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        高速逆流色譜分離純化凍青中的黃酮類化合物

        2012-05-07 01:33:52謝冠男吳洪發(fā)
        化學(xué)與生物工程 2012年2期
        關(guān)鍵詞:槲寄生粗提物大孔

        高 冷,謝冠男,劉 達(dá),吳洪發(fā)

        (長春工業(yè)大學(xué)化學(xué)與生命科學(xué)學(xué)院,吉林 長春 130012)

        凍青學(xué)名槲寄生[Viscumcoloratum(Kom.) Nakai],雙子葉植物綱,常綠半寄生小灌木,其主產(chǎn)區(qū)在東北,常寄生在楊樹、柳樹、榆樹上[1]。凍青的主要活性成分有黃酮類化合物[2]、槲寄生凝集素[3]、毒素、生物堿、有機(jī)酸及木脂素等[4,5]。其中黃酮類化合物具有抗菌、抗病毒、抗衰老、降壓、降血脂、提高機(jī)體免疫力等藥理活性[6,7]。目前,采用高效液相色譜法(HPLC)尚無法大量分離出凍青中一種或多種活性成分。

        高速逆流色譜(High-speed counter-current chromatography,HSCCC)是一種高效快速的液-液分離技術(shù),是將處于高速動(dòng)態(tài)平衡且互不混溶的兩相溶劑中的樣品按不同的分配比將組分分離。由于不需要固相載體作固定相,避免了樣品的不可逆吸附、損失和污染[8],同時(shí)該技術(shù)具備良好的重現(xiàn)性,可同步完成制備、分離、純化過程,因此被廣泛應(yīng)用于天然產(chǎn)物有效成分的分離制備及中藥的分析鑒定[9~11]。

        作者以長白山區(qū)凍青為原料,采用超聲波輔助浸提其中的黃酮類化合物,并首次采用HSCCC和大孔吸附樹脂相結(jié)合對(duì)其進(jìn)行分離純化,可為中草藥中活性成分的分離純化和制備提供參考。

        1 實(shí)驗(yàn)

        1.1 材料、試劑與儀器

        凍青,2009年11月采自長白山地區(qū),經(jīng)鑒定為Viscumcoloratum(Kom.) Nakai。

        AB-8大孔吸附樹脂,安徽三星樹脂有限公司;乙醇、正己烷、乙酸乙酯、甲醇,分析純,北京化工廠;甲醇,色譜純,天津康科德科技有限公司;實(shí)驗(yàn)用水為超純水。

        LGJ-30型冷凍干燥機(jī),北京松源華興科技發(fā)展有限公司;GL-21LM型離心機(jī),星科科學(xué)儀器有限公司;SCIENT2-HF2000型超聲波循環(huán)提取機(jī),寧波新芝生物科技股份有限公司;Agilent-1100型高效液相色譜儀,美國安捷倫公司;TBE-300型高速逆流色譜儀,上海同田生化技術(shù)有限公司;Mercury plus 400型核磁共振儀,美國Varian公司。

        1.2 方法

        1.2.1 預(yù)處理

        取50 g干燥的凍青莖粉碎,過60目標(biāo)準(zhǔn)篩,用乙醚索氏提取去除油脂以及色素等脂溶性雜質(zhì),棄去溶液,回收原料,干燥揮發(fā)除去原料中的乙醚;再用60%乙醇溶液按料液比1∶15,超聲提取20 min,將粗提液濃縮,冷凍干燥得凍青粗提物1.26 g。

        1.2.2 大孔吸附樹脂除雜

        凍青粗提物用蒸餾水溶解,離心去除不溶物,上清液經(jīng)AB-8大孔吸附樹脂柱吸附,先用3 BV的蒸餾水洗脫,再用3 BV的60%乙醇溶液洗脫,收集洗脫液,濃縮,冷凍干燥,得凍青粗提黃酮,進(jìn)行HPLC檢測,選擇其中主要組分作為HSCCC目標(biāo)分離物。

