唐 建 徐 達(dá) 王祥慧 周佩軍
上海交通大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬瑞金醫(yī)院移植中心,上海 200025
缺血再灌注損傷在腎移植領(lǐng)域是無(wú)法避免的事件。這一事件使得移植物抗原暴露,增加了移植物免疫原性。對(duì)移植腎的影響一方面增加早期移植腎功能延遲恢復(fù)及排斥反應(yīng)的發(fā)生率,另一方面也與移植腎長(zhǎng)期預(yù)后相關(guān)[1]。因此,積極尋找某種策略來(lái)減少移植過(guò)程中缺血再灌注損傷的發(fā)生就顯得尤為重要。較缺血性預(yù)處理相比,藥物性預(yù)處理具有無(wú)創(chuàng)、對(duì)機(jī)體損傷小的優(yōu)勢(shì),其應(yīng)用潛力巨大。因此,筆者設(shè)計(jì)本實(shí)驗(yàn),初步探討供體應(yīng)用鈣調(diào)磷酸酶抑制劑(CNIs)類藥物預(yù)處理對(duì)腎移植缺血再灌注損傷的影響及其機(jī)制。
大鼠 TNF-a ELISA 試劑盒(R&D systems,美國(guó));大鼠HSP-70 ELISA 試劑盒(R&D systems,美國(guó));酶標(biāo)儀(Labsystems Multiskan MS,芬蘭);自動(dòng)生化分析儀(Hitachi 7000,日本);組織勻漿器(Pro Scientific,美國(guó));環(huán)孢素 A(Novartis Pharma GmbH,德國(guó));他克莫司(Astellas,日本)。
雄性Lewis近交系大鼠,體重220~280 g,不限飲食。按供受體隨機(jī)分為3組:環(huán)孢素A組(CsA,10 mg/kg)、他克莫司組(Tac,1 mg/kg)、生理鹽水對(duì)照組,每組8對(duì)大鼠。另設(shè)單腎切除組(n=8)作為空白對(duì)照。腎移植24 h前各組中供體作如下預(yù)處理(表1)。
進(jìn)腹后,首先游離左輸尿管及膀胱,結(jié)扎并切斷生殖靜脈和左腎上腺靜脈,完全游離左腎。左輸尿管保留少許膀胱壁(直徑約4 mm)切斷。結(jié)扎腸系膜上動(dòng)靜脈并切斷,向上游離主動(dòng)脈及腔靜脈至1.5 cm處。在腎血管以下0.3 cm處以3-0絲線穿過(guò)主動(dòng)脈及腔靜脈留置備用。頭皮針從上方穿刺入主動(dòng)脈,結(jié)扎備用線,切斷上方腔靜脈作為流出道,以4℃腎保存液及肝素鈉灌注左腎。待左腎顏色變蒼白一致時(shí),取出左腎修整備用。
表1 腎移植24 h前各組中供的體預(yù)處理
分別游離腎血管平面以下的腹主動(dòng)脈與腔靜脈,長(zhǎng)度約2.0 cm,阻斷血流后,用9-0縫線將供腎所帶的主動(dòng)脈與受體腹主動(dòng)脈作端側(cè)吻合,此時(shí)通過(guò)尾靜脈補(bǔ)液8 mL。然后用8-0縫線將供腎所帶的腔靜脈與受體的腔靜脈作端側(cè)吻合。開(kāi)放血管移植腎在10 s內(nèi)顏色迅速變紅。用8-0縫線將輸尿管吻合于受體膀胱上。切除受體雙腎。手術(shù)結(jié)束后,送入溫室內(nèi)飼養(yǎng)。
腎移植后第3天處死大鼠,取血液標(biāo)本和移植腎標(biāo)本進(jìn)行檢測(cè)分析。
1.5.1 血清肌酐的檢測(cè) 將大鼠血漿標(biāo)本10 000 g離心20 min后取上層血清,使用自動(dòng)生化分析儀測(cè)定肌酐值。
1.5.2 移植腎組織中腫瘤壞死因子α(TNF-α)及熱休克蛋白70(HSP-70)水平的檢測(cè) 將移植腎標(biāo)本稱重,加入適量液氮,置于陶瓷研缽研磨成蛋白粉末后,移入勻漿器。按質(zhì)量體積比1∶5加入磷酸緩沖液及裂解液,4℃下3000r/min勻漿20次,轉(zhuǎn)移至離心管內(nèi),離心30 min后,小心吸取上清液作為待測(cè)樣品。采用雙抗體夾心ELISA法測(cè)定上清液中TNF-α及HSP-70濃度。具體操作分別按照試劑盒提供的說(shuō)明書(shū)進(jìn)行,每個(gè)樣本和標(biāo)準(zhǔn)品均設(shè)2個(gè)復(fù)孔,酶標(biāo)儀450 nm處測(cè)定OD值。根據(jù)OD值和工作曲線計(jì)算樣本TNF-α及HSP-70的濃度。
1.5.3 移植腎組織病理學(xué)觀測(cè) 移植腎標(biāo)本制成厚4 μm切片,經(jīng)HE染色后,置于200倍光鏡下觀察,每張切片觀察20個(gè)不同的視野,腎組織病理學(xué)改變嚴(yán)重程度的判定標(biāo)準(zhǔn)為0~3分的評(píng)分。評(píng)分規(guī)則采用Jablonski損傷評(píng)分標(biāo)準(zhǔn)[2]。
