宗 羽,何巧紅,陳恒武
(浙江大學(xué)微分析系統(tǒng)研究所,浙江杭州 310058)
抗體微陣列技術(shù)是蛋白質(zhì)微陣列技術(shù)的一個(gè)重要技術(shù)平臺(tái),是以抗體作為捕獲分子,以點(diǎn)陣的形式固定于載體表面,利用抗原—抗體間的特異性反應(yīng)實(shí)現(xiàn)對(duì)目標(biāo)分子的分析檢測(cè)。近年來(lái),該技術(shù)被廣泛應(yīng)用于蛋白質(zhì)組學(xué)研究和疾病診斷、藥物篩選、毒理學(xué)和藥學(xué)、環(huán)境和食品分析等研究領(lǐng)域[1,2]。與DNA基因芯片相比,抗體微陣列芯片目前依然面臨諸多挑戰(zhàn)與困難,其中,如何將抗體高效地固定在芯片基底上是研制抗體微陣列芯片的關(guān)鍵問(wèn)題之一。近年來(lái),人們嘗試了多種微陣列基底材料和固定技術(shù),以增加抗體在基底表面的吸附量和穩(wěn)定性,進(jìn)而提高檢測(cè)信號(hào)強(qiáng)度和方法的靈敏度[3]。
聚二甲基硅氧烷(polydimethylsiloxane,PDMS)是一種生物兼容性良好的有機(jī)聚合物,由于具有良好的透光性、透氣性,且價(jià)格低廉,加工簡(jiǎn)單,近幾年來(lái)被廣泛用作制備微流控芯片和DNA陣列芯片的材料[4]。PDMS表面疏水,易吸附蛋白質(zhì),因此,它是一種理想的制備抗體微陣列基底材料。為了進(jìn)一步提高PDMS表面對(duì)抗體的吸附能力,文獻(xiàn)[4~6]報(bào)道了各種物理或化學(xué)表面修飾技術(shù),其中,改變表面形貌,增加比表面是一種有效的措施[7~9]。
本文將化學(xué)濕法刻蝕和軟刻蝕技術(shù)相結(jié)合,以HF刻蝕后的載玻片為陽(yáng)模,直接澆注制得3D微納結(jié)構(gòu)的PDMS基片,建立了一種簡(jiǎn)單、快捷、高效的抗體微陣列芯片加工新技術(shù),并將所制得的3D結(jié)構(gòu)PDMS芯片應(yīng)用于非均相免疫分析。
1.1.1 濕法刻蝕制作具有微納結(jié)構(gòu)的玻璃陽(yáng)模
載玻片(長(zhǎng)75 mm×寬25 mm×厚1 mm)用水洗凈,吹干。載玻片的背面貼上保護(hù)用的黃膠帶,將其放入濃HF含量≥40%刻蝕液中,20℃下,恒溫振蕩,刻蝕10 min,用水洗凈,吹干,制得表面具有微納結(jié)構(gòu)的玻璃陽(yáng)模。
1.1.2 澆注法制作具有微納結(jié)構(gòu)表面的PDMS基片
按照文獻(xiàn)[10]的方法澆注PDMS,即將PDMS預(yù)聚物和固化劑以質(zhì)量比為10∶1的比例充分混合、脫氣后倒在玻璃陽(yáng)模上。待混合物鋪展均勻后,將其置于75℃下加熱1.5 h,固化、脫模,制得具有3D微納結(jié)構(gòu)表面的PDMS基片。為確保PDMS基片的厚度為1 mm,控制每次澆注所需混合物的量為40 mg/cm2。
將制得的PDMS基片(3D微納結(jié)構(gòu)面朝上)置于另一潔凈的的載玻片上。將5 μL Cy3-羊抗人IgG溶液等間隔地點(diǎn)于PDMS表面,形成抗體微陣列(每點(diǎn)直徑約為2.5 mm,點(diǎn)間隔為1~2 mm)。在恒濕器(相對(duì)濕度為82%RH)內(nèi)室溫放置2 h,用細(xì)的濾紙卷吸去抗體殘液,再依次用PBS溶液、超純?nèi)ルx子水清洗數(shù)次,氮?dú)獯蹈伞?/p>
將上述吸附有Cy3-羊抗人IgG的 PDMS面朝下,緊貼于另一潔凈的載玻片上,插入生物芯片掃描儀的芯片池,檢測(cè)點(diǎn)陣斑點(diǎn)的熒光強(qiáng)度。芯片掃描儀的實(shí)驗(yàn)參數(shù):激發(fā)/發(fā)射波長(zhǎng)分別為543/570 nm,強(qiáng)度為80%,掃描分辨率為10 μm。
