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        血清中17α-羥孕酮的測定方法及其研究進(jìn)展*

        2012-04-11 12:29:15周劍戴新華李紅梅弓愛君
        化學(xué)分析計(jì)量 2012年2期
        關(guān)鍵詞:質(zhì)譜法孕酮激素

        周劍 ,戴新華 ,李紅梅 ,弓愛君

        (1.北京科技大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院,北京 100083; 2.中國計(jì)量科學(xué)研究院化學(xué)計(jì)量與分析科學(xué)研究所,北京 100013)

        血清中17α-羥孕酮的測定方法及其研究進(jìn)展*

        周劍1,2,戴新華2,李紅梅2,弓愛君1

        (1.北京科技大學(xué)化學(xué)與生物工程學(xué)院,北京 100083; 2.中國計(jì)量科學(xué)研究院化學(xué)計(jì)量與分析科學(xué)研究所,北京 100013)

        闡述了17α-羥孕酮的檢測在臨床診斷研究方面的重要意義,綜述了血清中17α-羥孕酮的檢測方法及其研究進(jìn)展。

        血清17α-羥孕酮;免疫法;高效液相色譜法;同位素稀釋質(zhì)譜法

        17α-羥孕酮(C21H30O3)是在合成糖皮質(zhì)激素和性類固醇過程中產(chǎn)生的一種C-21內(nèi)源性孕激素,可以在17α-羥化酶作用下由孕酮轉(zhuǎn)化,或者在3β-羥類固醇脫氫酶(3β-HSD)作用下由17α-羥孕烯醇酮轉(zhuǎn)化,主要產(chǎn)生于腎上腺皮質(zhì),部分產(chǎn)生于性腺。血清中的17α-羥孕酮主要與性激素共同作用,促進(jìn)個(gè)體器官的發(fā)育。育齡女性正常值為:卵泡期0.1~0.8 ng/mL,黃體期 0.27~2.9 ng/mL,妊娠末3個(gè)月2~12 ng/mL ;男性正常值為 0.31~2.13 ng/mL[1,2]。

        血清中17α-OHP的測量是診斷因21-羥化酶缺乏所引起的先天性腎上腺皮質(zhì)增生癥(CAH)的主要手段[3-5]。先天性腎上腺皮質(zhì)增生癥(CAH)代表常染色體隱性激素的紊亂,這種紊亂主要是由于人體內(nèi)不同酶的缺乏導(dǎo)致,這些酶的缺乏影響人體內(nèi)合成氫化可的松和甾體激素,增加了17α-羥孕酮和雄激素的分泌,而先天性腎上腺增生90%以上是因?yàn)?1-羥化酶的缺失[6]。21-羥化酶缺乏的先天性腎上腺皮質(zhì)增生患者血清中17α-羥孕酮濃度明顯升高,11-羥化酶缺乏時(shí),17α-羥孕酮上升幅度較?。?,8]。約 6% 的成年多毛女性有不同程度的21-羥化酶缺乏,這一類遲發(fā)型缺乏癥病例中17α-羥孕酮濃度常超過卵泡期的高限0.9 ng/mL。17α-羥孕酮的測定也用于分析男性和女性的普通痤瘡、男性禿頂及一些不明原因的不育癥[9]。

        1 血清中17α-羥孕酮的測定方法

        關(guān)于血清中17α-羥孕酮的研究開始于20世紀(jì)50年代,開始只是關(guān)注其在人體內(nèi)的反應(yīng)和作用,對于血清中17α-羥孕酮檢測的廣泛研究始于20世紀(jì)六七十年代,開始時(shí)采用免疫的方法主要為超微分析系統(tǒng)(ultra micro analytic system)和超微的酶聯(lián)免疫法(ELISA),在此基礎(chǔ)上又發(fā)展了放射免疫法(radioimmunoassay)和時(shí)間分辨熒光免疫法(time-resolved fluoroimmunoassay),后來又開發(fā)了液相方法、氣相色譜質(zhì)譜法和液相色譜-質(zhì)譜法等。

