楊 競,徐 洋,蔡春榮,李利生,高 楊,楊丹莉
(遵義醫(yī)學院藥理教研室暨貴州省基礎藥理重點實驗室,貴州 遵義 563000)
1型糖尿病(TIDM)是一種自身免疫性疾病,它導致胰島 β細胞損害,繼而胰島素缺乏[1]。TIDM能引起代謝紊亂、血管和神經損害、全身多器官功能障礙,使患者壽命縮短,生活質量嚴重降低。至今,TIDM的具體發(fā)病機制仍不清楚,目前尚無藥物可徹底治愈TIDM。TIDM防治及研究仍然是焦點。因此建立一種較理想TIDM動物模型具有重要的意義。鏈脲佐菌素(Streptozotocin,STZ),在上世紀50年代被證實具有抗菌、抗腫瘤作用[2]。Rackienten和 Junod發(fā)現(xiàn) STZ具有致TIDM作用。STZ對胰島β細胞具有特異毒性,使胰島破壞,胰島素缺乏,能很好地模擬TIDM的病程,是建立糖尿病動物模型的常用方法之一。但是目前關于STZ誘導TIDM 的劑量眾說紛紜[3~5],使研究者深感困惑,希望找到理想的STZ造模劑量。因此,本研究組在過去研究的基礎上,選擇50,65mg/kgSTZ,研究其對SD大鼠的血糖、血胰島素、胰腺病理形態(tài)學的影響,旨在探索STZ制造TIDM動物模型的理想劑量。
1.1.1 動物 成年 SD大鼠,雄性,體重(320±10)g,購自重慶第三軍醫(yī)大學動物實驗中心,許可證號為SCXK~(軍)2007~017。
1.1.2 試劑 STZ購自 sigma公司;碘[125I]胰島素放射免疫分析試劑購自北京科美生物技術有限公司;檸檬酸緩沖液,配制成0.1 mol/L,pH值4.2。
1.1.3 儀器 血糖儀及血糖試紙(穩(wěn)步型),購自強生公司。
1.2.1 分組 實驗前用血糖儀測定大鼠空腹血糖,根據(jù)美國糖尿病協(xié)會(ADA)推薦的診斷標準血糖在3.15~6.19 mmol/L方能入選。入選的38只成年健康雄性SD大鼠隨機分為三組,其中STZ 55組、STZ65組各16只,對照組6只,分別腹腔注射STZ55 mg/kg(STZ55組)、65 mg/kg(STZ65組)和等體積檸檬酸緩沖液(對照組)。
1.2.2 TIDM模型的制備 所有大鼠在造模前禁食12 h,臨用前以檸檬酸緩沖液將STZ配制成1%溶液。給予STZ后大鼠即出現(xiàn)多飲多食多尿的癥狀,48 h后測其空腹血糖,血糖≥7.0 mmol/L并持續(xù)升高,第7天空腹血糖≥11.1 mmol/L可視為造模成功。成模后每周檢測體重及空腹血糖,觀察大鼠的一般狀況。
1.2.3 觀察各組大鼠成模率(成模率=成模大鼠數(shù)量/造模大鼠數(shù)量)及死亡率(死亡率=死亡大鼠數(shù)量/造模大鼠數(shù)量)。
1.2.4 第28天,所有大鼠以10%水合氯醛麻醉,取血清,同位素放射免疫試劑法測血清胰島素(INS)。
1.2.5 取各組大鼠胰腺組織以4%多聚甲醛固定48 h,脫水,包埋,HE染色,觀察其形態(tài)學改變。
數(shù)值數(shù)據(jù)以均數(shù)(x)±標準差(S)表示,應用SPSS 12.0進行統(tǒng)計學分析處理,單因素方差分析進行差異比較。
3.1 STZ對大鼠一般情況的影響 STZ55,STZ65組大鼠造模成功后均出現(xiàn)精神萎靡,活動度差,毛晦暗脫落,進食量及飲水量增至造模前兩倍,尿量明顯增多,墊料潮濕且有酸臭味,需每日更換墊料2次。對照組無明顯變化。
3.2 STZ對動物死亡率及模型成功率的影響 對照組(n=6)大鼠未見死亡及空腹血糖升高。STZ55組分別于第27、28天各有1只大鼠死亡,同時,1只造模后第2天空腹血糖<7.0 mmol/L且不升高,3只第7天 <11.1 mmol/L,視為未成模。STZ65組于第14、17、20、22天分別有 1只大鼠死亡;2只第7天<11.1 mmol/L視為未成模。結果(見表1)。
表1 不同劑量的STZ所致1型糖尿病(TIDM)模型的成模率及死亡率
