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        強(qiáng)噪聲暴露后不同時(shí)期豚鼠耳蝸外毛細(xì)胞死亡方式的研究

        2012-01-11 06:49:56薛秋紅何堅(jiān)陳佳吳翔磊龔樹(shù)生謝靜
        關(guān)鍵詞:基底膜毛細(xì)胞豚鼠

        薛秋紅 何堅(jiān) 陳佳 吳翔磊 龔樹(shù)生 謝靜

        研究表明,噪聲首先損傷柯替器的外毛細(xì)胞,從耳蝸底回開(kāi)始,進(jìn)行性向蝸?lái)敯l(fā)展,可進(jìn)一步累及內(nèi)毛細(xì)胞、支持細(xì)胞、耳蝸血管紋甚至螺旋神經(jīng)節(jié)細(xì)胞[1]。耳蝸的損害存在兩種類型的細(xì)胞死亡—即凋亡和壞死[2],本實(shí)驗(yàn)采用細(xì)胞核熒光染色方法,觀察強(qiáng)噪聲暴露后不同時(shí)期豚鼠耳蝸毛細(xì)胞死亡的不同方式,為其不同的時(shí)期干預(yù)提供實(shí)驗(yàn)依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 選用健康白色紅目雄性豚鼠48只,體重400~450 g,耳廓反射靈敏,鼓膜完整,無(wú)中耳炎,無(wú)藥物、噪聲接觸史。隨機(jī)分為健康對(duì)照組(8只)和實(shí)驗(yàn)組(40只),實(shí)驗(yàn)組又分為噪聲暴露后3 h、1 d、4 d、14 d、30 d組,每組8只。實(shí)驗(yàn)前適應(yīng)性喂養(yǎng)1周。

        1.2實(shí)驗(yàn)方法

        1.2.1噪聲暴露 噪聲由軟件4 kHz NBN-316 Hz BW-50 mV(北京解放軍總醫(yī)院耳鼻咽喉研究所自制并惠贈(zèng)) 經(jīng)筆記本電腦聲卡產(chǎn)生,經(jīng)放大器放大傳至揚(yáng)聲器,揚(yáng)聲器置于80 cm×80 cm×85 cm的雙層隔音箱四角;實(shí)驗(yàn)組豚鼠置于35 cm×35 cm×50 cm的飼養(yǎng)籠中,自由進(jìn)水,豚鼠活動(dòng)范圍內(nèi)聲強(qiáng)相差最大不超過(guò)5 dB。用HS6280型噪聲頻譜分析儀(中國(guó)江西國(guó)營(yíng)紅聲器材廠)連續(xù)監(jiān)測(cè),噪聲為中心頻率4 kHz的窄帶噪聲,聲級(jí)計(jì)測(cè)量噪聲強(qiáng)度,給聲強(qiáng)度為120 dB SPL,暴露時(shí)間為4 h。對(duì)照組正常飼養(yǎng)不作任何處理。

        1.2.2聽(tīng)性腦干反應(yīng)(ABR)測(cè)試:正常對(duì)照組、實(shí)驗(yàn)組豚鼠在噪聲暴露前及噪聲暴露后相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)處死前,以10%水合氯醛(30 mg/kg)腹腔麻醉,在靜電屏蔽室內(nèi)測(cè)試ABR。采用Nicolet Compass 系統(tǒng),刺激聲為click,重復(fù)率為20次/秒, 掃描周期為10 ms,濾波帶寬100~3 000 Hz,信號(hào)疊加1 024次,以引出可重復(fù)波Ⅲ的最小刺激聲強(qiáng)度為標(biāo)準(zhǔn)判斷反應(yīng)閾。

        1.2.3耳蝸基底膜鋪片、Hoechst33342熒光染色 各組豚鼠于全身麻醉狀態(tài)下完成ABR測(cè)試后,快速斷頭處死,取雙側(cè)聽(tīng)泡,開(kāi)放卵圓窗和圓窗,灌注4%多聚甲醛磷酸緩沖液后,將聽(tīng)泡置于4%多聚甲醛磷酸緩沖液2 h,去蝸殼,分離耳蝸基底膜;應(yīng)用DNA熒光染料Hoechst33342進(jìn)行細(xì)胞核染色。將分離的基底膜置于染色液中,室溫避光染色10 min后10 mmol/L BPS清洗標(biāo)本3次,染色后的基底膜鋪片,50%甘油封片。共聚焦熒光顯微鏡觀察毛細(xì)胞核的變化并計(jì)數(shù);觀察全耳蝸基底膜,選擇受損最明顯的一段基底膜(距蝸尖約9~14 mm處,長(zhǎng)約6 mm),定量觀察受損的外毛細(xì)胞,并分別計(jì)數(shù)凋亡、壞死和缺失數(shù)目的百分比。 Hoechst33342染色顯示核固縮、核碎裂是細(xì)胞凋亡的特征,核腫脹是細(xì)胞壞死的特征,在正常的毛細(xì)胞排列處出現(xiàn)空缺為毛細(xì)胞缺失。

