史 卿,杜研學(xué),趙 強(qiáng),阮 霞,熊 華,鐘紅蘭,白春清,黃聲芳
(南昌大學(xué)食品科學(xué)與技術(shù)國家重點實驗室,江西南昌330047)
白木通(Akebia trifoliate(Thunb.)Koidz.var.australis(Diels)Rehd)屬于木通科木通屬植物,據(jù)《中國藥典》2005版一部記載,其干燥莖藤入藥可作木通用,味苦,性寒,具利尿、活血通脈、抗菌消炎之功效[1]。白木通果肉呈乳白色,含豐富的淀粉和可溶性糖,味美可食,果肉中含17種氨基酸,蛋白質(zhì)總量為0.98g/100g,維生素 C含量高達(dá)84mg/100g,另外還含豐富的鈣、鈉、鋅、鎂、鉀等礦質(zhì)元素[2],其果肉的營養(yǎng)成分結(jié)構(gòu)與沙棘大體相當(dāng)。據(jù)醫(yī)學(xué)研究表明,白木通莖藤具利尿、鎮(zhèn)痛和抗炎的作用。白梅榮等[3]通過大鼠代謝籠法、體外抑菌實驗、小鼠耳腫脹法研究比較三葉木通和五葉木通的水煎劑利尿、抑菌和抗炎作用,結(jié)果發(fā)現(xiàn)兩種木通的利尿等藥理作用基本相同。除此之外,木通中還具有抗癌功效的成分。白木通果無毒。江西省很多地區(qū),如九江、萍鄉(xiāng)、撫州等地,長期以來白木通都作為野生水果被食用,囊肉可用于熬糖;根、莖、葉可以泡茶;皮、籽、根、莖和葉均可入藥。江西省科研技術(shù)人員通過采集白木通野生藤,經(jīng)過多年馴化種植,已經(jīng)培育出高產(chǎn)油、高結(jié)果率的新白木通果,平均產(chǎn)量可達(dá)3000斤/畝,最高產(chǎn)量可達(dá)6000斤/畝。通過對白木通籽和果皮基本組成進(jìn)行成分分析,證明白木通是非常有價值的資源,急需開發(fā)利用。白木通籽是一種油料籽,有關(guān)部門已將其作為一種特種油來開發(fā)以緩解國內(nèi)食用油資源緊張的壓力。白木通籽中油脂含量為39.33%、粗蛋白含量為17.89%[4],經(jīng)提取油脂后,其餅粕中含有大量的蛋白(約42%),為提高木通籽的綜合利用,急需對蛋白進(jìn)行開發(fā)研究。本文以白木通籽為原料,利用經(jīng)典的堿提酸沉法,制備了白木通籽分離蛋白,系統(tǒng)的探討了蛋白的理化性質(zhì)、功能性質(zhì)及評價,旨在初步研究白木通籽蛋白的物化特性,為其應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)提供一定的理論基礎(chǔ)。
白木通籽 廬山東林寺果園;大豆油 市售;牛血清白蛋白 上海藍(lán)季科技發(fā)展有限公司;四甲基乙二胺(TEMED)、十二烷基硫酸鈉(SDS)、三羥甲基胺基甲烷(Tris)、1-苯胺基萘-8-磺酸(ANS)、β-巰基乙醇、氫氧化鈉、鹽酸、溴酚藍(lán)、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鉀等試劑 均為分析純。
KDY-9820凱氏定氮儀 廈門精藝興業(yè)科技有限公司;FD-1冷凍干燥機(jī) 北京神泰偉業(yè)儀器設(shè)備有限公司;LXJ-IIB離心機(jī) 上海安亭科學(xué)儀器廠;RH basic 1磁力攪拌器、高速分散勻漿機(jī) 德國IKA公司;新世紀(jì)T6紫外分光光度計 北京普析通用儀器有限公司;L8800氨基酸自動分析儀、F-4500熒光分光光度計 日本日立公司;SPX-250電泳儀 美國伯樂公司;MOS-450圓二色光譜儀 法國Bio-Logic公司;Quanta200F電子掃描顯微鏡 美國FEI公司;精密pH計 賽多利斯科學(xué)儀器(北京)有限公司。
1.2.1 原料前處理 白木通籽干燥去除水分后,手工去皮,粉碎過篩,按固液比1∶3加入正己烷室溫下磁力攪拌脫脂2h,重復(fù)三次,離心、烘干正己烷后得到脫脂白木通籽粉(DAF)。
