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        辛伐他汀對大鼠腦缺血再灌注損傷細胞凋亡的影響

        2011-05-31 03:42:04王柏欣邱洪斌王淑秋王景濤陳廷玉
        中國老年學雜志 2011年10期
        關(guān)鍵詞:電鏡神經(jīng)細胞辛伐他汀

        王柏欣 王 昕 邱洪斌 王淑秋 陳 梅 王景濤 徐 輝 陳廷玉

        (佳木斯大學,黑龍江 佳木斯 154007)

        他汀類藥物是新一代調(diào)脂藥,可競爭性抑制膽固醇合成酶系中的關(guān)鍵酶羥甲基戊二酰輔酶A(HMG-CoA)還原酶,使膽固醇合成受到限制。辛伐他汀為半合成他汀類藥物,在缺血性卒中、多發(fā)性硬化、Alzheimer病等神經(jīng)系統(tǒng)疾病中有廣泛神經(jīng)保護作用〔1~3〕。本實驗采用大鼠局灶性腦缺血模型,觀察辛伐他汀對大鼠腦缺血損傷后細胞凋亡的影響。

        1 材料與方法

        1.1 動物分組 健康成年Wistar大鼠,250~300 g,隨機分為四組,空白對照組,假手術(shù)組,模型組,辛伐他汀組。模型組和辛伐他汀組都應用線栓法建立大鼠腦缺血再灌注損傷模型,模型組根據(jù)再灌注時間分為1,2,3,5,7 d。辛伐他汀組也根據(jù)用藥時間再分為用藥 1,2,3,5,7 d。

        1.2 試劑 辛伐他汀(浙江京新藥業(yè)股份有限公司),細胞凋亡試劑盒(In situ cell apoptosis Detection kit I,POD)(武漢博士德生物工程有限公司)。

        1.3 方法

        1.3.1 建立腦缺血再灌注模型 根據(jù)Longa法〔4〕大腦中動脈栓塞法制備腦缺血再灌注模型。動物稱重,10%水合氯醛(0.3 ml/100 g)腹腔注射麻醉,將動物仰臥位固定(上門齒、四肢遠端用粗線固定于鼠板上),碘伏消毒頸部皮膚,頸部正中切口,分離出頸總動脈、頸外動脈以及頸內(nèi)動脈,分別接扎頸總動脈及頸外動脈,在頸總動脈距離分叉處將尼龍線導入頸內(nèi)動脈,插入線栓深度約為(18.0±0.5)mm,感到輕微阻力時立即停止插線。此后縫合傷口,留置線頭于體外,30 min后將線拴提至頸總動脈內(nèi),完成再灌注。術(shù)后將室溫控制在25℃ ~30℃,視動物狀況注射呋塞米或抗生素預防腦水腫和感染。假手術(shù)組除進線1.5 mm外,其余相同。辛伐他汀組模型制作成功后,在術(shù)后第1天開始給藥。

        1.3.2 大鼠神經(jīng)功能Zea-longa評分〔4〕無神經(jīng)功能缺失癥狀,活動正常者,計0分;不能完全伸展對側(cè)前爪,計1分;動物爬行時出現(xiàn)向右轉(zhuǎn)圈(追尾現(xiàn)象),計2分;身體向偏癱側(cè)傾倒者,計3分;不能自發(fā)行走,意識喪失者,計4分。評分為0分和4分者均被剔除,神經(jīng)功能評價在取材前進行。

        1.3.3 組織切片的制備 各組實驗結(jié)束點將動物麻醉,經(jīng)左心室插管快速灌注生理鹽水約250 ml進行心臟灌洗,用4%多聚甲醛灌洗固定,迅速斷頭取腦,于視交叉后冠狀切取3 mm厚度組織塊,4%多聚甲醛固定,常規(guī)脫水,石蠟包埋,切片。HE染色觀察病理形態(tài)學改變,神經(jīng)細胞TUNEL染色法,觀察細胞凋亡情況:切片常規(guī)脫蠟入水,按照試劑盒說明書操作,DAB顯色10~30 min,水洗,蘇木素輕度復染,水洗,脫水,透明,封片。光鏡下觀察正常細胞核被染成藍色,凋亡細胞核被染成棕黃色。凋亡細胞計數(shù)方法:選取腦皮層部位,200倍光鏡下計數(shù)5個視野陽性細胞數(shù)目,求其平均值。