        1.1 放射免疫法(RIA)

        大部分的分析方法都需要用有機(jī)溶劑萃取或者用柱色譜分離,然后用RIA分析,需要采用氘標(biāo)記的17α-羥孕酮或其它標(biāo)記激素作為示蹤標(biāo)記物。Jndsay. F. Hotman等開發(fā)了一個(gè)直接固相放射免疫法,不使用萃取和離心的步驟,只需添加兩種有機(jī)溶劑,該方法能在24 h內(nèi)分析1 200個(gè)樣品。新西蘭臨床生物化學(xué)中心的K. H. James Yeo等在1984年就發(fā)表了關(guān)于血清中17α-羥孕酮檢測的放射免疫方法,他們主要采用甲苯和正己烷的混合溶液進(jìn)行簡單萃取,然后以125I作為示蹤物,以兔血清為抗體直接進(jìn)行RIA分析,日間和日內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)偏差分別小于15%和小于10%,靈敏度能達(dá)到3 pg,分析回收率達(dá)到93.5%(RSD=1.6%,n=15)。分析用時(shí)約3 h,比以3H為示蹤物更加快速,而且實(shí)驗(yàn)成本大為降低[10]。大部分主要的甾類激素都能夠在唾液中呈現(xiàn),研究表明其濃度與人體血清中的濃度存在一定的聯(lián)系,所以有時(shí)在血清樣品中難以取得時(shí),唾液中激素的檢測也能起到積極的作用,但由于唾液中激素含量相對較低,這就要求特異性好和靈敏度更高的放射免疫分析法,比利時(shí)的J. Bourque等研究了人體唾液中孕激素(主要是孕酮)的檢測方法,他們將融化的唾液樣品與標(biāo)準(zhǔn)品、標(biāo)記激素和稀釋的抗體血清混合,渦旋,37℃培育30 min,然后4℃過夜,在冰浴中將激素按是否結(jié)合標(biāo)記分離,進(jìn)行RIA測定,該方法的日間和日內(nèi)不確定度均小于10%,回收率為90%~100%[11]。為了檢測更低濃度唾液和血清中的17α-羥孕酮,希臘佩特雷醫(yī)學(xué)院內(nèi)分泌科的Panagiotis. G. Mylonas等采用與J. Bourque等相同的抗體和孵化方法,增加了10倍樣品量和孵化時(shí)間以提高靈敏度,實(shí)驗(yàn)測定了64個(gè)健康志愿者的唾液和血清樣品,分成4個(gè)組別分離處理后直接進(jìn)行RIA測定,唾液中和血清中17α-OHP含量的關(guān)聯(lián)性r2在0.62~0.77之間,實(shí)驗(yàn)證明該方法能很好地檢測唾液和血清中的低濃度17α-羥孕酮[12]。

        1.2 酶聯(lián)免疫法

        在免疫分析法被大量應(yīng)用于激素分析的情況下,放射免疫法的諸多缺點(diǎn)如示蹤物儲藏時(shí)間短、廢物核輻射泄露、必須特殊的放射性裝置等也漸漸受到分析人員的詬病,在此基礎(chǔ)上引入了酶聯(lián)免疫法等非放射性免疫分析法。Walter Hubl等于1988年用辣根過氧化物酶作為酶標(biāo)記,開發(fā)了一個(gè)雙抗體/聚乙烯乙二醇固相酶聯(lián)免疫的方法,該方法使用涂有蛋白A和第二抗體的微量滴定管,大大節(jié)約成本,且方法有較好的重復(fù)性(相對標(biāo)準(zhǔn)偏差為5.0%~6.0%)和回收率(91%~97%)[13]。古巴免疫分析中心的 Ernesto Carlos Gonzále等人于2008年開發(fā)了一種快速、簡單的酶聯(lián)免疫方法,以17α-羥孕酮結(jié)合堿性磷酸酶與17α-羥孕酮結(jié)合血清競爭,采取兔抗體血清,分析濾紙上血點(diǎn)內(nèi)17α-羥孕酮,分析緩沖液中以達(dá)納錯(cuò)替代17α-羥孕酮甾體激素結(jié)合蛋白,整個(gè)分析時(shí)間為3 h,分析范圍是10~250 nmol/L,日間和日內(nèi)標(biāo)準(zhǔn)偏差與17α-羥孕酮濃度有關(guān)分別為5.5%~8.2%和6.4%~9.1%,分析回收率達(dá)到98%~103%,該方法能夠很好地用于新生兒CAH檢測[14]。

