冉秀芝,雷 波,梁 穎,李加納,李 波,柴友榮
(1.重慶理工大學(xué)化學(xué)化工學(xué)院,重慶 400054;2.貴州省煙草科學(xué)研究所,貴陽(yáng) 550081;3.重慶市油菜工程研究中心,重慶 400716;4.重慶市公安局,重慶 401147)
木質(zhì)素是自然界中的第二大聚合物,是由多種簡(jiǎn)單的苯丙烷及其衍生物經(jīng)聚合形成的復(fù)雜的聚合物[1]。在木質(zhì)素生物合成中有許多酶參與,其中:對(duì) - 香豆酸連接酶(E.C.6.2.1.12,p-coumarate-CoA ligase,4CL)是苯丙烷代謝總途徑的最后一個(gè)酶,可為大量天然化合物的合成提供前體物質(zhì)(包括木質(zhì)素);5-羥基阿魏酸羥化酶(EC None,ferulate 5-h(huán)ydroxylase,F(xiàn)5H)是一種 P450 依賴的單加氧酶,是S-木質(zhì)素合成中的必須環(huán)節(jié);松柏醇脫氫酶 (E.C.1.1.1.195,cinnamyl-alcohol dehydrogenase dehydrogenase,CAD)是合成木質(zhì)醇的最后一步反應(yīng)的酶,其功能是將CCR的還原產(chǎn)物再還原為相應(yīng)的松柏醇,為木質(zhì)素的聚合提供相應(yīng)的、直接的前體物質(zhì)。
有關(guān)木質(zhì)素生物合成的酶學(xué)研究表明,在木質(zhì)素的生物合成途徑中,4CL、F5H、CAD都是關(guān)鍵酶之一[2-3]。前期有關(guān)木質(zhì)素甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種皮木質(zhì)素及相關(guān)酶的比較研究表明,在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的種皮中都可能存在木質(zhì)素生物合成的苯丙烷代謝途徑,4CL、CAD和F5H均參與了該代謝途徑[4]。為了深入分析甘藍(lán)型黃籽油菜種皮中木質(zhì)素含量差異形成的分子生物學(xué)機(jī)制,本研究以1對(duì)甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的近等基因系為材料,研究了木質(zhì)素生物合成部分關(guān)鍵酶4CL、F5H和CAD在黃、黑籽油菜的不同組織中的表達(dá)差異,為油菜的分子育種和優(yōu)質(zhì)育種提供重要的理論依據(jù)。
1)植物材料:1對(duì)甘藍(lán)型黃、黑籽油菜近等基因系(黃籽:L2,黑籽:L1),來(lái)源于甘藍(lán)型黑籽油菜×芥菜型黃籽油菜的后代。
2)實(shí)驗(yàn)技術(shù)路線:取供試材料的花、蕾和不同發(fā)育時(shí)間的種子為材料,先抽提RNA,再經(jīng)反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,進(jìn)行表達(dá)差異的研究,其流程如圖1所示。
圖1 甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種皮的木質(zhì)生物合成酶表達(dá)研究流程
1)RNA的抽提。使用上海華舜生物工程有限公司的小量植物 (葉)總 RNA抽提試劑盒(W6771)。苯酚/氯仿標(biāo)準(zhǔn)裂解步驟:① 液氮冷凍條件下將植物葉搗碎成粉末,待液氮自然揮發(fā)后,加入1 mL RD液,立即用移液器抽打5次以懸浮樣品,將勻漿液移入1.5 mL離心管中,蓋上蓋子,高速振蕩2 min;② 室溫靜置 5 min后,加入200 μL氯仿,用力顛倒離心管混勻,室溫靜置使之分層,15 000 r/min離心5 min,小心地移取水相至1.5 mL離心管中;③加入一半體積的75% 乙醇,徹底混勻后,全部移入吸附柱,離心30 s,倒掉收集管中的液體,將吸附柱移入同一個(gè)收集管中;④加入500 μL RP液,離心30 s,將吸附柱移入另外一個(gè)干凈的收集管中;⑤ 加入 500 μL W3液,靜置1 min后,離心15 s,棄收集管中的液體,將吸附柱移入同一個(gè)收集管中;⑥ 加入 500 μL W3液,離心15 s;⑦倒掉收集管中的液體,將吸附柱移入同一個(gè)收集管中,離心1 min;⑧ 將吸附柱放入另外一個(gè)干凈的1.5 mL離心管中,在吸附膜中央加入50 μL純水,室溫靜置1 min后,離心 1 min,將1.5 mL離心管(RNA)貯存于-70℃待用。
