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        siRNA靶向沉默B7-H4基因?qū)θ饲傲邢侔〥U145細(xì)胞增值和凋亡的影響

        2012-07-04 09:10:34朱森良孫曉青
        河南外科學(xué)雜志 2012年6期
        關(guān)鍵詞:前列腺癌檢測(cè)

        朱森良 孫曉青

        1)徐州醫(yī)學(xué)院腫瘤實(shí)驗(yàn)室 徐州 221002 2)徐州醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院泌尿外科 徐州 221002

        前列腺癌是老年男性生殖系統(tǒng)常見的惡性腫瘤之一,以手術(shù)和內(nèi)分泌治療為主。對(duì)于晚期、復(fù)發(fā)性或激素非依賴性的患者尚無有效治療方案。國(guó)內(nèi)外許多學(xué)者都在探求基因水平的調(diào)控方法和尋找治療新靶點(diǎn),以期在前列腺癌的治療上取得突破。B7-H4(也稱為B7x,B7S1)是最近發(fā)現(xiàn)的B7家族負(fù)性協(xié)同刺激分子[1-3]。近年來的研究發(fā)現(xiàn)B7-H4在多種腫瘤細(xì)胞中異常表達(dá),可溶性B7-H4還見于腫瘤病人的血液樣本中,且與腫瘤發(fā)生、發(fā)展及預(yù)后狀況存在密切關(guān)系[4-5],因此,認(rèn)為B7-H4可能是腫瘤基因治療的分子靶點(diǎn)之一。RNA干擾(RNA interference,RNAi)是一種雙鏈RNA分子在mRNA水平上誘發(fā)的轉(zhuǎn)錄后基因沉默機(jī)制(PTGS)[6]。由于RNAi對(duì)基因表達(dá)的阻斷具有高效、特異性,已迅速發(fā)展成為代替基因敲除的遺傳工具。目前已廣泛應(yīng)用于泌尿系腫瘤生物治療的研究[7-9]。本研究應(yīng)用siRNA沉默人前列腺癌DU145細(xì)胞的B7-H4基因,觀察其對(duì)DU145細(xì)胞增殖凋亡的影響,為前列腺癌的基因治療提供理論依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 材料 (1)細(xì)胞株(人前列腺癌DU145細(xì)胞株購(gòu)自中科院上海細(xì)胞研究所)。(2)主要試劑:3條B7-H4 siRNA及陰性對(duì)照siRNA由上海吉瑪制藥技術(shù)有限公司合成;Ham’sF12培養(yǎng)基購(gòu)自Hyclone公司;胎牛血清(FBS)購(gòu)自美國(guó)Gibco公司;LipofectamineTM2000購(gòu)自Invitrogen公司;(3)反轉(zhuǎn)錄試劑盒(Prime-Script RT reagent Kit)購(gòu)自寶生物工程(大連)有限公司;(4)PCR試劑盒(Taq? Version 2.0)購(gòu)自日本TaKaRa公司;(5)B7-H4和內(nèi)參照β-actin引物由上海生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成;(6)兔抗人B7-H4多克隆抗體購(gòu)自Santa Cruz公司;(7)山羊抗兔IgG購(gòu)自北京中山金橋有限公司;(8)CCK-8購(gòu)自日本株式會(huì)社同仁化學(xué)研究所;(9)TRNzol總RNA提取試劑盒、RIPA裂解液、BCA蛋白濃度測(cè)定試劑盒(增強(qiáng)型)和AnnexinV/PI染色試劑盒均購(gòu)自北京TIANGEN公司。

        1.2 方法 細(xì)胞培養(yǎng):DU145細(xì)胞用含10%胎牛血清、1×105U/L青霉素及100 mg/L鏈霉素的Ham’sF12培養(yǎng),置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細(xì)胞達(dá)到90%匯聚時(shí)用0.25%胰蛋白酶消化傳代。在6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中按細(xì)胞數(shù)3×105/孔接種細(xì)胞,每孔加入含10%FBS的Ham’sF12培養(yǎng)基在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,轉(zhuǎn)染時(shí)細(xì)胞融合度達(dá)30% ~50%,棄去原培養(yǎng)液,用新無血清培養(yǎng)液輕洗2次,參照LipofectamineTM2000說明書進(jìn)行細(xì)胞轉(zhuǎn)染。

