吳彥青 高 穎 朱陵群 婁麗霞 張東梅
(1.天津中醫(yī)藥大學(xué),天津 300193;2.北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院中醫(yī)內(nèi)科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100700)
血腦屏障(BBB)是機(jī)體參與固有免疫的內(nèi)部屏障之一,維持中樞神經(jīng)系統(tǒng)(CNS)正常功能和內(nèi)環(huán)境穩(wěn)定所必需的一種彌散屏障[1-4]。BBB完整性的破壞已被證明為多發(fā)性硬化(MS)和其理想動物模型即實(shí)驗(yàn)性自身免疫性腦脊髓炎(EAE)發(fā)病機(jī)制中的重要環(huán)節(jié)[5-11],并且在 MS 的發(fā)病過程中起著重要的作用[12]。為進(jìn)一步明確MS血腦屏障功能及結(jié)構(gòu)的動態(tài)變化,本研究觀察EAE小鼠血腦屏障通透性的動態(tài)變化,探討腦和脊髓內(nèi)緊密連接構(gòu)成蛋白(ZO-1)基因在EAE發(fā)病過程中幾個重要時(shí)間點(diǎn)的動態(tài)表達(dá)變化以及其與血腦屏障功能變化的關(guān)系,并為MS在發(fā)病過程中血腦屏障完整性破壞提供分子結(jié)構(gòu)上的依據(jù)以及下一步可能干預(yù)的途徑。
1.1 動物 C57BL/6小鼠購自中國醫(yī)學(xué)科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動物研究所, 許可證號:SCXK (京):2005-0013。 選用 8~10周齡雌性C57BL/6小鼠108只,體質(zhì)量(18.4±0.8)g。實(shí)驗(yàn)小鼠飼養(yǎng)在中國中醫(yī)科學(xué)院基礎(chǔ)研究所二級動物中心飼養(yǎng)室。
1.2 試劑及藥物 MOG35-55多肽(MEVGWYRSPFSRVVHLYNGK)由北京賽百盛生物工程公司合成,純度(HPLC)98.3%;完全弗氏佐劑(CFA)購自美國 sigma公司,批號:049K8700;百日咳毒素(PTX)購自美國sigma公司,批號:P7208;結(jié)核分支桿菌菌(H37RA)購自美國 DIFCO 公司,批號:0172191;POWER SYBR GREEN PCR MASTER試劑購于美國ABI公司,批號:4367659。益腎達(dá)絡(luò)飲(由熟地黃、石菖蒲、梔子、豨薟草等藥物組成),飲片購自北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院,常規(guī)方法煎煮,收集濾液并文火煎煮濃縮制成2 g生藥/mL的水提物。醋酸潑尼松,天津力生制藥股份有限公司,批號:081206,用去離子水配制成0.39 mg/mL溶液。
1.3 模型制備 采用MOG35-55抗原免疫C57BL/6小鼠。將等體積的 MOG35-55 水溶液(每 100 μL 含 MOG35-55 200 μg)與完全弗氏免疫佐劑 (每100 μL含結(jié)核桿菌H37RA 500 μg)混合乳化制成油包水的抗原乳劑。于免疫動物當(dāng)日記為第0日,模型組、激素組、中藥組每只小鼠背側(cè)脊柱中線兩側(cè)分四點(diǎn)皮下注射共計(jì)0.2 mL MOG35-55抗原配劑,佐劑組每只小鼠背側(cè)脊柱中線兩側(cè)分四點(diǎn)皮下注射共計(jì)0.2 mL不含MOG35-55的油包水乳劑;注射完配劑30 min后,佐劑組、模型組、激素組、中藥組每只小鼠均腹腔內(nèi)注射0.1 mL(含400 ng PTX)百日咳毒素溶液,48 h后再次腹腔內(nèi)注射0.1 mL PTX溶液1次;正常組小鼠不給予任何藥物干預(yù)。
1.4 分組與給藥 實(shí)驗(yàn)分4個取材時(shí)點(diǎn),即造模后7 d(發(fā)病前期)、14 d(發(fā)病初期)、24 d(發(fā)病急性期)和 40 d(慢性期)。 實(shí)驗(yàn)前將所有C57BL/6小鼠隨機(jī)分組:正常組(24只)、佐劑組(24只)、模型組(24 只)、激素組(18 只)、中藥組(18 只),共 5 組。 免疫后第7日起,每日給予各組小鼠灌服相應(yīng)的藥物。
1.5 神經(jīng)功能評分 小鼠免疫后,由兩名觀察者采用盲法進(jìn)行神經(jīng)功能評分,觀察時(shí)間為第0日到第40日(共41 d),評分標(biāo)準(zhǔn)根據(jù)Kono等[13]的5級評分法:0分為小鼠不發(fā)??;1分為小鼠出現(xiàn)尾部張力降低或輕度步態(tài)笨拙;2分為小鼠尾部完全無張力,和(或)中度步態(tài)異常,和(或)姿態(tài)維持缺乏;3分為小鼠肢體明顯力弱;4分為小鼠肢體麻痹或癱瘓;5分為小鼠處于瀕死狀態(tài)。測評分≥1分為發(fā)病動物。評價(jià)EAE發(fā)病嚴(yán)重程度的指標(biāo)包括:每日平均臨床評分、平均起病天數(shù)、疾病指數(shù)及平均最高 評分[14]。
