阮麗麗 杭州市紅十字會醫(yī)院神經內科 杭州 310003
糖尿病性腦病變是糖尿病常見的慢性并發(fā)癥之一,主要表現(xiàn)為認知功能障礙、認知力減弱、智力降低、情感障礙等。本實驗應用鏈脲佐菌素(STZ)制備1型糖尿病模型大鼠,觀察糖尿病大鼠的認知功能,以及大鼠海馬組織細胞色素C(Cyt-c)蛋白表達的改變,探討糖尿病對認知功能的影響及其機制,現(xiàn)報道如下。
1.1 動 物 SD雄性大鼠20只,體質量140~180g,SPF級,由浙江大學醫(yī)學院動物實驗中心提供(SCXK[浙]2003—0001)。
1.2 主要儀器 One-Touch-Ⅱ型快速血糖儀及血糖試紙(美國強生公司);Morris水迷宮及分析軟件(浙江大學藥學院藥物研究所);WFZ800-3型紫外可見單光束分光光度計(北京瑞利光學儀器廠);分析天平(瑞士梅特勒-托利多公司產品);電泳儀(BIORAD,Power PAC200);電泳濕轉儀(BIO-RAD,Trans-Blot SD)。
1.3 主要試劑 鏈脲佐菌素(STZ)、Cyt-c及GAPDH抗體(Santa Cruz公司);山羊抗兔IgG(北京中杉金橋生物試劑公司);Western blotting相關試劑(碧云天生物技術研究所)。
2.1 模型建立 20只大鼠用隨機數(shù)字表隨機分為正常組、實驗組各10只。兩組大鼠均予標準鼠食飼養(yǎng),并給飲5%葡萄糖溶液。實驗組大鼠禁食24h,按60mg/kg腹腔注射鏈脲霉素(pH 4.4檸檬酸緩沖液配制,置于冰浴備用)。第4天尾部采血以One-Touch-Ⅱ型快速血糖測定儀測每只大鼠空腹血糖,血糖>15mmol/L大鼠為造模成功。30天后,進行Morris水迷宮測定,處死后取大腦海馬組織進行細胞色素C蛋白測定。
2.2 Morris水迷宮測定方法 主要由圓形水池和自動攝象及電腦分析系統(tǒng)組成。水池上方的攝像機同步記錄大鼠的運動軌跡。測試前將水注入池中,水深30cm(即水面高出站臺表面1cm,使大鼠不能見到站臺),放入碳素墨水使之成為黑色,水溫22~25℃。實驗時要求各種實驗條件保持不變。每只動物第1天訓練2次,使之學習并產生記憶,入池位置為站臺的對象限及鄰象限,于象限邊1/2弧度處將動物頭朝池壁入水,120s未找到站臺者,將其引至站臺,放置30s引導其學習與記憶。試驗共進行5天,前4天為訓練時間,第5天測試。數(shù)據采集及圖像分析均由圖像自動監(jiān)視和處理系統(tǒng)完成。觀察指標:觀察120s內找到平臺的時間(潛伏期);搜尋平臺的策略(直線式,記分4分;趨向式,記分3分;隨機式,記分2分;圓圈式,記分1分)。
2.3 大鼠海馬組織細胞色素C(Cyt-c)蛋白測定 取單側海馬組織200mg加入含蛋白酶抑制劑的PBS緩沖液,4℃勻漿后10000g離心15min,上清蛋白定量后,取50μg蛋白,變性,行聚丙酰胺凝膠電泳,轉移至硝酸纖維膜,6%脫脂奶粉室溫封閉1h,4℃過夜,洗滌后膜和兔抗鼠 Cyt-c抗體(1∶1 000)作用,4℃過夜,洗滌后加入辣根過氧化酶結合的抗兔IgG(1∶5 000),化學發(fā)光試劑檢測,X線片顯影;將目的蛋白發(fā)光后的NC膜用strip液將一抗洗脫,結合內參GAPDH(1∶2 000),余步驟同前。定量分析采用分子生物學圖像分析系統(tǒng)測定各目的條帶積分灰度值,所測結果為目的條帶除以內參條帶灰度值的比值。
2.4 統(tǒng)計學方法 采用SPSS13.0軟件包對實驗數(shù)據進行方差分析,計量資料先行方差齊性檢驗。方差齊性采用LSD-t檢驗;若方差不齊,則采用Tamhane’St檢驗。
3.1 Morris水迷宮潛伏期與搜索策略檢測結果 實驗第5天,實驗組大鼠潛伏期比正常組明顯延長(P<0.01),搜索策略明顯劣于正常組(P<0.01),見表1。
表1 兩組Morris水迷宮第5天潛伏期和搜尋平臺策略結果比較
3.2 大腦海馬組織Cyt-c蛋白表達 Western blotting結果顯示,正常組Cyt-c蛋白表達量0.65±0.21,實驗組為 1.13±0.42,實驗組較正常組明顯升高(P<0.05)。
有研究表明,糖尿病與認識功能障礙有密切聯(lián)系[1],糖尿病腦病患者主要表現(xiàn)輕、中度認知功能障礙。由于這些表現(xiàn)并不十分嚴重或缺乏對這方面的了解而常被忽視。對動物的認知過程一般從行為學、電生理、腦成像、組織化學及分子生物學等方面進行分析。本實驗采用的Morris水迷宮就是一種分析行為學方法。正常動物在經過3~4個實驗日訓練后,很快就學會以最快、最佳的速度和策略搜索到站臺確切位置;如果破壞海馬系統(tǒng),可使動物的反應時間延長,搜索目標的軌跡混亂,由此可檢驗腦的某結構對空間認知的影響[2]。本實驗結果表明,與正常組比較,糖尿病大鼠潛伏期明顯延長、搜索策略明顯變差,說明糖尿病大鼠存在著空間學習記憶障礙,提示該認知功能障礙可能與海馬功能受損有關。