3.3 STZ對大鼠體重變化的影響 與對照組比較,STZ55,STZ65組成模大鼠體重均明顯減輕(均P<0.05),但第3周開始,STZ55組與STZ65組體重變化出現(xiàn)明顯差異。STZ55組體重開始增加,而STZ65組體重繼續(xù)減輕。結果(見圖1)。
圖1 STZ對大鼠體重影響( s,g)
3.4 STZ對大鼠空腹血糖的影響 造模后STZ55、STZ65組空腹血糖較對照組均顯著升高(均P<0.05)。但第14天后STZ55組空腹血糖未見繼續(xù)升高,且略有下降。STZ65組空腹血糖第2、7、21、28天都高于STZ55組(均P<0.05),一直穩(wěn)定在高水平(≥16.7 mmol/L),且保持升高趨勢。結果(見圖2)。
3.5 STZ對大鼠血清胰島素(INS)的影響 與對照組相比,STZ 55和STZ65組血清INS顯著降低(P<0.05),且STZ65組血清INS水平較STZ55組更低(P<0.05),結果(見表2)。
3.6 STZ對大鼠胰腺組織形態(tài)的影響 與對照組相比,STZ55和STZ65組大鼠胰腺組織出現(xiàn)異常變化,胰島正常結構被破壞,數(shù)目減少、面積變小。而STZ 65較STZ 55組胰島減小、結構破壞更明顯,結果(見圖3)。
圖2 STZ對大鼠空腹血糖影響(s,mmol/L)
表2 STZ對大鼠血清胰島素(INS)水平影響 (x ± s,μIU/ml)
圖3 STZ對大鼠胰腺組織形態(tài)的影響(HE染色,×400)
TIDM的制備方法多樣,主要有化學試劑法、手術切除法、激素注射法、病毒誘導法、轉基因及自發(fā)糖尿病動物等。雖然手術切除部分胰腺的方法制造的糖尿病模型較穩(wěn)定,但對術后并發(fā)癥較多;激素注射法所需造模周期長,且停藥后可出現(xiàn)血糖自發(fā)恢復,目前已較少應用;病毒誘導的糖尿病模型雖有一定的發(fā)展前景,但其成模率相較其他幾種方法較低,也伴有較嚴重的不良反應作用,其應用同樣受到限制;轉基因動物模型能自發(fā)產生糖尿病,但飼養(yǎng)條件要求較高且動物價格昂貴,有一定的局限性?;瘜W試劑法常用的試劑有STZ和四氧嘧啶,其中四氧嘧啶雖可制造糖尿病模型,但有較大的肝、腎毒性,且動物存活率低[6]。STZ對胰島β細胞具有特異的毒性,其致糖尿病作用可能通過其本身含有的葡萄糖部分結構被胰島B細胞上低親和力的葡萄糖轉運蛋白(GLUT2)轉運,特異性地作用于胰島B細胞并引起其結構破壞和胰島素分泌功能障礙[7]、過度激活多聚 ADP 核糖聚合酶[8]、抑制O2連接氮乙酰葡糖胺糖苷酶[9]、使胰腺組織DNA的甲基化水平增高[10]等有關。而STZ誘導的糖尿病模型動物死亡率較低,成模率較高,模型穩(wěn)定,操作方便,價格相對低廉,是目前國內外最常用的造模方法。但其誘導的TIDM的成模率與死亡率均與劑量有密切關系,大劑量可能導致動物存活率過低,而劑量過小可能導致成模率低。因此,選擇合適的劑量是造模的關鍵因素。
文獻報道 STZ制造 TIDM 的劑量包括50[11]、55[10]、60[5]、65[12]、70[4]及 75[3]mg/kg 等。本課題組經過預實驗研究最終選擇55 mg/kg、65 mg/kg STZ進行正式研究。結果發(fā)現(xiàn)一次性腹腔注射55、65 mg/kg STZ后,動物均出現(xiàn)多飲多食多尿、體重減輕、困倦;血糖升高、血胰島素水平降低等表現(xiàn)。STZ55組造模后3~4周空腹血糖比同時期對照組高,但較兩周前的血糖值有所降低。其體重變化也呈類似趨勢。這些變化提示55 mg/kg STZ所致的TIDM的模型不夠穩(wěn)定,分析原因可能與該劑量較小有關。與此現(xiàn)象不同的是:STZ65組血糖持續(xù)升高,體重持續(xù)下降,血胰島素水平下降程度更低,胰島破壞、縮小、結構紊亂較STZ55組更為嚴重,甚至胰島消失。雖然STZ65組死亡率是STZ55組的1倍,但其成模率為 87.5%,比 STZ55組增加12.5%。本研究揭示一次性腹腔注射STZ65mg/kg是建立SD大鼠TIDM模型理想劑量。