        1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 各組計(jì)量資料以均數(shù)± 標(biāo)準(zhǔn)差表示,用SPSS11.5統(tǒng)計(jì)軟件兩組間比較采用t檢驗(yàn),多組間比較采用單因素方差分析。

        2 結(jié)果

        2.1各組ABR反應(yīng)閾 對(duì)照組及實(shí)驗(yàn)組噪聲暴露前后ABR平均反應(yīng)閾見(jiàn)表1,可見(jiàn)實(shí)驗(yàn)組噪聲暴露后各組與對(duì)照組及實(shí)驗(yàn)組噪聲暴露前ABR閾值差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),噪聲暴露后3 h、1 d組與噪聲暴露后其他組ABR閾值差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),但噪聲暴露后4 d、14 d、30 d組間差異沒(méi)有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P>0.05)。說(shuō)明本實(shí)驗(yàn)的噪聲條件可以引起豚鼠聽(tīng)力永久性閾移,噪聲暴露后3 h閾移達(dá)到高峰,4 d后基本穩(wěn)定。

        注:*與對(duì)照組及同組噪聲暴露前相比,P<0.01;△與噪聲暴露后4、14、30 d組相比,P<0.01

        2.2共聚焦熒光顯微鏡下觀察 正常對(duì)照組毛細(xì)胞核為淡藍(lán)色,大小一致,三排外毛細(xì)胞及一排內(nèi)毛細(xì)胞排列整齊。噪聲刺激后3 h、1 d、4 d、14 d、30 d組外毛細(xì)胞排列紊亂,內(nèi)、外毛細(xì)胞均呈現(xiàn)3種病理改變:①核腫脹:細(xì)胞核體積增大,熒光染色減弱;②核固縮:細(xì)胞核體積縮小,熒光染色增強(qiáng);③核消失:在原細(xì)胞核位置出現(xiàn)空白區(qū)。根據(jù)Hoechst33342染色判斷標(biāo)準(zhǔn),這三種核改變分別是細(xì)胞發(fā)生壞死、凋亡和缺失的改變。各種毛細(xì)胞核的病理改變多見(jiàn)于第一排外毛細(xì)胞,其次為第二、第三排,內(nèi)毛細(xì)胞核受損較少。毛細(xì)胞核形態(tài)學(xué)改變累及耳蝸基底膜各回,主要為底回末端和第二回起始區(qū)域(距蝸尖約9~14 mm處,長(zhǎng)約6 mm)(圖1)。

        圖1 各組耳蝸基底膜鋪片(Hochest33342染色×400)

        2.3損傷的外毛細(xì)胞定量分析 在噪聲暴露后總的趨勢(shì)是缺失的外毛細(xì)胞逐漸增加,壞死和凋亡的細(xì)胞數(shù)逐漸減少,總的損傷外毛細(xì)胞數(shù)(壞死、凋亡、缺失)明顯增加。凋亡和壞死的細(xì)胞數(shù)在不同的時(shí)間點(diǎn)不同,噪聲暴露后3 h、1 d、4 d組凋亡的平均細(xì)胞數(shù)百分比明顯多于壞死(P<0.05),噪聲暴露后14 d組凋亡與壞死的細(xì)胞數(shù)百分比沒(méi)有明顯差異(P>0.05),噪聲暴露后30 d組凋亡細(xì)胞少于壞死細(xì)胞(P<0.05)(表2)。

