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        煙草突變體篩選與鑒定方法篇:3.煙草突變體的TILLING篩選與功能鑒定

        2012-01-26 08:14:01李鳳霞
        中國煙草科學(xué) 2012年3期
        關(guān)鍵詞:基因功能芥酸多倍體

        李鳳霞

        (中國農(nóng)業(yè)科學(xué)院煙草研究所,青島 266101)

        TILLING(targeting induced local lesions in genomes,定向誘導(dǎo)基因組局部突變)是利用單核苷酸多態(tài)性篩選突變體的一種全新反向遺傳學(xué)方法,該方法首先通過化學(xué)誘變產(chǎn)生高頻率點突變,再利用點突變篩選技術(shù)如毛細(xì)管電泳(capillary electrophoresis,CE)、聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacrylamide gel electrophoresis,PAGE)、瓊脂糖電泳(agarose gel electrophoresis,AGE)、高分辨熔解曲線(high-resolution melting,HRM)以及高通量測序技術(shù)(next-generation sequencing)等方法將點突變篩選出來,具有高通量、低成本的技術(shù)特點。隨著煙草全基因組測序的完成,TILLING在煙草功能基因組學(xué)中的重要價值也越發(fā)體現(xiàn)出來。

        1 TILLING檢測的分析群體構(gòu)建

        適度突變是構(gòu)建優(yōu)質(zhì)突變體群體一個極為重要的參數(shù),一般要求誘變種子M1代萌發(fā)率在30%~80%[1]。M2代群體一般采用M1代單粒傳法構(gòu)建。

        TILLING檢測需要一定的群體規(guī)模,所需群體大小與該植物的倍性有很大關(guān)系,由于多倍體能忍耐更高水平的突變劑量,多倍體的突變頻率要顯著高于二倍體,如二倍體植物擬南芥、水稻、玉米的突變頻率分別為1/170 kb、1/500 kb、1/485 kb,而多倍體植物普通小麥突變頻率1/24 kb,普通煙草約為1/66 kb,因此要使基因組中95%以上的基因都有突變信息,多倍體植物如普通小麥TILLING檢測群體很少超過5000株系,而二倍體的群體經(jīng)常需要上萬株系[2]。

        2 目標(biāo)基因的生物信息學(xué)

        TILLING 技術(shù)作為一種全新的反向遺傳學(xué)方法,在應(yīng)用于擬南芥突變體篩選時可達(dá)到一年內(nèi)篩選超過100個基因,獲得1000多個不同擬南芥等位變異體,這種高效率得益于擬南芥較為簡單的基因組結(jié)構(gòu)以及擬南芥全基因測序的完成。

        由于植物基因組信息龐大,對目標(biāo)基因的挑選至關(guān)重要,這就需要通過生物信息學(xué)的手段挑選目標(biāo)基因。其一,基因冗余現(xiàn)象在真核生物特別是多倍體植物中非常普遍。對于冗余的基因,往往需要同時篩選相似性較高的幾個或幾十個基因。其二,每個基因結(jié)構(gòu)和大小并不相同,基因和基因之間互成網(wǎng)絡(luò),相互依賴關(guān)系緊密,往往需要挑選轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子作為優(yōu)先的目標(biāo)篩選基因,因為它可調(diào)節(jié)幾個或幾十個基因的表達(dá)。其三,由于每個基因的結(jié)構(gòu)不同,而 TILLING片段長度和成本的限制,常常挑選較保守的區(qū)域或功能結(jié)構(gòu)域作為篩選目標(biāo)片段。

        3 引物設(shè)計

        在 TILLING檢測中,引物設(shè)計的質(zhì)量直接影響突變篩選結(jié)果,所以在確立所要篩選的目標(biāo)區(qū)段后,如何根據(jù)目標(biāo)序列設(shè)計引物就成為TILLING的一個重要方面。一般引物設(shè)計在CODDLE(codons optimized to discover deleterious)程序中進(jìn)行,CODDLE能識別各種形式的序列信息,并能根據(jù)輸入的堿基序列產(chǎn)生基因模型和蛋白質(zhì)保守區(qū)模型,當(dāng)1000 bp被選中后,系統(tǒng)會根據(jù)最有可能突變成高頻率終止密碼子的區(qū)域或進(jìn)化保守區(qū)域設(shè)計引物。

        4 突變體檢測

        基因片段中的點突變檢測一般通過以下步驟進(jìn)行:(1)突變?nèi)后w基因組DNA分離、DNA樣品定量分析及濃度均一化、構(gòu)建不同混樣倍數(shù)的DNA池;(2)PCR擴(kuò)增、異源雙鏈重組;(3)CELI 酶切異源雙鏈核酸分子;(4)電泳檢測,檢測手段可通過產(chǎn)生真實電泳圖譜的 LICOR4300遺傳分析工作站進(jìn)行,也可通過自動化程度較高的毛細(xì)管電泳系統(tǒng)進(jìn)行;(5)采取相同的方法從突變池中篩選突變個體;(6)突變個體PCR產(chǎn)物的測序驗證。