1.2.2 白木通籽分離蛋白(API)的制備 采用堿提酸沉法制備白木通籽分離蛋白:50g DAF溶解至500mL蒸餾水中,用1mol/L NaOH調(diào)節(jié)pH至10.0,溫度35℃,在磁力攪拌器上攪拌提取1.5h后離心(5000×g,15min),殘渣重復(fù)提取2次,合并上清液。用1mol/L HCl調(diào)節(jié)上清液pH至4.5,4℃靜置30min后離心(5000×g,15min)棄去上清液,水洗,調(diào)pH至7.0后置于超低溫冰箱中-80℃預(yù)凍過夜,后置于真空冷凍干燥箱中干燥。
1.2.3 白木通籽化學(xué)組成分析 采用國家標(biāo)準(zhǔn)方法對樣品的水分、灰分、蛋白、脂肪和纖維素進(jìn)行測定。
1.2.4 氨基酸組成及評價 稱取白木通籽分離蛋白0.25g,將樣品置于水解管中,加入含有10mmol/L多酚的6mol/L鹽酸溶液,真空封口。在110℃下水解24h,冷卻后定容、過濾和蒸干,采用氨基酸自動分析儀上樣測定蛋白質(zhì)的氨基酸含量。氨基酸含量以g/100g蛋白表示。
1.2.4.1 氨基酸評分(%) 以 FAO/WHO(2007)[5]小孩推薦模式為參考按照如下公式計算:
1.2.4.2 九種必需氨基酸的數(shù)量與總氨基酸的數(shù)量之比 E/T(%)。
1.2.4.3 蛋白質(zhì)功效比值(PER)的估算 Alsmeyer[6]等人提出的回歸方程計算:
1.2.4.4 蛋白質(zhì)生物價(BV)的估算 根據(jù)Morup和Olesen[7]提出的回歸方程計算:
1.2.5 十二烷基磺酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(SDS-PAGE)分析 參考 Laemmli方法[8]采用不連續(xù)緩沖液系統(tǒng),濃縮膠和分離膠質(zhì)量濃度分別為5%和12.5%。蛋白樣品溶解于0.05mol/L Tris-HCl緩沖溶液(含質(zhì)量分?jǐn)?shù)1%的SDS,1%的β-巰基乙醇,40%的蔗糖和0.02%的溴酚藍(lán))中配制成質(zhì)量濃度1mg/mL的溶液,樣品上樣前在沸水中加熱5min,離心(10000×g,10min)。取上清液10μL進(jìn)樣,電泳在室溫條件下,濃縮膠中電流恒定為15mA,當(dāng)樣品前沿到達(dá)分離膠時電流改為25mA。電泳結(jié)束后,用0.05%考馬斯亮藍(lán)R-250溶液(染料溶解于體積比為46∶227∶227的冰乙酸、甲醇和水混合溶液中)染色3h,后用體積比為50∶75∶875的甲醇、乙酸和水混合溶液對凝膠脫色6h。蛋白標(biāo)品的分子量范圍15~170ku。
1.2.6 掃描電鏡(SEM)觀察 采用FEI公司的Quanta 200F型電子掃描顯微鏡(Scanning Electron Microscope,SEM)對蛋白顯微形態(tài)進(jìn)行觀察。蛋白樣品經(jīng)過粘臺、噴金等步驟后,在加速電壓為20kV的條件下用SEM進(jìn)行觀察。
1.2.7 圓二色譜分析 蛋白樣品的二級結(jié)構(gòu)組成采用法國Bio-Logic公司的MOS-450型旋光分光計測定。稱取一定質(zhì)量的蛋白樣品,分散于10mmol/L磷酸緩沖液(pH7.2)中使蛋白質(zhì)量濃度為0.1mg/mL。測定前過微孔濾膜(0.45μm),采用遠(yuǎn)紫外區(qū)CD光譜,掃描范圍為190~250nm,樣品池光程1mm,每個樣品掃描三次取平均值,測定參數(shù):分辨率1nm,捕獲時間1s,帶寬0.5nm,靈敏度100mdeg/cm。以磷酸緩沖液為空白對照[9]。
1.2.8 溶解度 將蛋白樣品溶于蒸餾水中,配制成質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1%的蛋白溶液,于磁力攪拌器上攪拌30min使其充分分散,而后用 0.5mol/L鹽酸或0.5mol/L氫氧化鈉將溶液pH分別調(diào)至2~12,25℃繼續(xù)攪拌溶解30min后5000×g離心15min。用Lowry法[10]測定上清液中蛋白質(zhì)的含量,以牛血清蛋白為標(biāo)準(zhǔn)蛋白。每組實驗做三組平行對照。