        表2 實(shí)驗(yàn)各組豚鼠外毛細(xì)胞凋亡、壞死占受損細(xì)胞總數(shù)百分比

        注:與同組壞死的平均細(xì)胞百分?jǐn)?shù)相比,*P<0.05

        3 討論

        研究表明,強(qiáng)噪聲刺激后,耳蝸內(nèi)細(xì)胞壞死和凋亡是同時(shí)發(fā)生的[2]。細(xì)胞的死亡方式與線粒體能量代謝相關(guān),細(xì)胞內(nèi) ATP水平保持在一定的閾值以上時(shí), 細(xì)胞以調(diào)亡方式死亡,而 ATP水平在閾值之下時(shí), 細(xì)胞以壞死方式死亡[ 3]。Hoechst為核酸特異性染料,能區(qū)分凋亡和壞死細(xì)胞,凋亡細(xì)胞發(fā)生染色質(zhì)濃縮或核碎裂,染色后熒光顯微鏡下表現(xiàn)為胞核致密濃染或碎塊樣致密濃染,而壞死細(xì)胞表現(xiàn)為核腫脹,熒光變淡。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果中,在噪聲刺激后基底膜鋪片Hoechst33342熒光染色顯示內(nèi)、外毛細(xì)胞均呈現(xiàn)核腫脹、核固縮和核消失3種病理改變,外毛細(xì)胞比內(nèi)毛細(xì)胞損害嚴(yán)重,外毛細(xì)胞損害主要表現(xiàn)在底回和第二回,且多為第一排和第二排,與HU等[2]報(bào)道基本一致。同時(shí)實(shí)驗(yàn)組受損的細(xì)胞愈近底回愈多,愈近頂回則愈少,耳蝸的基底回末段及第二回開(kāi)始處病變最明顯,可能是由于此處接近鼓室,容易受噪聲影響,且該部位主要感受4 kHz的聲音,本實(shí)驗(yàn)所給噪聲的中心頻率為4 kHz,故此處損害最明顯。噪聲可造成耳蝸局部缺血再灌注及細(xì)胞膜微小損傷,導(dǎo)致谷氨酸、NO、ROS(活性氧)形成,其中ROS的產(chǎn)生和耳蝸中抗氧化防御系統(tǒng)的改變對(duì)耳蝸細(xì)胞的損傷起到了主要作用[4]。許多實(shí)驗(yàn)證明NO、ROS可直接誘導(dǎo)體內(nèi)、外各種組織的氧化損傷和細(xì)胞凋亡,因此推測(cè)噪聲刺激導(dǎo)致耳蝸內(nèi)NO、ROS的水平增高,并可能激活細(xì)胞內(nèi)的信號(hào)途徑和調(diào)控基因表達(dá)來(lái)誘導(dǎo)耳蝸細(xì)胞凋亡。本實(shí)驗(yàn)中,強(qiáng)噪聲暴露后30天,耳蝸還同時(shí)存在3種核形態(tài)變化,據(jù)此推論強(qiáng)噪聲暴露后毛細(xì)胞的損傷是一個(gè)復(fù)雜的長(zhǎng)期非同步的病理變化過(guò)程,且耳蝸的損傷至少持續(xù)到噪聲暴露后30天。

        從文中結(jié)果看,實(shí)驗(yàn)組噪聲暴露后總的趨勢(shì)是缺失的外毛細(xì)胞明顯增加,壞死和凋亡的細(xì)胞數(shù)減少,噪聲暴露后3 h、1 d、4 d組凋亡的細(xì)胞數(shù)明顯多于壞死(P<0.05),噪聲暴露后14 d組凋亡與壞死的細(xì)胞數(shù)沒(méi)有明顯差異(P>0.05),噪聲暴露后30 d組凋亡的細(xì)胞數(shù)明顯少于壞死(P<0.05)。由此推論, 強(qiáng)噪聲暴露后的早期,細(xì)胞能量代謝系統(tǒng)輕度受損,毛細(xì)胞死亡方式以凋亡為主;到中晚期一些細(xì)胞內(nèi)ATP含量嚴(yán)重減少,細(xì)胞死亡以壞死為主。凋亡不僅發(fā)生在強(qiáng)噪聲對(duì)豚鼠耳蝸損害的早期,而且至少一直持續(xù)到噪聲暴露后30天。這可能與強(qiáng)噪聲除對(duì)內(nèi)耳直接作用外,還會(huì)發(fā)生次級(jí)損傷有關(guān),即高強(qiáng)度噪聲后產(chǎn)生大量自由基,自由基損傷DNA、蛋白質(zhì)、脂質(zhì)、核酸等,導(dǎo)致毛細(xì)胞的凋亡和壞死[5,6]。噪聲暴露后30天總的損傷外毛細(xì)胞數(shù)(壞死、凋亡、缺失)明顯上升,這與豚鼠噪聲暴露后聽(tīng)力損失結(jié)果并不矛盾,因?yàn)殡S著噪聲停止刺激后時(shí)間的延長(zhǎng),大量損害不嚴(yán)重的毛細(xì)胞在各種細(xì)胞保護(hù)機(jī)制的作用下會(huì)逐漸恢復(fù)[7],因此聽(tīng)力也逐漸恢復(fù),而本研究統(tǒng)計(jì)的總的損傷細(xì)胞數(shù)是不可逆的細(xì)胞病理改變,只是損傷細(xì)胞的一部分。至于噪聲誘導(dǎo)耳蝸細(xì)胞凋亡與聽(tīng)力損失的具體相關(guān)性,以及凋亡的途徑和分子調(diào)控機(jī)制,還需進(jìn)一步的研究。

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