2)去除RNA中的基因組DNA。①在微量離心管中配制下列反應(yīng)液(含量50 mL):總RNA 20 ~50 μg,10 × DNaseⅠ Buffer 5 μL,DNaseⅠ(RNase-free,5 U/μL)2 μL,RNase Inhaibitor(40 U/μL)0.5 μL,用 DEPC H2O 補(bǔ)加至 50 mL;②37℃反應(yīng) 20 ~30 min,加入 50 μL DEPC H2O;③加入 100 μL(等量)苯酚/氯仿/異戊醇(5∶24∶1),充分混勻;④ 離心,取上層(水層)移至另一微量離心管中,加入100 μL(等量)苯酚/氯仿/異戊醇(5∶24∶1),充分混勻;⑤ 離心,取上層(水層)移至另一微量離心管中,加入10 μL(1/10量)的3M NaOAc(pH值為5.2);⑥ 加入250 μL(2.5倍量)的冷無(wú)水乙醇,-20℃放置30~60 min;⑦ 離心,回收沉淀,用70%的冷乙醇清洗沉淀,真空干燥;⑧用適量的DEPC H2O溶解后,進(jìn)行Agarose檢測(cè)電泳以確認(rèn)是否除去基因組DNA。
3)反轉(zhuǎn)錄合成cDNA第1鏈(20 μl反應(yīng)體系)。使用Invitrogen公司的SuperScriptTMII RTPCR 試劑盒(適用于10 pg~5 μg總 RNA),具體操作步驟:①在滅菌的小離心管中加入以下幾種成分:50 ng/μL 隨機(jī)引物 1 μL,總 RNA 5 μg,pH值為7.0的10 mM dNTP混合物1 mL,用無(wú)菌的蒸餾水補(bǔ)充至13 mL;② 在65℃溫育5 min,然后冰浴至少1 min;③用另一只滅菌的試管將以下各成分按照順序加入:5×First-strand Buffer 4 mL,0.1M DTT 1mL,RNaseOUTTMRecombinant RNase Inhibitor(Cat.no.10777 - 019,40 U/μL)1 mL,SuperScriptTMⅢ RT(200 U/μL)1 mL(以上是1個(gè)樣品的量,如果有多個(gè)樣品的話,應(yīng)該加倍),然后小心地充分混勻,離心;④ 在各反應(yīng)管中加入上述混合液,25℃溫育5 min;⑤ 在50℃反應(yīng)60 min;⑥ 用70℃下15 min后中止反應(yīng),然后在冰上冷卻;⑦ 離心收集反應(yīng)混合物,放置在-20℃ 備用。
F4CLC5'-TACATCCCTAACCACCTCCCTCTC-3'(24nt,Mw=7150.7,Tm=66.28,對(duì)應(yīng)于 At4CL1 gene(AF106084)的185~208bp);
R4CLC5'-TCTAGCTCAGCTGGAGCCACCTG-3'(23nt,Mw=7062.6,Tm=68.12,互補(bǔ)于 At4CL1 gene(AF106084)的1509~1487bp)。
2)CAD基因引物。根據(jù)AtCAD5和AtCAD4基因的公共保守區(qū)設(shè)計(jì)十字花科CAD基因家族總體表達(dá)檢測(cè)引物(引物不跨內(nèi)含子),其序列如下:
FCAD545'-GTGGGATCAGATGTGAGCAAGTTC-3'(24nt,Mw=7534.9,Tm=64.57,對(duì)應(yīng)于 At-CAD5 mRNA(AY302082)的232~255bp);
RCAD545'-ACCGCCATTCCTTCTGGAATCTT-3'(23nt,Mw=6987.6,Tm=62.77,互補(bǔ)于 AtCAD5 mRNA(AY302082)的464~442bp)。
3)十字花科F5H基因引物。根據(jù)已報(bào)道的甘藍(lán)型油菜F5H基因家族3個(gè)成員cDNA的保守區(qū)設(shè)計(jì)甘藍(lán)型油菜F5H基因家族總體表達(dá)檢測(cè)引物(引物不跨內(nèi)含子),其序列如下:
FBNF5HC5'-GACTTATGACCGAGCCGACATG-3'(22nt,Mw=6806.5,Tm=64.54,對(duì) 應(yīng) 于BNF5H1 mRNA(AF214007)的386~407bp);