        1.3 時(shí)間分辨熒光免疫法

        芬蘭臨床分析中心Ruben Rene Gonzalez等在RIA方法的基礎(chǔ)上開發(fā)了一種快速、高通量的直接固相時(shí)間分辨熒光免疫法(TRFLA)檢測血清和干血濾紙斑點(diǎn)中的17α-羥孕酮,他們使用17α-OHP-3-carboxymethyloxime與聚賴氨酸(polylysine)結(jié)合作為標(biāo)記,使得每個(gè)17α-羥孕酮分子能夠結(jié)合34原子的銪,具有更高的放射性活度,這個(gè)分析基于標(biāo)記的17α-OHP3CMO和17α-羥孕酮在血液樣本中與多克隆兔17α-羥孕酮抗體的競爭,標(biāo)記的抗體混合物通過與兔抗體表面結(jié)合進(jìn)行分離,分析緩沖液包含達(dá)那唑來取代17α-羥孕酮與血清中蛋白的綁定。對于血清樣品,常溫下孵化完成需要1 h,而對于干血濾紙斑點(diǎn)需要在4℃放置過夜,同一分析物采取的兩種樣本測定結(jié)果有較好的一致性,該方法對血清和干血濾紙斑點(diǎn)中17α-羥孕酮最低檢測限分別為0.10 nmol/L和0.75 nmol/L,日內(nèi)和日間測定結(jié)果的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差在 5%~15% 之間[15]。

        1.4 液相色譜法

        大多數(shù)免疫方法在進(jìn)行血清中的激素分析前,首先要對樣品進(jìn)行層析分離或者用其它方法純化,造成整個(gè)分析過程冗長、復(fù)雜,而且在前處理過程中容易造成待分析成分的丟失,由于交叉反應(yīng)難以保證分析的特異性,使得分析結(jié)果不準(zhǔn)確,分析不確定度增加。為了避免上述缺點(diǎn),液相色譜被引用進(jìn)行唾液或血清中的激素分析。康涅狄格大學(xué)的Ernesto Canalls等較早開發(fā)了血清中17α-羥孕酮的高效液相色譜分析方法,該實(shí)驗(yàn)用二氯甲烷從1 mL血清中萃取待測物,萃取液用0.1 mol/L的氫氧化鈉溶液和水沖洗后在氮?dú)馍洗蹈?,然后用甲?水混合液復(fù)溶,樣品用μBondapak C18色譜柱分析,17α-羥孕酮檢出限達(dá)到 2.5 μg/L,加標(biāo)回收率達(dá)到95%~105%,分析結(jié)果的不確定度小于10%。該方法通過優(yōu)化液相流動相,使得血清中氫化可的松、11-羥基可的松和17α-羥孕酮的保留時(shí)間不同,從而同時(shí)檢測血清中多種激素含量,方法簡單、準(zhǔn)確且與RIA方法測定數(shù)據(jù)趨勢一致[16]。