采用SPSS 16.0統(tǒng)計(jì)軟件處理數(shù)據(jù),計(jì)量資料以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差()表示,多組間的比較采用方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
與對(duì)照組相比,環(huán)孢素組[(115.12±25)μmol/L]及他克莫司組[(110.62±24)μmol/L]血清肌酐水平均明顯小于對(duì)照組[(186.25±21)μmol/L],但高于單腎切除組[(48.25±6)μmol/L],差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.001),但環(huán)孢素組與他克莫司組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.719)。
腎移植術(shù)后第 3 天,環(huán)孢素組[(574.25±75)ng/L]及他克莫司組[(567.75±66)ng/L]移植腎組織中 TNF-α水平顯著低于對(duì)照組[(880.75±112)ng/L],差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.001 5);但環(huán)孢素組與他克莫司組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.856)。
移植第 3 天,環(huán)孢素組[(217.62±23)ng/L]及他克莫司組[(219.75±37)ng/L]大鼠移植腎組織中 HSP-70 水平高于對(duì)照組[(181.88±26)ng/L],差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.011);但環(huán)孢素組與他克莫司組相比差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P=0.892)。
可見(jiàn)對(duì)照組腎小管細(xì)胞凋亡壞死,萎縮,腎小球腎小管結(jié)構(gòu)紊亂,見(jiàn)圖1。實(shí)驗(yàn)組(環(huán)孢素A組、他克莫司組)上述病理改變相對(duì)較輕。移植腎組織學(xué)評(píng)分結(jié)果:?jiǎn)文I切除組(0.23±0.14)分,對(duì)照組(2.35±0.23)分,環(huán)孢素 A 組(1.48±0.24)分,他克莫司組(1.59±0.22)分。
圖1 各組移植腎病理切片(HE染色,200倍)
缺血性預(yù)處理[3]作為一種提高器官對(duì)缺血再灌注損傷的耐受性的有效手段,目前已在很多研究中得到證實(shí),但在腎移植領(lǐng)域卻還未有應(yīng)用于臨床的報(bào)道,因?yàn)槿毖灶A(yù)處理是一種有創(chuàng)性的方法,實(shí)施過(guò)程中不可避免遇到倫理學(xué)方面的障礙以及安全性問(wèn)題,此外,缺血性與處理相關(guān)研究尚未能給出最佳的預(yù)處理時(shí)間。筆者的實(shí)驗(yàn)采用了一種不同于缺血性預(yù)處理的方法,即藥物性預(yù)處理。相對(duì)于缺血性預(yù)處理,藥物性預(yù)處理具有無(wú)創(chuàng),對(duì)機(jī)體損傷小的特點(diǎn),方法簡(jiǎn)單有效,特別是對(duì)活體供者具有廣泛的應(yīng)用前景。筆者的研究證實(shí)了在取腎術(shù)前24 h供體應(yīng)用CNIs預(yù)處理能夠有效提高對(duì)缺血的耐受性,這與Shihab等[4]的研究結(jié)果相一致。需要指出的是,Shihab等的研究在使用F334大鼠腎移植模型中觀察到供體術(shù)前24 h或7 d分別使用環(huán)孢素或他克莫司預(yù)處后,受體在術(shù)后第3天血清肌酐水平、菊粉清除率及移植腎組織學(xué)評(píng)分均有明顯改善。這說(shuō)明該類藥物預(yù)處理至少有長(zhǎng)達(dá)7 d的腎臟保護(hù)作用。由于筆者受到動(dòng)物實(shí)驗(yàn)條件的限制,所以只研究了24 h前的預(yù)處理。研究顯示了供體應(yīng)用CNIs類藥物具有缺血狀態(tài)下的腎臟保護(hù)作用,這對(duì)臨床上活體腎移植具有很好的借鑒作用。在目前臨床上活體腎移植比例日益增多的背景下,具有十分重要的意義。