Christelle等[3]報道糖尿病是引起Alzheimer?。ˋD)的一個高危因素。神經元細胞的死亡是AD的一個特征,而細胞的死亡與細胞凋亡密切相關。糖尿病時細胞凋亡增加可能與糖尿病引起的高血糖有關[4]。Brownlee等[5]提出,高血糖引起線粒體中超氧陰離子生成過多,導致組織細胞發(fā)生氧化應激,使機體處于易損狀態(tài),線粒體膜通透性發(fā)生改變。Cyt-c是線粒體呼吸鏈中傳遞電子的載體,由核基因編碼的多肽和線粒體編碼的亞鐵血紅素組成,松散地結合在富含不飽和脂肪酸的線粒體內膜外側心磷脂上,不能自由通過線粒體外膜。目前,Cyt-c促進細胞凋亡作用正逐步闡明[6],當?shù)蛲龃碳ひ蜃右鹁€粒體膜通透性發(fā)生改變,Cyt-c從間隙釋放到胞漿后,首先與胞漿中的凋亡蛋白酶活化因子-1(Apaf-1)結合,聚合成為復合體,繼而啟動caspase-9形成全酶,然后裂解,最后導致caspase-9前體自動活化,活化的caspase-9分裂,繼續(xù)激活下游的capases成員,誘導細胞發(fā)生凋亡[7-8]。壞死和凋亡雖然為細胞死亡的兩種方式,但兩者發(fā)生過程中的某些環(huán)節(jié)可能重疊,如線粒體膜通透性的改變[9]。本實驗結果顯示,正常大鼠海馬組織中Cyt-c表達很少,糖尿病大鼠Cyt-c表達明顯增多。我們認為,造模后,高血糖引起線粒體膜通透性發(fā)生改變,釋放出Cyt-c并結合至核膜,誘導DNA裂解,進入非caspase依賴性細胞凋亡過程[10];Cyt-c同時也對下游caspase進行活化,進入caspase依賴性細胞凋亡過程,導致細胞凋亡[11]。以上過程導致糖尿病大鼠海馬組織中Cyt-c表達較正常大鼠明顯增加,與實驗結果相符。本實驗結果說明,糖尿病時高血糖引起海馬組織Cyt-c表達增加,從而導致神經元細胞凋亡增加,進而導致海馬功能受損,引起認知障礙。
[1]Zina Kroner.The relationship between Alzheimer’s disease and diabetes:Type 3 diabetes[J].Alternative Medicine Review,2009,14(4):373-379.
[2]韓太真,吳馥梅.學習與記憶的神經生物學[M].北京:北京醫(yī)科大學、中國協(xié)和醫(yī)科大學聯(lián)合出版社,1998:61.
[3]Christelle R,Henri G,Jean-Philippe E,et al.Metabolic syndrome and risk for incident Alzheimer’s disease or vascular dementia[J].Diabetes Care,2009,32(1):169-174.
[4]LiPF,DietzR,vonHarsdorfR.Reactive oxygen species induce apoptosis of vascular smooth muscle cell[J].FEBS Lett,1997,404(2-3):249-252.
[5]Brownlee M.The pathobiology of diabetic complications:a unifying mechanism[J].Diabetes,2005,54:1615-1625.
[6]Nakagawa Y,Suzuki T,Kamimura H,et al.Role of mitochondrial membrane permeability transition in N-nitrosofenfluramine-induced cell injury in rat hepatocytes[J].Eur J Pharmacol,2006,529(1-3):33-39.
[7]Kim R,Emi M,Tanabe K.Role of mitochondria as the gardens of cell death[J].Cancer Chemother Pharmacol,2006,57(5):545-553.
[8]Hu Y,Benedict MA,Ding L,et a1.Role of cytochrome c and dATP/ATP hydrolysis in Apaf-1-mediated caspase-9 activation and apoptosis[J].EMBO J,1999,18(13):3586-3595.
[9]Malhi H,Gores GJ,Lemasters JJ.Apoptosis and necrosis in the liver:a tale of two deaths[J].Hepatology,2006,43(2 Suppl 1):S31-44.
[10]Joza N,Susin SA,Daugas E,et al.Essential role of the mitochondrial apoptosis-inducing factor in programmed cell death[J].Nature,2001,410(6828):549-554.
[11]Arnoult D,Gaume B,Karbowski M,et al.Mitochondrial release of AIF and EndoG requires caspase activation downstream of Bax/Bak-mediated permeabilization[J].EMBO J,2003,22(17):4385-4399.