按照1.2節(jié)相同的方法制備抗體微陣列,即先將羊抗人IgG(25 mg/L),吸附固定于PDMS表面,形成抗體微陣列。接著用1%BSA溶液室溫封閉過(guò)夜(或37℃下封閉2 h),再在各斑點(diǎn)上依次加入不同濃度的人IgG(0.01~100 mg/L)和Cy3-羊抗人IgG溶液(10mg/L),各反應(yīng)1h。每步反應(yīng)結(jié)束后,均用濾紙吸干溶液,PBS溶液和超純?nèi)ルx子水清洗數(shù)次,氮?dú)獯蹈伞S蒙镄酒瑨呙鑳x檢測(cè)斑點(diǎn)熒光強(qiáng)度。非均相免疫反應(yīng)的過(guò)程如圖1。
圖1 微陣列芯片上的非均相免疫分析流程示意圖Fig 1 Schematic diagram of the procedure of heterogeneous immunoassay on microarray chip
以HF為刻蝕劑的化學(xué)濕法刻蝕技術(shù)常被用于加工玻璃微流控芯片的通道。玻璃含有SiO2,Na2O,CaO和MgO等主要成分,而室溫下CaF2和MgF2的溶度積常數(shù)分別為2.7 ×10-11和6.4 ×10-9,因此,HF 刻蝕玻璃過(guò)程中產(chǎn)生了難溶化合物CaF2和MgF2。隨著刻蝕的進(jìn)行,產(chǎn)生的沉淀微粒沉積在通道表面,充當(dāng)掩模層阻止HF溶液進(jìn)一步均勻地刻蝕下層玻璃,致使通道表面變粗糙[11~13]。該現(xiàn)象對(duì)于芯片毛細(xì)管電泳等分離分析是極為不利的,將嚴(yán)重影響系統(tǒng)分離的效率。
本文利用上述現(xiàn)象來(lái)制備具有3D微納結(jié)構(gòu)的玻璃陽(yáng)模。研究表明,刻蝕后玻璃表面的粗糙化程度與刻蝕速率、刻蝕時(shí)間等有關(guān)。HF濃度越大,難溶性氟化物的聚集沉降速度越快。采用濃氫氟酸作刻蝕液,可以快速地在表面形成一定厚度和致密程度的阻擋層,覆蓋在玻璃的上表面。隨著刻蝕的進(jìn)行,刻蝕液必須穿過(guò)這層阻擋層才能進(jìn)一步刻蝕玻璃表面,結(jié)果導(dǎo)致后續(xù)的刻蝕速率不均勻,刻蝕后在表面形成了凹凸結(jié)構(gòu)。圖2為不同刻蝕時(shí)間(0,5,10,20,30min)下制得的玻璃陽(yáng)模表面形態(tài)圖。由光學(xué)顯微鏡CCD圖像(a1~e1)可見(jiàn),刻蝕后的載玻片表面出現(xiàn)μm級(jí)凹凸不平紋路,而且隨著刻蝕時(shí)間的增長(zhǎng),表面粗糙度增加,紋路加深加密,這可能是由于刻蝕時(shí)間的延長(zhǎng),附著在表面的沉淀阻擋層厚度、致密程度逐漸增加,刻蝕不均勻性也逐漸增加所導(dǎo)致。用原子力顯微鏡進(jìn)一步對(duì)載玻片表面的微區(qū)域進(jìn)行表征分析,結(jié)果如圖2中的(a2~e2)所示??梢?jiàn),經(jīng)過(guò)HF刻蝕后的載玻片表面不僅形成μm結(jié)構(gòu),同時(shí)在微結(jié)構(gòu)內(nèi)還套有nm結(jié)構(gòu),如果將載玻片表面的μm結(jié)構(gòu)比擬成山脈似的大地皺褶,那么,nm結(jié)構(gòu)就類似于山脈中致密樹(shù)林。經(jīng)過(guò)NanoScope 5.31R1軟件計(jì)算可知,未刻蝕的載玻片表面比較光滑,粗糙度(Rq)為 1.5 nm,經(jīng)過(guò) 5,10,20,30 min刻蝕后,微區(qū)域內(nèi)的平均粗糙度分別為 7.7,14.6,24.0,37.3 nm。因此,隨著刻蝕時(shí)間的增加,玻璃表面 nm結(jié)構(gòu)的粗糙度隨之增加。