(2)錨索、錨桿設(shè)計(jì)巖土工程參數(shù)參考值。根據(jù)《建筑邊坡工程技術(shù)規(guī)范》(GB 50330—2002)推薦值并結(jié)合實(shí)際綜合考慮,推薦砂漿與螺紋鋼筋的粘結(jié)強(qiáng)度為2 000 kPa,砂漿與鋼絞線的粘結(jié)強(qiáng)度為2 500 kPa,砂漿與片麻巖的粘結(jié)強(qiáng)度為1 000 kPa。
RBNF5HC5'-CTTGGGAACGAAGTAACCGTCG-3'(22nt,Mw=6846.5,Tm=64.54,互補(bǔ)于BNF5H1 mRNA(AF214007)的1250~1229bp)。
以上引物的合成均由上海生工完成。
1)PCR擴(kuò)增體系。采用50 μL的擴(kuò)增體系,按照實(shí)驗(yàn)的需要加入對(duì)應(yīng)的模板,且每個(gè)基因采用相應(yīng)的引物和反應(yīng)參數(shù),PCR反應(yīng)體系如表1所示。
表1 PCR反應(yīng)體系
2)各個(gè)基因的PCR反應(yīng)參數(shù)。① 4CL的PCR反應(yīng)參數(shù):94℃,2 min→(94℃,1 min→53℃,30 s→72℃,1 min)×30 →72℃,10 min →16℃,holding;即94℃預(yù)變性2 min,隨后以94℃變性1 min、53℃退火30 s、72℃延伸1 min的條件進(jìn)行30個(gè)循環(huán)的擴(kuò)增,最后在72℃保溫10 min,以1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。②CAD的PCR反應(yīng)參數(shù):94℃,2 min→(94℃,1 min →53℃,30 s →72℃,30 s)×30 →72℃,10 min →16℃,holding;即94℃預(yù)變性2 min,隨后以94℃變性1 min、53℃退火30 s、72℃延伸30 s的條件進(jìn)行30個(gè)循環(huán)的擴(kuò)增,最后在72℃保溫10min,以2%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳檢測(cè)。③ F5H的 PCR反應(yīng)參數(shù):94℃,2 min→(94℃,1 min →61℃,1 min →72℃,1.5 min)×30 →72℃,10 min →16℃,holding;即94℃預(yù)變性2 min,隨后以94℃變性1 min、61℃退火1 min、72℃延伸1.5 min的條件進(jìn)行30個(gè)循環(huán)的擴(kuò)增,最后在72℃保溫10 min,以1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
以cDNA為模版擴(kuò)增的4CL的片段長(zhǎng)度約為1 200 bp,與預(yù)期長(zhǎng)度一致,4CL在甘藍(lán)型油菜中的表達(dá)如圖2所示。
圖2 4CL在甘藍(lán)型油菜中的表達(dá)
如圖2所示,在甘藍(lán)型黃籽油菜中,4CL在蕾期和10 d種中的表達(dá)最強(qiáng),在花和20 d種的表達(dá)次之,而在30 d種中的表達(dá)最弱;在甘藍(lán)型黑籽油菜中,4CL在10 d和30 d的種子中的表達(dá)最強(qiáng),在蕾、花和中種的表達(dá)較弱,幾乎為前兩者的1/2。4CL在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的上述各器官中的表達(dá)差異來(lái)看,在花和中種的表達(dá)差異不明顯;在蕾、幼種和老種中的表達(dá)具有明顯的差異,即在蕾期,黑籽中4CL的表達(dá)比黃籽弱,而在幼種和老種時(shí)期,黑籽中4CL的表達(dá)比黃籽強(qiáng)。另外,在種子的發(fā)育進(jìn)程中:4CL的表達(dá)在甘藍(lán)型黃籽油菜中逐漸降低,且在老種時(shí)期的表達(dá)迅速下降;4CL在甘藍(lán)型黑籽油菜種子中的表達(dá)量卻先減少后增加。因此,在種子的發(fā)育進(jìn)程中,在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜之間4CL的轉(zhuǎn)錄水平差異明顯。