        1.2.3 溶劑體系的選擇

        依據(jù)文獻(xiàn)[12]用HPLC測定樣品在不同溶劑體系[正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水(3∶4∶5∶3,體積比,下同)、乙酸乙酯-正丁醇-水(2∶1∶3)、氯仿-甲醇-水(4∶3∶2)、石油醚-乙酸乙酯-甲醇-水(1∶2∶2∶1)]中的分配系數(shù)。稱取1 mg凍青粗提黃酮置于5 mL試管中,分別加入已經(jīng)達(dá)到平衡的上、下相溶劑各1 mL,振蕩使樣品充分溶解,靜置平衡,然后上下相各取0.2 mL,離心濃縮干燥,接著用甲醇溶解,進(jìn)行HPLC檢測,并計(jì)算分配系數(shù),據(jù)此選擇適宜的溶劑體系。分配系數(shù)依下式計(jì)算:

        式中:A1、A2分別為上、下相中化合物的峰面積。

        1.2.4 HSCCC分離純化

        按比例配制選定溶劑體系,放入分液漏斗中靜置分層,分層時(shí)間為50 s,上相為固定相,下相為流動(dòng)相,螺旋管柱正轉(zhuǎn)800 r·min-1,流動(dòng)相流速3 mL·min-1,進(jìn)樣量20 mL,進(jìn)樣濃度20 mg·mL-1,檢測波長254 nm。手動(dòng)收集流出液,旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮,冷凍干燥,得到淡黃色化合物Ⅰ和白色化合物Ⅱ。

        1.3 分析測試

        采用高效液相色譜分析凍青粗提物、凍青粗提黃酮、化合物Ⅰ和化合物Ⅱ。色譜條件為:Kromasil KR006-C18不銹鋼色譜柱(250 mm×4.6 mm,5 μm),流動(dòng)相為甲醇-水(60∶40),流速為0.8 mL·min-1,進(jìn)樣量10 μL,柱溫28 ℃,檢測波長254 nm。

        采用核磁共振(1HNMR、13CNMR)對(duì)化合物Ⅰ和化合物Ⅱ進(jìn)行結(jié)構(gòu)鑒定。樣品以氖代二甲基亞砜(DMSO-d6)溶解。

        2 結(jié)果與討論

        2.1 凍青粗提物的HPLC分析(圖1)

        圖1 凍青粗提物的HPLC圖譜

        由圖1可知,凍青粗提物在10~25 min之間出峰較多,且16.305 min和22.870 min處的化合物的含量較高。另外,凍青粗提物含有大量的雜質(zhì),需要進(jìn)一步分離純化。

        2.2 凍青粗提黃酮的HPLC分析(圖2)

        圖2 凍青粗提黃酮的HPLC圖譜

        由圖2可以看出,經(jīng)大孔吸附樹脂分離純化后得到的凍青粗提黃酮雜質(zhì)明顯減少,主要存在兩類化合物Ⅰ、Ⅱ,其出峰時(shí)間與凍青粗提物比較接近,分別為16.425 min、22.965 min。以化合物Ⅰ和Ⅱ?yàn)槟繕?biāo)分離物選擇溶劑體系進(jìn)行下一步HSCCC分離。

        2.3 溶劑體系的選擇

        凍青粗提黃酮在不同溶劑體系中的分配系數(shù)見表1。

        表1 凍青粗提黃酮在不同溶劑體系中的分配系數(shù)

        綜合考慮分配系數(shù)(表1)、固定相保留率、分離度和峰形,選擇正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水(3∶4∶5∶3)作為適宜的溶劑體系用于HSCCC分離純化。