澆注法是PDMS芯片最基本的制備方法,以玻璃為陽(yáng)模澆注PDMS,成型后易脫模。本研究以不同刻蝕程度的玻璃為陽(yáng)模澆注得到PDMS基片,其光學(xué)顯微鏡CCD圖如圖3(a1~e1)所示??梢?jiàn),通過(guò)澆注復(fù)制得到的PDMS基片表面與陽(yáng)模一樣具有3D結(jié)構(gòu)。
圖2 經(jīng)過(guò)不同刻蝕時(shí)間得到的顯微鏡玻璃陽(yáng)模表面形態(tài)圖(a1~e1)為CCD圖;(a2~e2)為AFM圖;刻蝕條件:濃HF含量≥40%,20℃Fig 2 Morphological images of glass templates by microscope at different etching time(a1 ~e1)CCD images,(a2 ~ e2)AFM images.tching conditions:hydrofluoric acid(HF content of≥ 40%),20℃
圖3 顯微鏡下PDMS基片的表面形態(tài)圖(a1~e1)為CCD圖;(a2,b2)分別為HF未刻蝕和刻蝕10 min的玻璃陽(yáng)模復(fù)制所得的PDMS表面AFM圖Fig 3 Morphological images of PDMS templates.(a1 ~ e1)CCD images,(a2,b2)AFM images of PDMS substrate replicated from 0 and 10 min HF etching glass templates
從未刻蝕(平板)和刻蝕10 min的玻璃作陽(yáng)模所得的PDMS的AFM圖[圖3中的(a2,b2)]計(jì)算可知,其粗糙度分別為0.9,8.5 nm。至于復(fù)制得到PDMS基片的表面粗糙度總體比玻璃陽(yáng)模的要小,其原因是多方面的,主要原因可能是:1)兩者的材質(zhì)硬度不一樣,對(duì)AFM檢測(cè)時(shí)的響應(yīng)能力不同;2)PDMS混合液的粘度大、浸潤(rùn)性差,澆注時(shí)可能不能完全滲透至微納結(jié)構(gòu)的最底部;3)PDMS澆注成型后會(huì)可能會(huì)有些自然收縮。
考察了不同刻蝕時(shí)間下陽(yáng)模所澆注出的PDMS對(duì)抗體的吸附能力,結(jié)果如圖4所示。顯然,經(jīng)刻蝕產(chǎn)生的表面微納結(jié)構(gòu)可顯著提高PDMS對(duì)抗體的吸附能力,而且隨著刻蝕時(shí)間的增加,表面粗糙度增加,對(duì)抗體的吸附能力也逐漸增強(qiáng)。與平板PDMS(未經(jīng)HF刻蝕的玻璃為陽(yáng)模澆注所得)相比,當(dāng)刻蝕時(shí)間大于10 min,抗體的吸附量可提高5~6倍。PDMS基片上吸附的Cy-3-羊抗人IgG抗體的熒光陣列掃描圖上可以看出,各斑點(diǎn)的熒光強(qiáng)度比較均勻,說(shuō)明抗體的分布均勻。
此外,從圖中各點(diǎn)熒光強(qiáng)度的誤差線可以看出,刻蝕10 min以內(nèi)澆注所得的PDMS表面上形成的抗體斑點(diǎn)熒光強(qiáng)度的重現(xiàn)性良好。對(duì)于1μg/mL的Cy3-羊抗人IgG,熒光信號(hào)強(qiáng)度精密度RSD<15%(n=15);當(dāng)刻蝕時(shí)間超過(guò)20 min,斑點(diǎn)熒光強(qiáng)度的精密度有所下降,這可能是表面過(guò)于粗糙所引起的不均勻性所致。
圖4 PDMS表面粗糙度對(duì)抗體吸附量的影響Fig 4 Effect of surface roughness on the amount of antibody immobilized on the PDMS surface.