在模式植物——擬南芥的4CL的3個(gè)基因家族成員中:At4CL1和At4CL2屬于Ⅰ類,主要參與木質(zhì)素和其他酚類化合物的合成;At4CL3屬于Ⅱ類,主要參與黃酮類化合物的合成。同時(shí),在擬南芥中3種同工酶基因在植物的不同器官的表達(dá)都有差異[5]。在本研究中,4CL在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中的不同器官或組織中的表達(dá)存在差異,與前人的研究結(jié)果一致。同時(shí),本研究還發(fā)現(xiàn)在不同種皮顏色的甘藍(lán)型油菜品系間,4CL在同一器官中的表達(dá)也存在差異。
Jürgen 等[6]研 究 了 擬 南 芥 的 At4CL1 和At4CL2兩種同工酶對(duì)底物的親和性,結(jié)果發(fā)現(xiàn):2種酶均能催化肉桂酸發(fā)生反應(yīng),但只有4CL1才能催化阿魏酸發(fā)生反應(yīng);而4CL2的主要功能是在4CL1反應(yīng)的下游起清除阿魏酸的作用。
前期有關(guān)木質(zhì)素含量與4CL活性關(guān)系的研究表明:在種子的發(fā)育進(jìn)程中,其活力在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中呈極顯著差異;同時(shí),木質(zhì)素含量在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中與4CL活力的相關(guān)性分別達(dá)到極顯著水平和顯著水平[4]。本研究的結(jié)果表明:在種子的發(fā)育進(jìn)程中,4CL在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜之間在轉(zhuǎn)錄水平上存在差異,特別是在30d的種子中,黑籽油菜中的4CL表達(dá)比在黃籽油菜中強(qiáng)許多倍(圖2)。因此,4CL參與了油菜的種皮形成過(guò)程中木質(zhì)素的生物合成,且轉(zhuǎn)錄水平的不同可能引起木質(zhì)素含量在黃、黑籽油菜之間的差異。
F5H在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中的表達(dá)實(shí)驗(yàn)結(jié)果如圖3所示。以cDNA為模版擴(kuò)增的F5H的片段長(zhǎng)度約為800 bp,與預(yù)期長(zhǎng)度一致。在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜之間,F(xiàn)5H在花、蕾和10 d和20 d的種子在轉(zhuǎn)錄水平上差異不明顯,而在30 d種中的差異卻十分明顯,黑籽中的表達(dá)量是黃籽中的5倍以上。同時(shí),F(xiàn)5H在種子中的表達(dá)明顯低于在花期和蕾期。在種子的發(fā)育進(jìn)程中,F(xiàn)5H的表達(dá)在甘藍(lán)型黑籽油菜中逐漸增強(qiáng),而在甘藍(lán)型黃籽油菜中的表達(dá)先增強(qiáng)后減弱,這樣,使得F5H在黑籽油菜和黃籽油菜的30 d種中的表達(dá)量的差異十分明顯。因此,在種子的發(fā)育進(jìn)程中,在甘藍(lán)型黃、黑油菜之間,F(xiàn)5H的轉(zhuǎn)錄水平差異明顯(圖3)。
圖3 F5H在甘藍(lán)型油菜中的表達(dá)
Ramesh Nair等[7](2000)從加拿大的栽培的甘藍(lán)型油菜中分離到3個(gè) F5H的基因,即BNF5H1、BNF5H2和BNF5H3,而從白菜型油菜和甘藍(lán)栽培品種的二倍體(這2種二倍體融合后得到多倍體甘藍(lán)型油菜)中分別分離得到了BNF5H1和BNF5H2,同時(shí)都分離到了BNF5H3。這3個(gè)基因的編碼區(qū)有90%的一致性,其中BNF5H1與BNF5H2的一致性更高。其研究結(jié)果表明:F5H在甘藍(lán)型油菜的莖中表達(dá)量最多,而在其種子中的表達(dá)量最少,3個(gè)基因在葉、根、蕾、花、莢果等其他組織或器官中表達(dá)量的差異很微小。