1.2.9 表面疏水性測定 采用熒光探針劑ANS法[11]。將樣品分散于0.01mol/L、pH7.0磷酸緩沖液中配制成1mg/mL的原液,后用相同緩沖液將其稀釋成50、100、150、200、250μg/mL 五個系列濃度的溶液。每4mL系列濃度的蛋白溶液加入50μL的1-苯胺基-8-萘磺酸(1-anilino-8-naphthalene sulfonic acid,ANS)溶液(8mmol/L ANS溶于0.01mol/L磷酸鹽緩沖液)?;靹蚝蟛捎脽晒夥止夤舛扔嫓y定,操作條件為:激發(fā)波長390nm,掃描范圍400~700nm,掃描速度500nm/min,激發(fā)狹縫和發(fā)射狹縫寬均為3nm。響應(yīng)時間為0.1s,記錄470nm波長處的熒光發(fā)射強(qiáng)度,用熒光強(qiáng)度對蛋白溶液濃度作圖并進(jìn)行線性回歸,以線性回歸斜率作為表面疏水性的指標(biāo)。每組實驗做三組平行對照。
1.2.10 起泡性與起泡穩(wěn)定性 參照文獻(xiàn)[12]以不同 pH(3.0、5.0、7.0、9.0)的磷酸緩沖溶液配制20mL質(zhì)量濃度為1%的蛋白溶液,采用高速分散勻漿機(jī)均質(zhì)1min(15000r/min)后,迅速記錄泡沫所占的體積V1;室溫下靜置30min后,再次記錄泡沫的殘余體積V2,每組實驗做三組平行對照。計算公式如式5、式 6:
式中:V0為蛋白溶液的體積,即20mL。
對白木通籽化學(xué)組成進(jìn)行分析,每個成分測定三次,取平均值。白木通籽中水分為6.23%,灰分3.58%,粗脂肪38.83%,蛋白質(zhì)17.23%。其中粗脂肪含量與花生中油脂含量相當(dāng),蛋白質(zhì)含量略高于豆莢中蛋白含量。白木通籽經(jīng)脫皮和脫脂后,油脂和蛋白含量分別為5.12%和41.83%。白木通籽分離蛋白的純度為86.04%,其提取率為82.65%。可見,白木通籽中蛋白含量高,經(jīng)油脂加工后,脫脂粉將會作為一種新型的豐富植物蛋白資源而被大力開發(fā)。
表1為白木通籽分離蛋白的氨基酸含量分析結(jié)果,并以FAO/WHO(2007)推薦模式作對照對其氨基酸進(jìn)行評價。數(shù)據(jù)顯示,白木通籽分離蛋白中谷氨酸和天門冬氨酸含量最高,分別為17.84g/100g蛋白和11.63g/100g蛋白。必需氨基酸中,與 FAO/WHO(2007)2~5歲小孩的推薦模式相比,白木通籽分離蛋白含較高的纈氨酸、亮氨酸、異亮氨酸、組氨酸、賴氨酸和芳香族氨基酸;蘇氨酸和含硫氨基酸含量與之相比較低。然而,此8種必需氨基酸含量均高于FAO/WHO(2007)成人推薦模式。值得一提的是,賴氨酸一般是谷物中的限制性氨基酸,白木通籽分離蛋白中賴氨酸含量為5.91/100g蛋白,明顯高于大米中賴氨酸的含量(3.7g/100g)[13]。白木通籽分離蛋白組分與FAO/WHO(2007)小孩推薦模式相比的氨基酸評分結(jié)果顯示,蘇氨酸為白木通籽分離蛋白的第一限制性氨基酸,含硫氨基酸為分離蛋白的第二限制性氨基酸。白木通籽分離蛋白E/T值高于FAO/WHO衡量理想蛋白資源的推薦值(36%),其PER值與優(yōu)質(zhì)蛋白的衡量標(biāo)準(zhǔn)值2.00相比屬于優(yōu)質(zhì)蛋白。
表1 白木通籽分離蛋白氨基酸分析結(jié)果(g/100g蛋白)及其氨基酸評價Table 1 Amino acid composition of API and its amino acid score
圖1為白木通籽分離蛋白在還原狀態(tài)下的電泳圖譜。由圖可知,白木通籽分離蛋白的主要亞基分子量范圍為25~35ku。與傳統(tǒng)蛋白資源(如花生、大豆蛋白)相比,白木通籽分離蛋白的亞基分子量較小。
圖1 白木通籽分離蛋白SDS-PAGE電泳圖Fig.1 SDS-PAGE patterns of API
蛋白提取過程中,采用不同的萃取液制備的蛋白可能會呈現(xiàn)不同的分子形態(tài)結(jié)構(gòu)。傳統(tǒng)堿提酸沉法提取得到的白木通籽分離蛋白在400、1600倍的掃描電鏡下的表面微觀結(jié)構(gòu)如圖2所示。白木通籽分離蛋白的分子結(jié)構(gòu)形態(tài)類似晶狀體,晶狀體結(jié)構(gòu)比較疏松,分布不均勻,而且表面也不平整。