        2.4 HSCCC分離純化結(jié)果

        溶劑體系為正己烷-乙酸乙酯-甲醇-水(3∶4∶5∶3),HSCCC分離凍青粗提黃酮中的化合物Ⅰ、Ⅱ,結(jié)果見圖3。

        重復(fù)進(jìn)樣分離2次,分別收集圖3所示兩種化合物Ⅰ、Ⅱ流出液,進(jìn)行后續(xù)純度檢測。

        圖3 凍青粗提黃酮的HSCCC分離圖譜

        2.5 產(chǎn)物純度測定

        將HSCCC分離所得的化合物Ⅰ和化合物Ⅱ,用甲醇溶解后進(jìn)行HPLC測定,純度分別為98.01%和96.10%,HPLC圖譜見圖4。

        2.6 產(chǎn)物結(jié)構(gòu)鑒定

        化合物Ⅰ的核磁共振數(shù)據(jù):1HNMR(DMSO-d6),δ,ppm:1.72(1H,s,-CO-CH3,C6″),5.42(1H,d,J=8 Hz,1 Hz,β-葡萄糖基C1-H),6.31(1H,d,J=2 Hz,C6-H), 6.70(1H,d,J=2 Hz,C8-H), 6.85(1H,d,J=8 Hz,C5′-H),7.51(1H,dd,J=8 Hz,1.5 Hz,C6′-H,C6,8-H), 7.78(1H, d,J=1.5 Hz,C2′-H),9.73(1H,s,C4′-OH),12.48(1H,s,C5′-OH)。13CNMR(DMSO-d6),δ,ppm:156.9(C2),133.8(C3),177.8(C4),160.8(C5),93.3(C6),165.5(C7),92.6(C8),156.6(C9),105.4(C10),121.5(C1′),113.8(C2′),149.8(C3′),147.3(C4′),115.6(C5′),122.6(C6′),56.5(OCH3),56.2(OCH3),101.3(C1″),74.6(C2″),77.5(C3″),70.2(C4″),76.6(C5″),60.8(C6″)。以上數(shù)據(jù)與已知鼠李秦素-3-O-β-D-葡萄糖苷的核磁共振數(shù)據(jù)一致[13]。

        圖4 化合物Ⅰ(a)和化合物Ⅱ(b)的HPLC圖譜

        化合物Ⅱ的核磁共振數(shù)據(jù):1HNMR(DMSO-d6),δ,ppm:2.76(1H,dd,J=4 Hz,12 Hz,C3,cis-H),3.23~3.47(m,糖分子中H,OH峰及C3,trans-H),5.04(H,m,β-葡萄糖基C1-H),3.79(3H,s,C3′-OCH3),5.49(1H,dd,J=4 Hz,1 Hz,C2-H),6.17(2H,s,C6,8-H),6.90(1H,d,J=8.5 Hz,1 Hz,C5′-H),6.92(1H,dd,J=8.5 Hz,2 Hz,C6′-H),7.11(1H,d,J=2 Hz,C2′-H),9.18(1H,s,C4′-OH),12.07(1H,s,C5-OH)。13CNMR(DMSO-d6),δ,ppm:79.1(C2),42.3(C3),197.4(C4),163.1(C5),96.7(C6),165.5(C7),95.9(C8),162.9(C9),103.4(C10),129.3(C1′),111.4(C2′),147.7(C3′),147.2(C4′),115.6(C5′),120.1(C6′),56.0(OCH3),99.9(C1″),73.2(C2″),77.2(C3″),69.7(C4″),76.4(C5″),60.8(C6″)。以上數(shù)據(jù)與已知高圣草素-7-O-β-D-葡萄糖苷的核磁共振數(shù)據(jù)一致[14]。

        3 結(jié)論

        采用高速逆流色譜和大孔吸附樹脂相結(jié)合的方法,從凍青中分離出兩種高純度黃酮類化合物,純度分別為98.01%、96.10%,經(jīng)HPLC和NMR鑒定為鼠李秦素-3-O-β-D-葡萄糖苷和高圣草素-7-O-β-D-葡萄糖苷。采用HSCCC技術(shù)分離中草藥有效成分可以達(dá)到較高的純度和產(chǎn)率,制備量大、效率高,優(yōu)勢(shì)獨(dú)特,具有非常廣闊的應(yīng)用前景。

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