[1]侯萍,劉驍,殷曉麗.1型糖尿病發(fā)病機制的研究進展[J].中國實用醫(yī)藥,2010,5(15):262 -263.
[2]White FR.Steptozotocin,Cancer Chemother Rep,1963,30:49-53.
[3]Yakubu M A,Sofola OA,Igbo I,Oyekan AO.Impaired endothelium-dependent and-independent relaxation of aorta from diabetic rats.Bratisl Lek Listy.2012;113(2):59-63.
[4]Wang G,Li W,Lu X,et al.Riboflavin alleviates cardiac failure in Type I diabetic cardiomyopathy.Braz J Med Biol Res.2012 Mar;45(3):205-211.
[5]Tang W B,Zhou YQ,Zhao T,et al.Effect of interleukin-6(IL-6)on the vascular smooth muscle contraction in abdominal aorta of rats with streptozotocin-induced diabetes[J].Chin J Physiol.2011 Oct 31;54(5):318-323.
[6]高紅莉,劉方永,夏作理,等.實驗性糖尿病動物模型的理論研究與應用[J],中國臨床康復,2004,9(3):210-2.
[7]Szkudelski T.The mechanism of alloxan and streptozotocin action in B cells of the rat pancreas[J].Physiol Res,2001,50(6):537-546.
[8]Zhang J,Dawson VL,Dawson TM,et al,Nitric oxide activation of poly(ADP-ribose)synthetase in neurotoxicity Science,1994,263(5147):687-689.
[9]HeY,Martinez Fleites C,Bubb A,et al,Structural insight into the mechanism of streptozotocin inhibition of O-Glc-NAcase Carbohydr Res,2009,344(5):627-631.
[10]王萍,閏芳,何忠效,等.糖尿病大鼠腎、胰基因組DNA甲基化狀態(tài)的變化[J].北京師范大學學報(自然科學版),2001,37(2):246-249.
[11]Sebbagh,N.Cruciani-Guglielmacci,C.Ouali,F(xiàn).et al,Comparative effects of Citrullus colocynthis,sunflower and olive oil-enriched diet in streptozotocin-induced diabetes in rats.Diabetes & Metabolism 2009,35:178-184.
[12]Rania N,Richard L.Reduced IP receptors in STZ-induced diabetic rat kidneys and high-glucose-treated mesangial cells.Am J Physiol,2004,287(10):189-196.