圖2 API超微結(jié)果Fig.2 Microphotograms of API in SEM
采用遠(yuǎn)紫外圓二色光譜測定白木通籽分離蛋白的二級結(jié)構(gòu)組成。結(jié)果顯示,白木通籽分離蛋白的二級結(jié)構(gòu)由11.9%的 α-螺旋,31.2%的 β-折疊,20.3%的轉(zhuǎn)角和36.6%的無規(guī)則卷曲構(gòu)成,如表2所示。這說明β-折疊和無規(guī)則卷曲是白木通籽分離蛋白的主要二級結(jié)構(gòu),蕎麥蛋白中也發(fā)現(xiàn)了相類似的結(jié)果[14]。
圖3 白木通籽分離蛋白的圓二色譜曲線Fig.3 Circular dichroism spectroscopy of API
表2 白木通籽分離蛋白圓二色譜結(jié)果Table 2 Secondary structures of API
蛋白質(zhì)的溶解性是功能性質(zhì)中最重要的一個性質(zhì),它會極大地影響其他功能性質(zhì),同時又受pH的影響。白木通籽分離蛋白溶解性隨pH的變化曲線如圖4所示。白木通籽分離蛋白的溶解性曲線呈現(xiàn)U形,隨著pH的增加,溶解度先降低,而后在pH5~10范圍內(nèi)持續(xù)上升。在pH4~5內(nèi),蛋白溶解度呈現(xiàn)最低值,此時白木通籽分離蛋白的溶解度為2.10%。一般而言,蛋白質(zhì)的溶解度在其等電點附近是最低的,越遠(yuǎn)離等電點,溶解性越好。原因是在等電點時,電荷斥力消失,從而導(dǎo)致蛋白分子表面電荷為零[15]。白木通籽分離蛋白的高溶解性能在 pH達(dá)10.0以上呈現(xiàn)出來。
表面疏水性表明了蛋白質(zhì)分子疏水性區(qū)域的暴露程度,能夠極大地影響蛋白質(zhì)的表面張力和乳化活性。表明疏水性數(shù)值越高,蛋白分子間凝聚作用力越低[16]。白木通籽分離蛋白在pH7.0時的表面疏水性為379.4。
圖4 白木通籽分離蛋白溶解度隨pH變化情況Fig.4 Solubility of API as influenced by pH
pH對蛋白起泡與起泡穩(wěn)定性的影響如圖5所示。一般而言,蛋白質(zhì)的高溶解性是其擁有良好起泡性和起泡穩(wěn)定性的先決條件。蛋白適當(dāng)?shù)娜芙饽軌蛟鰪?qiáng)表面吸附,對于泡沫的形成十分有利。許多蛋白在等電點附近容易凝聚,從而降低蛋白成膜的穩(wěn)定性[17]。在強(qiáng)酸或強(qiáng)堿環(huán)境中,由于蛋白質(zhì)表面的靜電荷增多,從而使蛋白質(zhì)的溶解性能和表面活性增強(qiáng),最終使蛋白的起泡性能得到增強(qiáng)[18]。圖5顯示,起泡性圖像與白木通籽分離蛋白的溶解性曲線呈現(xiàn)高度的相關(guān)性。在pH5.0處,API的起泡性值最低,為10.4%。同時,API在pH9.0處呈現(xiàn)最高的起泡性值(63.1%)。這種起泡性值隨著pH由5.0增加到9.0上升的現(xiàn)象是由蛋白質(zhì)的柔性增強(qiáng)引起的。蛋白伸展開來使其快速分散到空氣與水界面包埋空氣顆粒,從而使起泡能力增強(qiáng)[19]。
圖5 白木通籽蛋白起泡穩(wěn)定性隨pH變化情況Fig.5 Foaming capacity and foaming stability of API by pH
本實驗采用堿提酸沉法對白木通籽中可溶性蛋白進(jìn)行了提取,并對其理化性質(zhì)與功能性質(zhì)進(jìn)行了分析。研究表明,白木通籽分離蛋白含17種氨基酸,其中谷氨酸和天門冬氨酸的含量相對較高,有貯藏蛋白的共性。蘇氨酸為白木通籽分離蛋白的第一限制性氨基酸。白木通籽分離蛋白的等電點在pH4~5之間,在此pH范圍內(nèi),蛋白的溶解性和起泡能力均為最低。這些結(jié)果可為白木通籽分離蛋白的開發(fā)、可食用植物蛋白質(zhì)的資源開發(fā)應(yīng)用提供理論依據(jù),為開辟白木通附加值的新途徑提供參考資料。
[1]馬雙成,陳德昌,趙淑杰.蕷知子的化學(xué)成分研究I.白木通種子中的3位單糖鏈皂甙化合物[J].中草藥,1994,25(4):171-174.