        1.5 氣相色譜-質(zhì)譜法

        隨著質(zhì)譜技術(shù)的發(fā)展,由于其較高的靈敏度而被大量引入進(jìn)行血清中激素的分析研究,上海復(fù)旦大學(xué)的鄧春輝、張祥民等人使用N,O-雙(三甲基硅烷)三氟乙酰胺作為衍生試劑,以乙腈為溶劑,在微波照射下使得血清中17α-羥孕酮發(fā)生三甲基硅烷化反應(yīng),微波功率700 W,實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)微波照射可以增加羰基結(jié)合含氧基團(tuán),降低衍生反應(yīng)時(shí)間,反應(yīng)時(shí)間縮短為120 s,遠(yuǎn)小于傳統(tǒng)的反應(yīng)時(shí)間45 min。衍生物進(jìn)氣相色譜-質(zhì)譜(GC-MS)檢測,選用HP-5 MS柱(30 m×0.25 μm,0.25 mm),采用不分流模式,進(jìn)樣體積為1 μL,柱溫程序:初始溫度80℃,以15℃/min的速度升溫到300℃,保持10 min,采用選擇離子檢測模式(SIM)在EI源下檢測m/z359離子,四級桿、傳輸線和離子源溫度分別為150,280,230℃。該方法定性檢出限達(dá)到 1.0 ng/mL,方法重復(fù)性相對不確定度小于7.9%,方法回收率為102%[17]。

        1.6 液相色譜-質(zhì)譜法

        文獻(xiàn)記載了很多氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用方法測定血清中17α-羥孕酮等甾體激素,這些方法都有很好的特異性,但是往往反應(yīng)通量很低,需要較大體積的血清原料,美國鹽湖城大學(xué)Mark. M. Kushnir等開發(fā)了一種靈敏、特異的液相色譜串聯(lián)質(zhì)譜法(LC-MS/MS)同時(shí)分析4種血清中腎上腺甾體激素,該方法前處理使用樣品量為200 μL,加入一定量的內(nèi)標(biāo)標(biāo)準(zhǔn)溶液,樣品通過固相微萃?。⊿PE),最后用甲基叔丁基醚(MTBE)洗脫,洗脫液在氮?dú)庀麓蹈珊?,加?00 μL pH 10的羥胺水溶液復(fù)溶衍生,渦旋而且在90℃孵化30 min,衍生后溶液用2 mL MTBE萃取,萃取溶液吹干后用流動相復(fù)溶進(jìn)行質(zhì)譜檢測。質(zhì)譜條件:ESI源,多重離子檢測模式(MRM),檢測離子對為361.2/124.1,361.2/112.1,該方法定量檢出限為0.05 μg/L,定性檢出限為0.025 μg/L,回收率達(dá)到 97.2%[18]。

        上述方法雖然采用了LC-MS-MS提高了靈敏度和特異性,但是實(shí)驗(yàn)中采用了衍生的步驟,而衍生實(shí)驗(yàn)對于實(shí)驗(yàn)人員的專業(yè)要求較高,不利于各個(gè)實(shí)驗(yàn)室的普及,在此基礎(chǔ)上加拿大的Michele. L. Etter等開發(fā)了SPE萃取后直接進(jìn)行LC-MS-MS測定的方法,氘代17α-OHP 作為內(nèi)標(biāo)加入血清樣品中,混合均勻后進(jìn)行SPE萃取,用C16反相氨基色譜柱分離,分析時(shí)間為7 min,定量用ESI源正離子模式選擇離子監(jiān)控模式,17α-羥孕酮和氘代17α-羥孕酮離子對分別為:331/109和339/113。該方法日內(nèi)和日間不確定度分別為7.4%和10.0%,線性范圍為0.156~80 nmol/L,定量檢出限為 0.2 nmol/L[19]。