        1.2.1 siRNA 轉(zhuǎn)染:三條 B7-H4 siRNA:siRNA -1(897):Sense 5’-GCCCUUACCUGAUGCUAAATT-3’,Anti-sense 5’-UUUAGCAUCAGGUAAGGGCTT-3’;siRNA -2(446):sense 5’-GGCACCUACAAAUGUUAUATT-3’,Anti-sense 5’-UAUAACAUUUGUAGGUGCCTT-3’;siRNA -3(99):sense 5’-GGAGCAUAAUUAGCAUCAUTT-3’,Anti-sense 5’ -AUGAUGCUAAUUAUGCUCCTT- 3’;negative control:Sense 5’-UUCUCCGAACGUGUCACGUTT- 3’,Anti-sense 5’-ACGUGACACGUUCGGAGAATT-3’。實(shí)驗(yàn)分5組:siRNA-1組,siRNA-2組,siRNA-3組,negative control(NC)組和空白對(duì)照組。將100 pmol siRNA用250 μL無抗生素、無血清的Ham’sF12培養(yǎng)液稀釋,輕混,室溫靜置5 min,在250 μL無抗生素、無血清Ham’sF12培養(yǎng)液中稀釋5 μL LipofectamineTM2 000轉(zhuǎn)染試劑,輕混,室溫靜置5 min,混合稀釋的siRNA和轉(zhuǎn)染試劑,室溫靜置20 min,將500 μL轉(zhuǎn)染復(fù)合物加入到6孔細(xì)胞培養(yǎng)板中,混勻,在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng),轉(zhuǎn)染6 h后更換含10%胎牛血清的Ham’s F 12培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng),按照實(shí)驗(yàn)的孵育時(shí)間分別收集細(xì)胞,進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。

        1.2.2 RT-PCR檢測(cè)B7-H4表達(dá):由GenBank檢索目的基因序列,利用Primer-BLAST在線設(shè)計(jì)引物,序列如下:B7-H4上游引物5’-CACCAGGATAACATCTCTCAGTGAA -3’,下游引物5’-TGGCTTGCAGGGTAGAATGA -3’,產(chǎn)物長(zhǎng)度 120bp。同時(shí)以β-actin作為內(nèi)參照,上游引物5’-ACTCGTCATACTCCTGCT-3’,下游引物5’-GAAACTACCTTCAACTCC -3’,產(chǎn)物長(zhǎng)度255bp。參照Trizol試劑說明書提取各組細(xì)胞總RNA,紫外分光光度計(jì)測(cè)定A280和A260值,計(jì)算其濃度和純度,每一樣品重復(fù)3次。利用oligo(dT)20引物和寶生物PrimeScript RT reagent Kit試劑盒逆轉(zhuǎn)錄成cDNA,在50 μL反應(yīng)體系中按照PCR試劑盒(Taq? Version 2.0)說明書進(jìn)行擴(kuò)增,反應(yīng)條件為94℃ 2min,98℃ 10 s,55℃ 30 s,72℃ 15 s,35 個(gè)循環(huán),72℃ 5min。PCR 產(chǎn)物經(jīng)2%瓊脂糖電泳檢測(cè),電泳攝像儀掃描記錄攝影。結(jié)果用圖象處理儀(Gene Company)分析處理。測(cè)定各個(gè)條帶的灰度值,B7-H4條帶灰度值與其相應(yīng)的β-actin條帶灰度值的比值作為各組間相互比較的參數(shù)。

        1.2.3 Western blotting檢測(cè)B7-H4蛋白表達(dá):收集轉(zhuǎn)染后的5組細(xì)胞,冷PBS沖洗2次后,RIPA裂解液提取細(xì)胞總蛋白,冰浴30 min裂解混勻、4℃ 12 000 r/min離心5 min后,BCA法行總蛋白測(cè)定,SDS-PAGE凝膠電泳后,半干轉(zhuǎn)印到硝酸纖維素膜,5%脫脂奶粉封閉2 h后,加入一抗(1∶500),4℃孵育過夜,Washing buffer洗膜后,加入二抗(1∶1 000)室溫孵育2 h,Washing buffer洗膜后,NBT/BCIP顯色。內(nèi)參照選用β-actin,電泳及轉(zhuǎn)膜條件同上,其他步驟相同,待NC膜晾干后掃描儀輸出結(jié)果,結(jié)果用圖象處理儀(Gene Company)分析處理。測(cè)定各個(gè)條帶的灰度值,B7-H4條帶灰度值與其相應(yīng)的β-actin條帶灰度值的比值作為各組間相互比較的參數(shù)。

