of suaeda physophora, Haloxylon ammodendron and Haloxylon persicum in field or controlled conditions[J],Plant Science,2006,170(1):113-119.
[28] ASHRAF M. Biotechnological approach of improving plant salt tolerance using antioxidants as markers[J]. Biotechnology Advances,2009,27(1):84-93.
[29] NOREEN S,ASHRAF M,HUSSAIN M,et al.Exogenous application of salicylic acid enhances antioxidative capacity in salt stressed sunflower (Helianthus annuus L.) plants[J]. Pakistan Journal of Botany,2009,41(1):473-479.
[30] NOREEN Z, ASHRAF M. Assessment of variation in antioxidative defense system in salt-treated pea (Pisum sativum) cultivars and its putative use as salinity tolerance markers[J].Journal of Plant Physiology,2009,166(16):1764-1774.
[31] AHMAD M S A, ALI Q, ASHRAF M,et al.Involvement of polyamines, abscisic acid and anti-oxidative enzymes in adaptation of blue panicgrass(Panicum antidotale Retz.) to saline environments[J]. Environmental and Experimental Botany, 2009,66(3):409-417.
[32] LEE S H, AHSAN N, LEE K W, et al. Simultaneous overexpression of both CuZn superoxide dismutase and ascorbate peroxidase in transgenic tall fescue plants confers increased tolerance to a wide range of abiotic stresses[J]. Journal of Plant Physiology,2007,164(12):1626-1638.