[2]劉占朝.三葉木通研究進(jìn)展綜述[J].河南林業(yè)科技,2005,25(1):20-22.
[3]白梅榮,張冰,劉小青,等.三葉、五葉木通提取物藥效及對藥酶影響的比較研究[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊,2008,26(4):732-735.
[4]蔣巖,杜研學(xué),熊華,等.白木通籽油的理化性質(zhì)與熱氧化穩(wěn)定性[J].食品科學(xué),2011,32(15):34-38.
[5]潘敏堯.大米濃縮蛋白的研制及蛋白改性的研究[D].杭州:浙江大學(xué),2006.
[6]RH Alsmeyer,AD Cunningham,M L Happich.Equations predict PER from amino acid analysis[J].Food Technology,1974(28):34-38.
[7]IK Morup,ES Olesen.New method for prediction of protein value from essential amino acid pattern[J].Nutrition Report Kit,1976(13):355-365.
[8]Laemmli U K.Cleavage of saturated proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4[J].Nature,1970,227:680-685.
[9]F Massimo,Marcone,Y Kakuda,et al.Salt- soluble seed globulins of dicotyledonous and monocotyledonous plants II.Structural characterization[J].Food Chemistry,1998,63(2):265-274.
[10]Lowry O H,Rosembroug H J,Lewis A,et al.Protein measurement with the Folin Phenol reagent[J].Journal of Biological Chemistry,1951,193(1):265-275.
[11]Haskard C A,Li- Chan E C Y.Hydrophobicity of bovine serum albumin and ovalbumin using uncharged(PRODAN)and anionic(ANS-)fluorescent probes[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1998,46(7):2671-2677.
[12]Sze-Tao K W C,Sathe S K.Functional properties and in vitro digestibility of almond(Prunus dulcis L.)protein isolate[J].Food Chemistry,2000,69(2):153-160.
[13]Eknayake S,Jansz E R,Nair B M.Proximate composition,mineral and amino acid content of mature Canavalia guadiata seeds[J].Food Chemistry,1999,66(1):115-119.
[14]Tang C H,Wang X Y,Liu F,et al.Physicochemical and conformational properties of buckwheat protein isolates:influence of polyphenol removal with cold organic solvents from buckwheat seed flours[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,2009,57(22):10740-10748.
[15]Chavan U D,McKenzie D B,Shahidi F.Functional properties of protein isolates from beach pea(Lathyrus maritimus L.)[J].Food Chemistry,2001,74(2):177-178.
[16]Hojilla- Evangelista M P,Evangelista R L.Functional properties of protein from Lesquerella fendleri seed and press cake from oil processing[J].Industrial Crops and Products,2009,29(2):466-472.
[17]Mwanjala A M,Kharidah M,Jamilah B,et al.Influence of altered solvent environment on the functionality of pigeonpea(Cajanus cajan)and cowpea(Vigna unguiculata)protein isolates[J].Food Chemistry,2000,71(2):157-165.
[18]DiaelDin M R,Elfadil E B,Abdullahi H E.Fractionation,solubility and functional properties of cowpea(Vigna unguiculata)proteins as affected by pH and/or salt concentration[J].Food Chemistry,2004,84(2):207-221.
[19]Chau C F,Cheung K,Wang Y S.Functional properties of protein isolates from three indigenous legume seeds[J].Journal of Agricultural and Food Chemistry,1997,45(7):2500-2503.