        1.2.4 CCK-8檢測(cè)細(xì)胞增殖:轉(zhuǎn)染后將各組細(xì)胞胰酶消化離心,加入適量含10%FBS的Ham’sF12培養(yǎng)基后,調(diào)整其濃度為1×104/mL的單個(gè)細(xì)胞懸液,100 μL/孔的細(xì)胞懸液接種于3個(gè)96孔板,分3組:空白組、NC組和B7-H4-siRNA-3組,每組設(shè)3個(gè)時(shí)間點(diǎn)(24 h、48 h、72 h),每個(gè)時(shí)間點(diǎn)設(shè)5個(gè)復(fù)孔,每孔100 mL。將各組細(xì)胞放入37℃、5%CO2恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每個(gè)時(shí)間點(diǎn)取出一塊相應(yīng)的96孔板,向每孔加入10 μL CCK-8溶液。放入培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)2 h后取出培養(yǎng)板,用酶標(biāo)儀測(cè)定在450 nm處的吸光度(OD值)。取各孔平均值,繪制生長(zhǎng)曲線。并計(jì)算細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率表示,細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率(IR)=(1-實(shí)驗(yàn)組平均OD值/空白對(duì)照組平均OD值)×100%。

        1.2.5 AnnexinV-FITC檢測(cè)細(xì)胞凋亡:轉(zhuǎn)染后細(xì)胞用冷的PBS洗滌2次,以1×107/mL的密度重懸細(xì)胞于1×binding buffer(含Ca2+)中,取100 μL細(xì)胞于1.5 mL塑料離心管中,加入5 μL Annexin V 和10 μL 碘化丙啶(propidium iodide,PI),輕輕混勻,避光室溫孵育15 min,每個(gè)樣品再加入400 μL 1×binding buffer,1 h內(nèi)流式細(xì)胞儀檢測(cè),AnnexinV-FITC為綠色熒光,PI為紅色熒光。獲取的數(shù)據(jù)用AnnexinV-FITC熒光強(qiáng)度為X軸,PI熒光強(qiáng)度為Y軸的散點(diǎn)圖分析。

        1.3 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 用SPSS 13.0統(tǒng)計(jì)軟件處理,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,分析方法采用單因素方差分析(One-Way ANOVA)。假設(shè)檢驗(yàn)水準(zhǔn)按α=0.05判定,P<0.05差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,所有實(shí)驗(yàn)均至少重復(fù)3次。

        2 結(jié)果

        2.1 RT-PCR法半定量檢測(cè)DU145細(xì)胞B7-H4 mRNA的表達(dá)相對(duì)量(相對(duì)于β-actin mRNA) 結(jié)果顯示擴(kuò)增片段大小與所設(shè)計(jì)的大小完全一致,分別為120bp和255bp。電泳結(jié)果可見siRNA-2和siRNA-3轉(zhuǎn)染組B7-H4 mRNA的表達(dá)水平有不同程度的下調(diào),其相對(duì)量與空白對(duì)照組,NC組比較,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中以siRNA-3轉(zhuǎn)染組下調(diào)最明顯(與siRNA -2組比,P<0.05),表達(dá)相對(duì)量約為 0.328 ±0.057。siRNA-1及NC組與空白對(duì)照組比較,差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見表1,圖1)

        表1 RT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞B7-H4 mRNA的表達(dá)(± s,n=5)

        表1 RT-PCR檢測(cè)各組細(xì)胞B7-H4 mRNA的表達(dá)(± s,n=5)

        注:*P <0.05 vs空白組、NC 組;△P <0.05 vs siRNA-2

        組別B7-H4 mRNA空白組0.778 ±0.091 NC 組 0.735 ±0.066 siRNA -1組 0.714±0.087 siRNA -2組 0.592±0.083*siRNA -3組 0.328±0.057*△

        圖2-1 RT-PCR檢測(cè)DU145細(xì)胞轉(zhuǎn)染各siRNA后B7-H4 mRNA表達(dá)Lane1:空白組;Lane 2:NC;Lane 3:siRNA-1;Lane 4:siRNA-2;Lane 5:siRNA-3

        2.2 Western-blot檢測(cè)B7-H4蛋白表達(dá)水平 各組細(xì)胞Western-blot檢測(cè)分析表明,內(nèi)參照β-actin為均一顯影條帶,siRNA-2和siRNA-3轉(zhuǎn)染組B7-H4蛋白的表達(dá)水平有不同程度的下調(diào),其相對(duì)量與空白對(duì)照組及NC組比較,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),其中以siRNA-3轉(zhuǎn)染組下調(diào)最明顯(與siRNA -2 組比,P <0.05),表達(dá)相對(duì)量約為0.153±0.023,這與 RT-PCR結(jié)果相符合,因此確定siRNA-3為最佳干擾序列,進(jìn)行后續(xù)實(shí)驗(yàn)。siRNA-1及NC組與空白對(duì)照組比較,差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P <0.05,見表2、圖2)。