1.6 實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測CD4mRNA的表達(dá) ZO-1及βactin引物均由北京奧科鼎盛生物科技有限公司合成,引物序列見表1。
表1 引物序列
小鼠在相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)處死后,超凈工作臺上快速取大腦和脊髓組織,每組6只,液氮冷凍。取腦或脊髓組織約100 mg,采用異硫氰酸胍一步法抽提組織總RNA。所提總RNA經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳確定其完整性,紫外分光光度計(jì)檢測含量和純度。取2.0 μg總RNA進(jìn)行逆轉(zhuǎn)錄反應(yīng),采用SYBR Green熒光染料技術(shù)進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR擴(kuò)增。記錄其循環(huán)閾值(Ct),每個樣品中靶基因的相對mRNA表達(dá)采用相對定量公式2-△△Ct計(jì)算,其中△Ct值=靶基因Ct值-β-actin Ct值。
1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 采用SPSS13.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件分析,組間比較采用單因素方差分析,以(±s)表示。P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 造模后EAE小鼠行為學(xué)觀察結(jié)果 見表2。結(jié)果示各治療組與模型組相比,各治療組的平均起病天數(shù)明顯延遲(P<0.05),平均最高評分明顯降低(P<0.05),疾病指數(shù)顯著降低(P<0.05)。
表2 EAE小鼠神經(jīng)功能評分情況(±s)
表2 EAE小鼠神經(jīng)功能評分情況(±s)
與模型組比較,*P<0.05。
平均起病時(shí)間(d) 每日平均臨床評分(分)12.33±1.23 3.88±0.80激素治療組疾病指數(shù) 平均最高評分(分)模型組 90.54±30.75 3.21±1.25組 別13.33±1.61* 3.54±1.08中藥治療組 14.33±1.97* 3.50±0.81 62.14±25.46* 2.00±0.77*67.29±25.80* 2.13±0.83*
2.2 造模后EAE小鼠腦和脊髓內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá) 見表3~表4。與正常組比較,免疫后7 d,EAE小鼠腦內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá)顯著降低(P<0.05),而脊髓內(nèi)表達(dá)未見顯著改變(P>0.05);至免疫后14 d,EAE小鼠腦內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá)未見顯著改變(P>0.05),而脊髓內(nèi)表達(dá)顯著降低(P<0.05);免疫后24 d,EAE小鼠腦和脊髓內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá)繼續(xù)顯著降低(P<0.05或0.01);免疫后40 d,EAE小鼠腦內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá)未見顯著改變(P>0.05),而脊髓ZO-1 mRNA內(nèi)表達(dá)顯著降低(P<0.05)。
經(jīng)過益腎達(dá)絡(luò)飲治療后在14、24、40 d EAE小鼠腦組織ZO-1 mRNA的表達(dá)未見顯著改變(P>0.05)。中藥治療組EAE小鼠脊髓組織ZO-1 mRNA的表達(dá)在14 d時(shí)與模型組一樣出現(xiàn)顯著降低 (P<0.05),且與模型組比較未見顯著差異 (P>0.05)。中藥治療組在24 d和40 d EAE小鼠脊髓中ZO-1 mRNA的表達(dá)與正常組比較均未見顯著改變(P>0.05);與模型組比較,在第40日中藥治療組EAE小鼠脊髓中ZO-1 mRNA的表達(dá)顯著增加(P<0.05)。
經(jīng)過激素治療后在 14、24、40 d EAE小鼠腦組織 ZO-1 mRNA的表達(dá)未見顯著改變(P>0.05)。在14 d激素治療組EAE小鼠脊髓組織中ZO-1 mRNA的表達(dá)明顯降低(P>0.05),而在24 d和40 d激素治療組EAE小鼠脊髓組織中ZO-1 mRNA的表達(dá)均未見顯著改變(P>0.05)。