前期有關(guān)木質(zhì)素含量與F5H活性關(guān)系的研究結(jié)果表明,在種子的發(fā)育進(jìn)程中,F(xiàn)5H活力在甘藍(lán)型黑籽油菜中的活力極顯著高于甘藍(lán)型黃籽油菜;同時(shí),木質(zhì)素含量在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中與F5H活力的相關(guān)性均達(dá)到極顯著水平[4]。本研究結(jié)果表明:F5H在甘藍(lán)型油菜的花、蕾中的表達(dá)比種子中的表達(dá)強(qiáng),這與前人的研究結(jié)果一致[7];F5H在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種子中的表達(dá)量的不同,可能造成甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種子中芥子酸含量的不同,從而導(dǎo)致其轉(zhuǎn)化的芥子酰膽堿的含量也不同,進(jìn)而可能引起S-木質(zhì)素含量的不同,導(dǎo)致G/S比率下降。根據(jù)前人的研究和本試驗(yàn)的研究,可以推斷F5H在合成S-木質(zhì)素的途徑中是必不可少的一種酶,因而要改變木質(zhì)素的G/S比率,可以對(duì)F5H采取分子生物學(xué)的操作,培育生產(chǎn)上需要的甘藍(lán)型油菜的新品種。
CAD在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的花、蕾和不同成熟度的種子中的表達(dá)研究結(jié)果表明:以cDNA為模版擴(kuò)增的CAD片段長(zhǎng)度約為250 bp,與預(yù)期長(zhǎng)度一致,如圖4所示。
圖4 CAD在甘藍(lán)型油菜中的表達(dá)
在黃、黑籽油菜之間,CAD的表達(dá)在花和蕾期的差異不明顯。而在不同種子的發(fā)育時(shí)期,CAD的表達(dá)差異明顯。在10 d、20 d和30 d種中,黑籽中的表達(dá)量分別是黃籽的1.3倍、1.6倍和2.0倍以上;同時(shí),在蕾、花期中的表達(dá)比種子的不同時(shí)期的強(qiáng)。在種子的發(fā)育進(jìn)程中,CAD在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中的表達(dá)都是逐漸減弱,但在黑籽油菜中,這種減弱的趨勢(shì)比黃籽油菜要慢些,所以,在30 d種中,CAD在黃籽油菜中比在黑籽油菜中的表達(dá)弱得多(圖4)。因此,在種子的發(fā)育進(jìn)程中,在轉(zhuǎn)錄水平上,CAD在甘藍(lán)型黃、黑油菜之間也存在差異。
在模式植物擬南芥中,CAD被推定有9條CAD基因,分屬于3類,其中:Ⅰ類的CAD6的突變會(huì)引起木質(zhì)素含量和結(jié)構(gòu)的改變;Ⅱ類的CAD3、CAD4和CAD5是白楊SAD最近的同系物,優(yōu)先催化芥子醇和芥子醛,從而參與S-木質(zhì)醇合成支路[8-10]。
前期有關(guān)木質(zhì)素含量與CAD活性關(guān)系的研究結(jié)果表明:在種子的發(fā)育進(jìn)程中,CAD活力在甘藍(lán)型黑籽油菜中的活力極顯著高于甘藍(lán)型黃籽油菜;同時(shí),木質(zhì)素含量在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中與CAD活力的相關(guān)性均達(dá)到極顯著水平[4]。CAD表達(dá)差異的研究結(jié)果顯示,在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中,其表達(dá)量隨油菜種子的成熟都逐漸減少,在黃籽油菜中,下降的幅度較黑籽油菜的大,因而在30 d種中的表達(dá)量具有顯著的差異。因此,在種子的發(fā)育進(jìn)程中,CAD在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜之間的轉(zhuǎn)錄水平上也存在差異,特別是在30 d種中,黑籽油菜中的CAD表達(dá)比在黃籽油菜中強(qiáng)許多倍(圖4)。