        表2 Western-blot檢測(cè)各組細(xì)胞B7-H4蛋白的表達(dá) (±s)

        表2 Western-blot檢測(cè)各組細(xì)胞B7-H4蛋白的表達(dá) (±s)

        注:*P <0.05 vs空白組、NC 組;△P <0.05 vs siRNA -2組

        組別 n B7-H4蛋白空白組0.618 ±0.044 NC 組 5 0.595 ±0.041 siRNA -1 組 5 0.591 ±0.037 siRNA -2 組 5 0.457 ±0.033*siRNA -3 組 5 0.253 ±0.023 5*△

        圖3-1 Western-blot檢測(cè)轉(zhuǎn)染siRNA-1細(xì)胞B7-H4蛋白的表達(dá)Lane1:空白組;Lane 2:NC;Lane 3:siRNA-1;Lane 4:siRNA-2;Lane 5:siRNA-3

        2.3 B7-H4基因沉默對(duì)DU145細(xì)胞增殖的影響 通過CCK-8法檢測(cè)細(xì)胞吸光度,根據(jù)吸光度來評(píng)估DU145細(xì)胞的增殖情況實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,siRNA-3組對(duì)DU145細(xì)胞增殖生長(zhǎng)有明顯的抑制作用,在三個(gè)時(shí)間點(diǎn),24 h、48 h和72 h的吸光度與空白組、NC組相比較,差別有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),而空白組與NC組相比,差別無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05,見表3、圖3)。轉(zhuǎn)染siRNA-3組DU145細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率24 h、48 h、72 h依次為(25.3±1.9)%、(30.6 ±2.1)%和(34.1 ±2.2)%,提示隨著時(shí)間的延長(zhǎng),DU145細(xì)胞增殖受到抑制效果增加。

        表3 各組DU145細(xì)胞不同時(shí)間的OD值 (±s,n=5)

        表3 各組DU145細(xì)胞不同時(shí)間的OD值 (±s,n=5)

        注:*P <0.05 vs空白組、NC 組

        時(shí)間 空白組 NC組 siRNA-3組24 h 0.419 ±0.031 0.403 ±0.026 0.313 ±0.020*48 h 0.493 ±0.024 0.482 ±0.023 0.342 ±0.022*72 h 0.651 ±0.029 0.668 ±0.022 0.429 ±0.019*

        圖3 各組DU145細(xì)胞不同時(shí)間點(diǎn)的OD值(±s)

        2.4 干擾B7-H4對(duì)人前列腺癌DU145細(xì)胞凋亡的影響 流式細(xì)胞儀雙參數(shù)圖上,Annexin V和PI均陰性為正常,Annexin V陽性、PI陰性為早期凋亡細(xì)胞,Annexin V和PI均陽性為凋亡后壞死細(xì)胞及部分壞死細(xì)胞,Annexin V陰性而PI陽性則為壞死細(xì)胞,實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,各組細(xì)胞繼續(xù)培養(yǎng)48h,siRNA-3組凋亡率為(28.43±1.29)%,與空白組和NC組相比凋亡率明顯增高(P<0.05,見表4、圖4-1~圖4-3),表明沉默 B7-H4基因的表達(dá)能促進(jìn)DU145細(xì)胞的凋亡

        表4 各組DU145細(xì)胞的AnnexinV-FITC染色流式細(xì)胞儀分析結(jié)果 (±s)

        表4 各組DU145細(xì)胞的AnnexinV-FITC染色流式細(xì)胞儀分析結(jié)果 (±s)