        1.3.4 電鏡法 各組動物大腦皮層部位腦組織,常規(guī)透射電鏡樣品制備(鋨酸后固定2 h,0.1 mmol PBS漂洗,50%、70%、80%、90%、100%、乙醇逐級脫水,純丙酮置換,Epon812包埋,60℃聚合48 h,超薄切片經(jīng)鈾-鉛雙染),使用電鏡對大腦皮層腦組織進行觀察。

        1.4 統(tǒng)計學方法 計量資料以x±s表示。不同時點間比較采用單因素方差分析。

        2 結(jié)果

        2.1 HE染色結(jié)果 空白對照組(即正常組)形態(tài)結(jié)構(gòu)未見異常,假手術(shù)組染色深,細胞形態(tài)和結(jié)構(gòu)無異常。模型組,隨著再灌注時間的不同出現(xiàn)不同程度細胞形態(tài)和結(jié)構(gòu)異常,胞體和胞核固縮,深染,核仁不清楚,甚至出現(xiàn)神經(jīng)元核破裂。辛伐他汀組也出現(xiàn)不同程度細胞形態(tài)和結(jié)構(gòu)異常,胞體和胞核固縮甚至核破裂,但是相對于模型組同時間比較數(shù)量減少,程度較弱,以3 d最顯著。見圖1。

        2.2 電鏡法檢測結(jié)果 假手術(shù)組腦細胞染色質(zhì)分布均勻,核膜完整,核孔清晰可見,細胞器結(jié)構(gòu)完好。模型組與假手術(shù)組相比線粒體數(shù)量減少,部分線粒體嵴減少,板層小體數(shù)目減少,排空增多。辛伐他汀組可以減輕此種情況,線粒體呈圓形或卵圓形,嵴較清楚,微絨毛較完整,板層小體結(jié)構(gòu)較完整,僅出現(xiàn)少量的線粒體空泡。見圖2。

        2.3 TUNEL法檢測結(jié)果 空白對照組(即正常組)未見凋亡細胞,假手術(shù)組僅有零星凋亡細胞,模型組與辛伐他汀組各亞組在缺血再灌注1 d后凋亡細胞開始升高,在3 d達到高峰,隨后下降;辛伐他汀組與模型組在相同時間點組間比較,凋亡細胞數(shù)量明顯減少,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。以第3天表現(xiàn)最顯著,見表1、圖3。

        表1 辛伐他汀對大鼠局部腦缺血再灌注不同時點腦細胞凋亡的影響(x±s,n=6,個/200 倍視野)

        圖1 HE染色觀察各組神經(jīng)細胞病理形態(tài)學改變(×200)

        圖2 電鏡下觀察各組細胞超微結(jié)構(gòu)

        圖3 TUNEL法觀察各組神經(jīng)細胞凋亡情況(×200)