關(guān)于缺血再灌注損傷保護(hù)作用的研究,目前都是建立在非移植模型條件下,無(wú)法排除在腎移植過(guò)程中復(fù)雜的免疫環(huán)境及血流動(dòng)力學(xué)不穩(wěn)定狀態(tài)所帶來(lái)的干擾和偏倚。所以筆者選擇了在腎移植模型下術(shù)前對(duì)供體使用藥物進(jìn)行預(yù)處理,這更接近臨床腎移植過(guò)程。而使用Lewis近交系大鼠,最大限度降低了排斥反應(yīng)對(duì)實(shí)驗(yàn)結(jié)果的干擾。我們之所以選擇供體作為預(yù)處理對(duì)象而不選擇受體是因?yàn)楣w預(yù)處理之后能夠在缺血保存期內(nèi)提供對(duì)腎臟的保護(hù)作用,而把受體作為預(yù)處理對(duì)象時(shí)顯然不能在供腎缺血保存期發(fā)揮作用。本研究在國(guó)內(nèi)首次利用大鼠腎移植模型研究了供體藥物性預(yù)處理對(duì)于接下來(lái)的腎移植過(guò)程中缺血再灌注的影響。對(duì)于如何減少腎移植過(guò)程中缺血再灌注損傷,提出了一種從供體角度入手的新思路。
目前對(duì)于CNIs供體預(yù)處理機(jī)制尚不十分清楚?,F(xiàn)有的研究表明,炎癥反應(yīng)在缺血再灌注損傷中起非常重要的作用,再灌注過(guò)程中,許多炎癥因子如TNF-α、白細(xì)胞介素、趨化因子等釋放引起細(xì)胞損傷及凋亡。筆者的研究證實(shí),在大鼠腎移植過(guò)程中,TNF-α的顯著升高是造成移植腎缺血再灌注損傷的重要原因。這可能是因?yàn)樵谌毖俟嘧⑦^(guò)程中鈣調(diào)磷酸酶(calcineurin,CN)因鈣超載而大量激活,活化后的CN可以使核因子-AT(NF-AT)去磷酸化而向胞核內(nèi)轉(zhuǎn)位,從而激活包括核因子-κB(NF-κB)在內(nèi)的一系列核內(nèi)轉(zhuǎn)錄因子,NF-κB是參與免疫與炎癥反應(yīng)的重要轉(zhuǎn)錄因子,在胞核內(nèi)參與調(diào)節(jié)多種基因轉(zhuǎn)錄,包括TNF-α、白介素2(IL-2)等參與炎癥反應(yīng)。新近的研究[5]還發(fā)現(xiàn),CN激活后的NF-AT進(jìn)入胞核后,也可直接上調(diào)TNF-α的表達(dá),所有上述依賴CN的過(guò)程都可以被CNIs抑制。筆者預(yù)先對(duì)供體使用CNIs后,觀察到環(huán)孢素A組以及他克莫司組移植腎組織內(nèi)TNF-α水平比生理鹽水對(duì)照組降低,說(shuō)明在一定程度上CNIs預(yù)處理抑制了TNF-α的升高。這也與上述文獻(xiàn)結(jié)果相一致。此外,研究還發(fā)現(xiàn)該類藥物能夠抑制CN影響的NF-AT及p38 MAPK信號(hào)通路[6],從而減少TNF-a的表達(dá)。因此,筆者認(rèn)為,在腎移植供體預(yù)處理時(shí),使用CNIs能夠減少移植腎缺血再灌注時(shí)TNF-α等炎癥因子的表達(dá),從而減少缺血再灌注損傷的程度。
熱休克蛋白家族(HSP)在細(xì)胞缺氧及應(yīng)激狀態(tài)下的高表達(dá),被認(rèn)為是細(xì)胞抗凋亡作用的重要機(jī)制。特別是HSP-70對(duì)氧化應(yīng)激、電離射線、TNF-α等引起的細(xì)胞凋亡具有保護(hù)作用,其作用機(jī)制與HSP抑制應(yīng)激激活蛋白激酶,抑制細(xì)胞凋亡基因p53和Bax的表達(dá),抑制凋亡信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)中的蛋白水解酶和抑制氧自由基生成,以及對(duì)細(xì)胞線粒體功能的保護(hù)作用有關(guān)[7]。筆者的研究結(jié)果表明,CNIs預(yù)處理之后可以在移植腎組織內(nèi)觀察到HSP-70的表達(dá)水平增加。這可能使缺血再灌注發(fā)生時(shí)細(xì)胞保護(hù)作用得到加強(qiáng)。至于CNIs預(yù)處理引起HSP-70表達(dá)升高的機(jī)制目前還不十分清楚,尚待進(jìn)一步研究。