自從梁艷麗等[11]報(bào)道在油菜種子發(fā)育過(guò)程中木質(zhì)素是導(dǎo)致黃籽皮殼率低于黑籽的原因之一后,有關(guān)木質(zhì)素導(dǎo)致種皮皮殼率低的原因鮮見(jiàn)報(bào)道。梁穎等[12]在研究甘藍(lán)型油菜種皮顏色形成相關(guān)酶與蛋白質(zhì)相關(guān)性時(shí),推測(cè)PAL、PPO和POD可能調(diào)控木質(zhì)素的合成,從而影響種皮厚度的形成。在前期L1和L2這對(duì)甘藍(lán)型黃黑籽油菜種皮發(fā)育過(guò)程中木質(zhì)素的含量與4CL、F5H和CAD三種酶活力之間呈顯著或極顯著關(guān)系[4]。本實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步研究了在轉(zhuǎn)錄水平上這3種酶在L1和L2之間的差異。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明:4CL在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜中的不同器官或組織中的表達(dá)存在差異,在相同的器官中,不同種皮顏色的甘藍(lán)型油菜品種的4CL表達(dá)也存在差異;F5H在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的花、蕾、10 d種、20 d種中的表達(dá)差異不明顯,而在30 d種中的表達(dá)差異明顯,在同一油菜品系的種子中的表達(dá)量明顯低于花和蕾;CAD在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜的花、蕾中的表達(dá)差異不明顯,而在種子的不同發(fā)育時(shí)期中表達(dá)差異明顯,在相同的油菜品系中,在蕾和花期的表達(dá)比在種子的不同發(fā)育期強(qiáng)。4CL主要以阿魏酸和肉桂酸為其催化底物參與木質(zhì)素的生物合成,而F5H對(duì)阿魏酸或松柏醛具有不同的親和性,很有可能引起G-或S-木質(zhì)素含量的不同,此外,CAD/SAD以松柏醛或芥子醛為底物參與G-或S-木質(zhì)素的生物合成,因此,這幾種酶在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種子中的表達(dá)存在差異,特別是在甘藍(lán)型黃籽油菜的30 d種中的表達(dá)都明顯低于相應(yīng)的黑籽油菜,說(shuō)明它們很有可能是導(dǎo)致木質(zhì)素含量和成分在甘藍(lán)型黃、黑籽油菜之間存在差異的主要原因之一。
作為自然界中的第二大聚合物,木質(zhì)素是植物細(xì)胞壁的重要組成成分之一,不僅對(duì)農(nóng)業(yè)、工業(yè)、環(huán)境有著重要的影響,與人們的生活也息息相關(guān),對(duì)植物體本身而言,也有重要的功能。在木質(zhì)素的生物合成過(guò)程中有很多酶參與作用,不同酶系之間有可能存在相互作用,其個(gè)體和種群間的遺傳變異和環(huán)境因素等都對(duì)木質(zhì)素的含量有不同程度的影響[13]。因此,結(jié)合細(xì)胞生物學(xué)、生物化學(xué)、分子生物學(xué)等多學(xué)科的研究手段,從不同角度來(lái)研究不同遺傳背景的油菜在不同組織、器官的木質(zhì)素的生物合成,不僅對(duì)闡明油菜種皮特性形成的生理生化機(jī)理及木質(zhì)素的生物合成機(jī)理具有重要的理論價(jià)值,并且還可以結(jié)合常規(guī)育種手段,通過(guò)對(duì)木質(zhì)素生物合成中的酶基因進(jìn)行操作,在不同組織或器官抑制或過(guò)量表達(dá)某1個(gè)或幾個(gè)酶基因,可能培育出品質(zhì)好而又具有多種抗性的油菜新品種。此外,利用分子生物學(xué)的方法來(lái)抑制或提高木質(zhì)素合成酶基因的表達(dá)量,在減少造紙用材工藝的消耗,改善牧草品質(zhì),或是通過(guò)提高木質(zhì)素含量來(lái)增強(qiáng)農(nóng)作物、樹(shù)木的機(jī)械強(qiáng)度等方面都具有重要的理論和實(shí)踐意義。
[1]冉秀芝.木質(zhì)素生物合成代謝中的酶學(xué)研究進(jìn)展[J].中國(guó)農(nóng)學(xué)通報(bào),2009,25(3):23 -27.
[2]Baucher M,Monties B,Van Montagu M,et al.Biosynthesis and genetic engineering of lignin[J].Crit Rev Plant Sci,1998,17:125 -197.