        2 國內(nèi)外血清中17α-OHP臨床參考系統(tǒng)研究現(xiàn)狀及展望

        目前,涉及臨床、大眾健康、生物技術(shù)等領(lǐng)域的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研制是各國研究的重點(diǎn)和熱點(diǎn)[20]。歐盟(IRMM)僅肌酐有不同濃度的基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),如血清肌酐BCR573,BCR574以及BCR575;血清中雌二醇也有3種不同濃度的基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)BCR576,BCR577及BCR578;血清氫化可的松標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)ERM-DA192,ERM-DA193,ERM-DA451三種;血清中孕酮的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)BCR-348R,ERM-DA347等。美國NIST已經(jīng)研制了多種血清基體標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)和激素類純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),例如膽固醇純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)SRM911,SRM911a;尿素純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)SRM912a;尿酸純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)SRM913a;肌酐純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)SRM914a;氫化可的松純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)SRM921;冰凍血清標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(肌酸)967a;冰凍血清標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(氫化可的松、睪酮、孕酮)SRM971等。作為其工作的一部分,開發(fā)了新的快速液相-同位素稀釋質(zhì)譜法(ID-LC/MS)來代替之前的氣相-同位素稀釋質(zhì)譜法(ID-GC/MS)。

        澳大利亞針對奧運(yùn)食品中興奮劑檢測也研制了睪酮及其氘代物的純度標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),分別為NARL CRM M914和NARL CRM D546,已應(yīng)用于臨床檢驗(yàn)的量值溯源。日本臨床化學(xué)方面標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)主要有膽固醇純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)NMIJ CRM 6001-a、肌酐純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)NMIJ CRM 6005-a。

        國際臨床檢驗(yàn)高準(zhǔn)確度標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)也有很多不完善之處,有很多檢驗(yàn)項(xiàng)目,包括激素、傳染病血清學(xué)檢測標(biāo)志物等缺乏相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),只有一些標(biāo)準(zhǔn)方法而沒有相應(yīng)的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)配合使用,如17α-羥孕酮、雌酮以及雌三醇等均無有證標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)以供臨床檢驗(yàn)使用。

        目前,中國計(jì)量科學(xué)研究院化學(xué)所最新研制的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)有冰凍人血清尿素成分標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(GBW 09157)、冰凍腎病人血清尿酸成分分析標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(GBW 09169)、冰凍人血清肌酐成分分析標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(GBW 09170,GBW 09171),及冰凍人血清葡萄糖、肌酐、尿酸、尿酸標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)(GBW 09174,GBW 09175,GBW 09176)。然而國內(nèi)針對純品標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)17α-羥孕酮、血清中的重要非肽激素類物質(zhì)如17α-羥孕酮的標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì)研究尚未見報(bào)道。中國計(jì)量科學(xué)研究院化學(xué)所應(yīng)國家科技部門的要求,正在進(jìn)行利用LC-IDMS方法針對純品17α-羥孕酮和血清中17α-羥孕酮基準(zhǔn)方法的研究,一些方法學(xué)檢驗(yàn)數(shù)據(jù)表明,該方法準(zhǔn)確可靠。目前正在對該方法進(jìn)行完善,以提高靈敏度、增加檢測通量、減少溶劑用量。

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        Determination Method of 17α-OHP in Serum and Its Research Progress

        Zhoujian1,2, Dai Xinhua2, Li Hongmei2, Gong Aijun1
        (1. School of Chemical and Biological Engineering, University of Science and Technology Beijing, Beijing 100083, China;2. Chemical Metrology and Analytical Science Division, National Institute of Metrology, Beijing 100013, China)

        The important of measure of 17α-OHP in the field of clinical diagnosis was illustrated.Determination methods for 17α-OHP and their research progress were systematically summarized.

        erum 17α-OHP; immunization; HPLC; isotopic dilution MS

        O652.2

        A

        1008–6145(2012)02–0096–03

        10.3969/j.issn.1008–6145.2012.02.30

        *國家科技基礎(chǔ)專項(xiàng)(2011FY130100)

        聯(lián)系人: 周劍;E-mail: zhoujian_8382@yahoo.cn

        2011-11-03

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