雖然實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示TNF-α和HSP-70的表達(dá)變化是CNIs供體預(yù)處理減少腎移植缺血再灌注損傷的重要原因,但從目前的研究看來(lái),參與缺血再灌注損傷的機(jī)制遠(yuǎn)非上述兩種,因?yàn)槿毖俟嘧⑦^(guò)程中各種損傷與抗損傷機(jī)制互相影響,其調(diào)控網(wǎng)絡(luò)非常復(fù)雜,諸多關(guān)鍵因子仍未完全確定。目前,HSP-70作為一種抗凋亡蛋白,其減少缺血再灌注損傷的作用受到較多關(guān)注,但遠(yuǎn)非唯一的保護(hù)機(jī)制。其他諸如HIFs積聚效應(yīng)[8]、血紅素加氧酶系統(tǒng)[9]、Fas及其配體、Caspases-1和Caspases-3等信號(hào)分子均有可能參與其中[10]。因此,鈣調(diào)磷酸酶抑制劑供體預(yù)處理顯示的腎臟保護(hù)作用,其詳細(xì)機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。
[1]Troppman C,Gillingham KJ,Benedetti E,et al.Delayed graft function,acute rejection,and outcome after cadaver renal transplantation:A multivariate analysis[J].Transplantation,1995,59: 962.
[2]Gardner MP,Houghton DC,Andoh TF,et al.Clinically relevant doses and blood levels produce experimental cyclosporine nephrotoxicity when combined with nitric oxide inhibition [J].Transplantation,1996,61:1506.
[3]Joan Torras Ambros,Immaculada HF,OG Borau,et al.Ischemic preconditioning in solid organ transplantation:from experimental to clinics[J].Transplant International,2007,219:229.
[4]Fuad S Shihab,William M Bennett,Takeshi F Andoh.Donor preconditioning with a calcineurin inhibitor improves outcome in rat syngeneic kidney transplantation[J].Transplantation,2009,87(3):326-329.
[5]Lawrence MC,Naziruddin B,Levy MF,et al.Calcineurin/NFAT and MAP kinase signaling induce TNF-alpha gene expression in pancreatic islet endocrine cells[J].J Biol Chem,2011,286(2):1025-1036.
[6]Lim HW,New L,Han J,et al.Calcineurin Enhances MAPK Phosphatase-1 Expression and p38 MAPK Inactivation in Cardiac Myocytes[J].JBiol Chem,2001,276(19):15913-15919.
[7]Polla BS,Kantengwa S,F(xiàn)rancois D,et al.Mitochondria are selective targets for the protective effects of heat shock against oxidative injury[J].Proc Natl Acad Sci USA 1996;93:6458.
[8]Tormos KV,Chandel NS.Inter-connection between mitochondria and HIFs[J].J Cell Mol Med,2010,14(4):795-804.
[9]Woude FJ,Schnuelle P,Yard BA.Preconditioning strategies to limit graft immunogenicity and cold ischemic organ injury[J].J Investig Med,2004,52(5):323-329.
[10]Yang CW,Ahn HJ,Han HJ,et al.Pharmacological preconditioning with low-dose cyclosporine or FK506 reduces subsequent ischemia/reperfusion injury in rat kidney[J].Transplantation,2001,72:1753.