        3 討論

        缺血性腦血管病(ICVD)在腦血管病中最為常見,在我國因其具有發(fā)病率上升及發(fā)病年齡的年輕化趨勢而日益受到醫(yī)學界的重視〔5〕。近年的研究表明,細胞凋亡是腦缺血病理作用的重要環(huán)節(jié),是造成腦缺血后繼發(fā)性損害的重要機制〔5,6〕,腦缺血再灌注后神經(jīng)細胞損害的分子機制迄今尚未完全被闡明。腦缺血后神經(jīng)元的死亡主要表現(xiàn)為壞死和凋亡兩種形式。細胞凋亡是在生理和病理條件下的一種主動的死亡方式,受細胞內(nèi)、外因子調(diào)控。在腦缺血再灌注的中心區(qū),由于血液供給急劇減少,細胞能量供給缺乏,ATP耗竭,Na+/K+泵衰竭,導致大多數(shù)細胞腫脹,壞死;而在缺血半暗帶區(qū)由于有側(cè)支循環(huán)供血,缺血程度較缺血中心區(qū)輕,存在部分能量供應,則細胞損害相對較輕而進展慢;“再灌注損傷”可產(chǎn)生鈣離子失衡,內(nèi)質(zhì)網(wǎng)和線粒體功能異常,過氧化作用增強等,這些均可以導致DNA損傷,后者如不能及時修復,積累到一定程度,則可通過啟動凋亡程序,引起細胞凋亡,并隨再灌注時間延長,DNA損傷積累,凋亡細胞亦不斷增加〔7〕。目前認為,凋亡在腦缺血-再灌注損傷的發(fā)病機制中發(fā)揮著重要作用,并且對梗死的形成過程有著重要的影響。近來的研究表明,辛伐他汀具有多向性神經(jīng)保護功能〔8〕,能降低腦卒中的發(fā)病率并減輕再灌注損傷〔9〕,但其機制尚未明了。神經(jīng)細胞凋亡是造成缺血-再灌注損傷的重要因素,凋亡神經(jīng)細胞的多少決定著腦損傷最終范圍的大小〔10〕,因此,防治細胞凋亡是減輕再灌注損傷的重要環(huán)節(jié)。本實驗結(jié)果表明,腦缺血再灌注損傷后出現(xiàn)明顯的細胞凋亡,經(jīng)過辛伐他汀治療后,細胞凋亡數(shù)目和程度明顯降低,說明辛伐他汀具有一定的抑制凋亡的作用,并可能通過抑制神經(jīng)細胞凋亡而保護大鼠腦缺血再灌注所致的損傷,但其抑制凋亡的機制還有待進一步研究。

        1 Amarencto P,Moskowitz MA.The dynamics of statins:from event prevention to neuroprotection〔J〕.Stroke,2006;37:294-6.

        2 Youssef S,Stuve O,Patarroyo JC,et al.The HMG-CoA reductase inhibitor,atorvastatin,promotes a thbias and reverses paralysis in central nervous system autoimmune disease〔J〕.Nature,2002;420:78-84.

        3 Eekert GP,Wood WG,Muller WE.Statins:drugs for Alzheimer's disease〔J〕.Neurol Transm,2005;112:1057-71.

        4 Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,et al.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniotomy in rats〔J〕.Stroke,1989;20(1):84-91.

        5 Wang P,Wang W,Xuy L,et al.Comparison of focal cerebral ischemia/reperfusion induced apoptosis of astrocytes and neurons in rats〔J〕.Chin J Histochem Cytochem,2006;16(2):113-8.

        6 Kalinichenko SG,Matveeva NI.Morphological characteristic of apoptosis and its significance in neurogenesis〔J〕.Neurosci Behav Physiol,2008;38(4):333-44.

        7 Nagayama T,Lan J,Henshall DC,et al.Induction of oxidative DNA damage in the peri-infarct region after permanent focal cerebral ischemia〔J〕.J Neuroehem,2000;75(4):1716-28.

        8 謝 坤,李 勇.他汀類藥物的多效性研究〔J〕.世界臨床藥物,2005;26:589-91.

        9 Tobert JA.Lovastatin and beyond:the history of the HMG-CoA reductase inhibitors〔J〕.Nat Rev Drug Discov,2003;2:517-26.

        10 李小剛,朱 克,李 楠,等.谷氨酸對神經(jīng)細胞鈣離子內(nèi)流和凋亡的影響及谷氨酸受體拮抗劑保護作用的研究〔J〕.中華老年心腦血管疾病雜志,2001;3:122-5.

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