表3 ZO-1 mRNA在大腦組織中的表達(dá)(ZO-1/β-actin)
表4 ZO-1 mRNA在脊髓組織中的表達(dá)(ZO-1/β-actin)
佐劑組在免疫后7、14、24、40 d EAE小鼠腦和脊髓組織中ZO-1 mRNA的表達(dá)未見顯著改變(P>0.05)。
多發(fā)性硬化及其動物模型EAE是一類主要由T細(xì)胞介導(dǎo)的自身免疫性疾病,T細(xì)胞針對髓鞘成分的反應(yīng)在MS的發(fā)病過程中起到了關(guān)鍵的作用。其主要發(fā)病機(jī)制是某種誘因作用下激活的T細(xì)胞透過BBB進(jìn)入到腦實(shí)質(zhì)結(jié)合中樞的抗原遞呈細(xì)胞抗原,通過再刺激分泌出大量的趨化因子和細(xì)胞因子,進(jìn)一步促使B細(xì)胞和巨噬細(xì)胞的活化,募集外周血T細(xì)胞、單核細(xì)胞以及B細(xì)胞等進(jìn)入到炎癥部位,從而導(dǎo)致中樞神經(jīng)軸索的損害以及神經(jīng)組織的炎癥脫髓鞘反應(yīng)[15-16]。
BBB的基礎(chǔ)結(jié)構(gòu)是腦微血管內(nèi)皮細(xì)胞(BMEC),BMEC及BMEC間廣泛的緊密連接(TJ)構(gòu)成了BBB的第一道屏障,有助于維護(hù)腦組織微環(huán)境的穩(wěn)定[17]。TJ是細(xì)胞間的通透屏障,通過細(xì)胞旁路徑調(diào)控水、離子和大分子物質(zhì)的跨膜轉(zhuǎn)運(yùn)[18]。TJ蛋白表達(dá)量的改變、位置分布的變化和(或)結(jié)構(gòu)功能的異常均可能破壞TJ的完整性,引起細(xì)胞間連接的開放,導(dǎo)致BBB通透性的改變。TJ由跨膜蛋白、胞質(zhì)附著蛋白(ZO-1等)與細(xì)胞骨架蛋白相連而組成[19-20]。其中ZO-1是緊密連接復(fù)合體中一個非常重要的結(jié)構(gòu)蛋白,它一端與胞內(nèi)側(cè)的細(xì)胞骨架蛋白相連接,另一端又連接著跨膜蛋白,起到一個重要連接樞紐的作用[21-22];其下游與細(xì)胞內(nèi)信號傳導(dǎo)相關(guān)酶類和細(xì)胞激動蛋白相連接,其表達(dá)水平以及活性的降低均可以影響到細(xì)胞間緊密連接結(jié)構(gòu)的穩(wěn)定和功能的完整性[23]。因此,ZO-1在中樞神經(jīng)系統(tǒng)組織內(nèi)水平的變化與血-腦屏障的損傷程度具有相關(guān)性,可反映血腦屏障緊密連接的狀態(tài),從而作為血腦屏障破壞的標(biāo)志[24-25]。
本實(shí)驗(yàn)觀察了EAE小鼠腦和脊髓內(nèi)ZO-1 mRNA的表達(dá),發(fā)現(xiàn)免疫后7 d,腦內(nèi)ZO-1 mRNA表達(dá)出現(xiàn)顯著下降,而脊髓內(nèi)表達(dá)下降不明顯;免疫后14、24、40 d脊髓內(nèi)的ZO-1 mRNA表達(dá)均顯著低于正常值,脊髓內(nèi)ZO-1 mRNA表達(dá)減少的趨勢與神經(jīng)功能的評分的升高趨勢相符。中藥復(fù)方益腎達(dá)絡(luò)飲可以顯著改善EAE模型小鼠神經(jīng)功能評分,與正常組相比,激素組、中藥組在免疫后14、24、40 d ZO-1 mRNA的EAE小鼠大腦以及免疫后14、24、40 d ZO-1 mRNA的EAE小鼠脊髓中表達(dá)均未見顯著改變,其干預(yù)EAE的作用機(jī)制可能與血腦屏障緊密連接蛋白調(diào)節(jié)有關(guān)。
[1]Forster C.Tight junctions and the modulation of barrier function in disease[J].Histochem Cell Biol,2008,130(1):55-70.
[2]Abbott NJ,Rnnbck L,Hansson E.Astrocyte-endothelial interactions at the blood-brain barrier[J].Nat Rev Neurosci,2006,7(1):41-53.
[3]Bundgaard M, Abbott NJ.All vertebrates started out with a glial blood-brain barrier 4-500 million years ago[J].Glia,2008,56(7):699-708.
[4]Leech S, Kirk J, Plumb J, et al.Persistent endothelial abnormalities andblood-brainbarrierleakin primary and secondary progressive multiplesclerosis[J].NeuropatholApplNeurobiol,2007,33(1):86-98.