因此,綜合考慮表面對(duì)抗體的吸附能力和重現(xiàn)性,刻蝕時(shí)間為10 min的玻璃作PDMS的陽(yáng)模是一種較理想的選擇。
以刻蝕10min所得的玻璃為陽(yáng)模,澆注得到具有3D微納結(jié)構(gòu)的PDMS基片,并將其用于微陣列非均相免疫分析。以人IgG為分析模型,按照1.3節(jié)的方法進(jìn)行免疫反應(yīng),結(jié)果如圖5所示。研究結(jié)果表明,3D結(jié)構(gòu)的PDMS基片較平板PDMS基片免疫反應(yīng)熒光信號(hào)增強(qiáng),熒光強(qiáng)度為平板PDMS基片上的5倍左右。其中,人IgG濃度在0.01~10 mg/L范圍內(nèi),免疫反應(yīng)所得熒光強(qiáng)度與抗原濃度呈良好的線性相關(guān)性,平板和刻蝕10 min澆注所得的PDMS基片上抗原濃度—熒光強(qiáng)度的線性方程分別為
式中y為熒光強(qiáng)度,x為人IgG抗原濃度(mg/L)。
初步實(shí)驗(yàn)表明:3D微納結(jié)構(gòu)PDMS芯片可有效提高免疫分析的靈敏度。
圖5 人IgG微陣列免疫分析結(jié)果Fig 5 Result of immunoassay of human IgG microarray
采用常規(guī)的化學(xué)濕法刻蝕技術(shù)和軟刻蝕技術(shù)相結(jié)合,研究建立了一種快速、簡(jiǎn)單、高效的抗體微陣列免疫傳感芯片制作方法。這種制作方法不需要特殊的MEMS/NEMS技術(shù),制得的陽(yáng)模耐用性強(qiáng),可以重復(fù)多次使用。研究結(jié)果表明:利用該方法制得的3D微納結(jié)構(gòu)PDMS芯片,可顯著提高抗體的吸附能力和免疫分析方法的靈敏度,所建立的制備方法可為構(gòu)建高效、高靈敏度的抗體微陣列檢測(cè)提供一定的技術(shù)保障。
[1] Figeys D.Adapting arrays and lab-on-a-chip technology for proteomics[J].Proteomics,2002,2(4):373 -382.
[2] Templin M F,Stoll D,Schwenk J M,et al.Protein microarrays:Promising tools for proteomic research[J].Proteomics,2003,3(11):2155-2166.
[3] Henares T G,Mizutani F,Hisamoto H.Current development in microfluidic immunosensing chip[J].Analytica Chimica Acta,2008,611(1):17 -30.
[4] Zhou J W,Ellis A V,Voelcher N H.Recent developments in PDMS surface modification for microfluidic devices[J].Electrophoresis,2010,31(1):2 -16.
[5] Sui G D,Wang J Y,Lee C C,et al.Solution-phase surface modification in intact poly(dimethylsiloxane)microfluidic channels[J].Analytical Chemistry,2006,78(15):5543 -5551.
[6] Wang Y L,Lai H H,Bachman M,et al.Covalent micropatterning of poly(dimethylsiloxane)by photografting through a mask[J].Analytical Chemistry,2005,77(23):7539 -7546.
[7] Vlachopoulou M E,Tserepi A,Petrou P S,et al.Protein arrays on high-surface-area plasma-nanotextured poly(dimethylsiloxane)-coated glass slides[J].Colloids and Surfaces B:Biointerfaces,2011,83(2):270 -276.
[8] Liu C C.Rapid fabrication of microfluidic chip with three-dimensional structures using natural lotus leaf template[J].Microfluid Nanofluid,2010,9(4 -5):923 -931.
[9] Kim S Y,Yu J,Son S J,et al.Signal enhancement in a protein chip array using a 3D nanosurface[J].Ultramicroscopy,2010,110(6):659-665.
[10] Ma D,Chen H W,Shi D Y,et al.Preparation and characterization of thermo-responsive PDMS surfaces grafted with poly(N-isopropylacrylamide)by benzophenone-initiated photopolymerization[J].Journal of Colloid and Interface Science,2009,332(1):85 -90.
[11] He Q H,Chen S,Su Y,et al.Fabrication of 1D nanofluidic channels on glass substrate by wet etching and room-temperature bonding[J].Analytica Chimica Acta,2008,628(1):1 -8.
[12] Lin C H,Lee G B,Lin Y H,et al.A fast prototyping process for fabrication of microfluidic systems on soda-lime glass[J].Journal of Micromechanics and Microengineering,2001,11(6):726 -732.
[13] Iliescu C,Tay F E H.Wet etching of glass[C]∥International Semiconductor Conference,2005,1 -2:35 -44.