        5 突變基因功能驗證

        一旦點突變被發(fā)現(xiàn)后,對引起編碼蛋白功能損傷的突變就要進(jìn)行表型分析。但化學(xué)誘變一般要引入大量點突變,如水稻誘變M2代群體中,每個突變體的突變密度約為1075個點突變,普通煙草約為68 000個點突變,這使得表型分析變得相對困難,尤其對功能未知的基因。如果突變體有表型變化,需要以下三種方法進(jìn)行表型鑒定:第一是將兩個獨立突變位點的個體雜交,分析其后代的基因型和表型;第二是將突變體與野生型雜交后回交,觀測突變性狀與基因型的共分離情況;第三是通過對目的基因的遺傳轉(zhuǎn)化,看能否使突變體的表型得以恢復(fù),從而將表型與目的基因聯(lián)系起來。

        鑒定異源多倍體植物基因功能時,最主要是需要克服因多倍體帶來的基因多拷貝。擬南芥基因組中單拷貝基因(多數(shù)都是)[3],其對應(yīng)的DNA編碼區(qū)域在芥菜型和白菜型油菜基因組中有3個左右的拷貝[4-5],在甘藍(lán)型油菜基因組的功能基因一般維持4個左右的拷貝[6]。這樣,單一基因的突變可能對表型的變化影響不易檢測出來,這時,可篩選其不同拷貝基因的突變體,通過二突或者多突的方式鑒定基因功能。

        另外,在基因功能分析時還需要注意其等位基因?qū)υ摶蚬δ艿挠绊憽H缭谘芯看篼溊庑蜁r,發(fā)現(xiàn)這一性狀主要由Vrs位點的HvHox1基因控制,但對獲得的同一位點突變的HvHox1突變體分析發(fā)現(xiàn),等位基因int-c的差異影響著表型變化[7],即突變體表型變化還與目標(biāo)基因的等位基因有關(guān)。

        成功鑒定突變基因功能尚需要QTL、轉(zhuǎn)錄組、代謝組以及生理學(xué)等技術(shù)手段獲得相應(yīng)目的基因信息,尤其對于多倍體植物突變體鑒定。如Slade研究小組[8]通過單體分析和QTL等數(shù)據(jù)信息發(fā)現(xiàn)控制四倍體小麥糯性即直鏈淀粉合成的Waxy基因有兩個拷貝,進(jìn)而通過TILLING在近1920份M2代突變體庫材料中篩選到一系列從野生的到無效的246個Waxy等位基因,從中選出這兩個拷貝功能都缺失的突變單株,該單株達(dá)到了理想的直鏈淀粉和支鏈淀粉比例。在研究蕓苔屬芥酸合成代謝中,多個研究小組通過定位蕓苔屬中與芥酸相關(guān)的QTL,發(fā)現(xiàn)脂肪酸延長基因(FAE1)與芥酸合成之間的高度關(guān)聯(lián)性,汪念[9]進(jìn)一步篩選甘藍(lán)型油菜基因BAC文庫,獲得了芥酸合成過程中兩個拷貝的FAE1基因,進(jìn)而改進(jìn)引物設(shè)計思路,篩選出了多個FAE1突變體,其中部分突變體芥酸含量較低。

        6 展 望

        迄今為止,TILLING技術(shù)已經(jīng)成功應(yīng)用在水稻、玉米、小麥、大麥、百脈根、大豆、花生等植物突變體篩選中,對基因功能的挖掘起到了至關(guān)重要的作用。針對煙草相對較高的突變頻率,如何消除多突變點背景、基因冗余、多拷貝等影響,是一個值得深入研究的問題。

        [1]Wang T,Uauy C,Till B,et al.TILLING and associated technologies[J].J Integr Plant Biol,2010,52:1027-1030.

        [2]Chawade A,Sikora P,Brautigamet M,et al.Development and characterization of an oat TILLING-population and identification of mutations in lignin and beta-glucan biosynthesis genes[J].BMC Plant Biol,2010,10:86.

        [3]Bouchez D,Hofte H.Functional genomics in plants[J].Plant Physiol,1998,118:725-732.

        [4]Haberer G,Mader M T,Kosarev P,et al.Large-scale cis-element detection by analysis of correlated expression and sequence conservation between Arabidopsis and Brassica oleracea[J].Plant Physiol,2006,142:1589-1602.

        [5]Town C D,Cheung F,Maiti R,et al.Comparative genomics of Brassica oleracea and Arabidopsis thaliana reveal gene loss,fragmentation,and dispersal after polyploidy[J].Plant Cell,2006,18:1348-1359.

        [6]Udall J A,Wendel J F.Poluploidy and crop improvement[J].Crop Sci,2006,46:3-13.

        [7]Gottwald S,Bauer P,Komatsuda T,et al.TILLING in the two-rowed barley cultivar 'Barke' reveals preferred sites of functional diversity in the gene HvHox1[J].BMC Res Notes,2009,2:258.

        [8]Slade A J,Fuerstenberg S I,Loeffler D,et al.A reverse genetic,nontransgenic approach to wheat crop improvement by TILLING[J].Nat Biotechnol,2005,23:75-81.

        [9]汪念.甘藍(lán)型油菜EMS突變體庫的構(gòu)建及TILLING、EcoTILLING技術(shù)的應(yīng)用研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2009.

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