[5]Stamatovic SM,Dimitrijevic OB,Keep RF,et al.Inflammation and brain edema:new insights into the role of chemokines and their receptors[J].Acta Neurochir Suppl,2006,96:444-450.
[6]Lassmann H, Brück W, Lucchinetti CF.The immunopathology of multiplesclerosis:anoverview[J].BrainPathol,2007,17(2):210-218.
[7]Wekerle H.Lessons from multiple sclerosis:models, concepts, observations[J].Ann Rheum Dis,2008,67(Suppl 3):56-60.
[8]Hochmeister S,Grundtner R,Bauer J,et al.Dysferlin is a new marker for leaky brain blood vessels in multiple sclerosis[J].J Neuropathol Exp Neurol,2006,65(9): 855-865.
[9]Padden M,Leech S,Craig B,et al.Differences in expression of junctional adhesion molecule-A and beta-catenin in multiple sclerosis brain tissue:Increasing evidence for the role of tight junction pathology[J].Acta Neuropathol,2007,113(2): 177-186.
[10]Fabis MJ, Scott GS, Kean, et al.Loss of bloodbrain barrier integrity in the spinal cord is common to experimental allergic encephalomyelitis in knockout mouse models[J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(13):5656-5661.
[11]Rosso C,Remy P,Creange A,et al.Diffusion-weighted MR imaging characteristics of an acute strokelike form of multiple sclerosis[J].AJNR Am J Neuroradiol,2006,27(5):1006-1008.
[12]Wolburg-Buchholz K,Mack AF,Steiner E,et al.Loss of astrocyte polarity marks blood-brain barrier impairment during experimental autoimmune encephalomyelitis[J].Acta Neuropathol,2009,118(2):219-233.
[13]Kono DH,Urban JL,Horvath SJ,et al.Two minor determinants of myelin basic protein induce experimental allergic encephalomyelitis in SJL/J mice[J].J Exp Med,1988,168(1):213-227.
[14]Stosic-Grujicic S,Savic-Radojevic A,Maksimovic-Ivanic D,et al.Down-regulation of experimental allergic encephalomyelitis in DA rats by tiazofurin[J].J Neuroimmunol,2002,130(1-2):66-77.
[15]Bitsch A,Schuchardt J,Bunkowski S,et al.Acute axonal injury in multiple sclerosis.Correlation with demyelination and inflammation[J].Brain,2000,123(Pt6):1174-1183.
[16]Noseworthy JH,Lucchinetti C,Rodriguez M,et al.Multiple sclerosis[J].N Engl J Med,2000,343(13):938-952.
[17]Persidsky Y,Heilman D,Haorah J,et al.Rho-mediated regulation of tight junctions during monocyte migration across the blood-brain barrier in HIV-1 encephalitis(HIVE)[J].Blood,2006,107(12):4770-4780.
[18]González-Mariscal L,Betanzos A,Nava P,et al.Tight junction proteins[J].Prog Biophys Mol Biol,2003,81(1):1-44.
[19]Ng I,Yap E,Tan WL,et al.Blood-brain barrier disruption following traumatic brain injury:roles of tight junction proteins[J].Ann Acad Med Singapore,2003,32(5 Suppl):S63-66.
[20]Kis B,Snipes JA,Deli MA,et al.Chronic adrenomedullin treatment improves blood-brain barrier function but has no effects on expression oftightjunctionproteins[J].ActaNeurochirSuppl,2003,86:565-568.
[21]Umeda K,Ikenouchi J,Katahira-Tayama S,et al.ZO-1 and ZO-2 independently determine where claudins are polymerized in tightjunction strand formation[J].Cell,2006,126(4):741-754.
[22]曲友直,李敏,趙燕玲,等.黃芪甲苷對大鼠腦缺血再灌注后血-腦屏障的保護(hù)作用及ZO-1蛋白表達(dá)的影響[J].臨床神經(jīng)病學(xué)雜志,2009,22(4):278-280.
[23]Segretain D,F(xiàn)iorini C,Decrouy X,et al.A proposed role for ZO-1 in targeting connexin 43 gap junctions to the endocytic pathway [J].Biochimie,2004,86(4-5):241-245.
[24]石向群,楊金升,石莉,等.伊文思藍(lán)、ZO-1評估血腦屏障損傷的應(yīng)用研究[J].西北國防醫(yī)學(xué)雜志,2000,25(5):329-332.
[25]鮑歡,包仕堯.缺氧后血腦屏障緊密連接變化的分子機(jī)制[J].國外醫(yī)學(xué):腦血管疾病分冊,2005,13(8):604-608.