        注:*P <0.05 vs空白組、NC 組

        組別 n 凋亡率/%空白組6.52 ±0.18 NC 組 3 6.74 ±0.21 siRNA -3 組 3 28.43 ±1.29 3*

        圖5 流式細(xì)胞儀檢測(cè)細(xì)胞凋亡

        3 討論

        機(jī)體抗腫瘤免疫主要是T介導(dǎo)的細(xì)細(xì)胞免疫。在T細(xì)胞活化和耐受的免疫調(diào)節(jié)中,B7-CD28家族成員介導(dǎo)的T淋巴細(xì)胞共刺激信號(hào)傳導(dǎo)途徑起著至關(guān)重要的作用。它們不僅在啟動(dòng)、增強(qiáng)和維持T細(xì)胞應(yīng)答中提供了關(guān)鍵的正性信號(hào),而且還可提供重要的負(fù)性信號(hào)來限制、終止或削弱T細(xì)胞的免疫應(yīng)答。B7家族能提供刺激或抑制信號(hào)調(diào)節(jié)T細(xì)胞的反應(yīng),這取決于B7家族哪種配體和受體作用于靶細(xì)胞[10-11]。B7-H4是最近發(fā)現(xiàn)的B7家族新成員,位于人的染色體1p11.1,編碼1個(gè)具有282個(gè)氨基酸的蛋白。體外T細(xì)胞增殖試驗(yàn)證實(shí)B7-H4細(xì)胞能顯著抑制T細(xì)胞的增殖,能將T細(xì)胞阻滯在細(xì)胞增殖的G0/G1期,并降低IL-2、IL-4、IL-10和IFN-γ的分泌,尤其對(duì)IL-2更為顯著[1-12-13]。Miyatake等[14]發(fā)現(xiàn)乳腺癌組織中 B7 -H4 表達(dá)強(qiáng)度與浸潤(rùn)性CD3+和CD8+T細(xì)胞的數(shù)量呈反比,提示B7-H4可抑制T細(xì)胞向腫瘤組織中趨化,從而介導(dǎo)腫瘤細(xì)胞的免疫逃逸。

        B7-H4 mRNA廣泛分布于外周組織,但蛋白表達(dá)檢測(cè)陰性。說明正常外周組織B7-H4的表達(dá)在翻譯水平被嚴(yán)格調(diào)控,目前在多種惡性腫瘤組織及細(xì)胞株中均檢測(cè)到B7-H4異常高表達(dá),Chen等[15]對(duì)112例食管鱗狀細(xì)胞癌(ESCC)患者的癌組織切片進(jìn)行B7-H4檢測(cè),發(fā)現(xiàn)B7-H4表達(dá)升高,并發(fā)現(xiàn)B7-H4表達(dá)強(qiáng)度與腫瘤轉(zhuǎn)移,TNM分期正相關(guān),與CD3+T細(xì)胞和CD8+T細(xì)胞的密度負(fù)相關(guān),認(rèn)為B7-H4可能是ESCC免疫治療的潛在靶點(diǎn)。Qian等[16]發(fā)現(xiàn)B7-H4在前列腺癌組織中呈彌漫性高表達(dá),而在正常組織中不表達(dá),且腫瘤患者的B7-H4的表達(dá)水平隨患者腫瘤分級(jí)的增高而升高,但其與前列腺癌增殖和凋亡的關(guān)系還未見報(bào)道。

        Salceda等[17]首次提出B7-H4在促進(jìn)上皮細(xì)胞的惡性轉(zhuǎn)化中起著直接的作用,首先轉(zhuǎn)染B7-H4基因到B7-H4-的人卵巢癌細(xì)胞株中,發(fā)現(xiàn)能促進(jìn)腫瘤在SCID小鼠體內(nèi)的生長(zhǎng),并抑制腫瘤細(xì)胞的凋亡,利用siRNA下調(diào)人類乳腺癌細(xì)胞B7-H4 mRNA的表達(dá)可提高腫瘤細(xì)胞中caspase的活性并誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞的凋亡。本研究在證明所設(shè)計(jì)合成的siRNA能夠有效抑制B7-H4表達(dá)后,將這段siRNA轉(zhuǎn)染DU145細(xì)胞。結(jié)果顯示:在對(duì)干擾組進(jìn)行轉(zhuǎn)染后,干擾組DU145細(xì)胞生長(zhǎng)增殖明顯慢于空白對(duì)照組和陰性對(duì)照組,凋亡率明顯高于其他兩對(duì)照組。而兩個(gè)對(duì)照組之間的細(xì)胞生長(zhǎng)情況則無顯著性差異。由此可以說明B7-H4的表達(dá)與DU145細(xì)胞的生長(zhǎng)是具有相關(guān)性的。沉默B7-H4基因在一定程度上可誘導(dǎo)DU145細(xì)胞凋亡,發(fā)揮抗腫瘤效應(yīng)。這與Salceda等的研究基本一致。B7-H4可能通過抑制T細(xì)胞活性,逃避機(jī)體的免疫監(jiān)視或者直接抑制腫瘤細(xì)胞凋亡兩個(gè)方面促進(jìn)腫瘤的惡性生物學(xué)行為。然而,B7-H4在促進(jìn)腫瘤生長(zhǎng),抑制凋亡的準(zhǔn)確作用還不是很清楚。

        [1]Sica GL,Choi IH,Zhu G.B7 -H4,a molecule of the B7 family,negatively regulates T cell immunity[J].Immumity,2003,18(6):849-861.

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