[3]Boudet A M,Lapierre C,Grima-Pettenati J.Biochemistry and molecular biology of lignification[J].New Phytol,1995,129:203 -236.
[4]RAN Xiu-zhi,LIANG Ying,LI Jia-na.Analysis of the Lignin Contents and Related Enzymes activities in Seed coat between Black-seeded and Yellow-seeded Rapes(Brassica napus L.)[J].Agricultural Science in China,2005,4(12):890 -897.
[5]Ehlting J,Buttner D,Wang Q,et al.Three 4-coumarate coenzyme A ligases in Arabidopsis Thaliana represent two evolutionarily divergent classes in angiosperms[J].The Plant Journal,1999,19:9 -20.
[6]Jürgen Ehlting,Jane J K S,Carl J D.Identification of 4-coumarate:coenzyme A ligase(4CL)substrate recognition domains[J].The Plant Journal,2001,27(5):455-465.
[7]Ramesh B N,Richard W J,Eugen Kurylo,et al.Identification of a CYP84 Family of Cytochrome P450-Dependent Mono-Oxygenase Genes in Brassica napus and Perturbation of Their Expression for Engineering Sinapine Reduction in the Seeds[J].Plant Physiology,2000,123:1623 -1634.
[8]Jeroen R,Antje R,J?rgen H C,et al.Genome-Wide Characterization of the Lignification Toolbox in Arabidopsis[J].Plant Physiology,2003,133:1051 -1071.
[9]Sibout R,Eudes A,Pollet B,et al.Expression pattern of two paralogs encoding cinnamyl alcohol dehydrogenase in Arabidopsis.Isolation and characterization of the corresponding mutants[J].Plant Physiol,2003,132:848-860.
[10]Li L,Cheng X F,Leshkevich J,et al.The last step of syringyl monolignol biosynthesis in angiosperms is regulated by a novel gene encoding sinapyl alcohol dehydrogenase[J].Plant Cell,2001,13:1567 -1586.
[11]粱艷麗,梁穎,李加納,等.甘藍(lán)型黃、黑籽油菜種皮特性比較研究[J].中國(guó)油料作物學(xué)報(bào),2002,24(4):14-18.
[12]Liang Y,Li J N.The relationship of color formation with related enzymes and protein contents in the seedcoat of oilseed rape(Brassica napus)[J].Agricultural Science in China,2004,5:384 -391.
[13]Marie B,Claire H,Michel P C.Lignin:Genetic Engineering and Impact on Pulping[J].Critical Reviews in Biochemistry and Molecular Biology,2003,38:305 -350.