張?zhí)K陽， 陳佳正， 李曉英， 韓泳平

(西南民族大學少數(shù)民族藥物研究所，四川成都 610041)

八味秦皮丸由秦皮、針鐵礦、草莓、多刺綠絨蒿、寒水石(制)、美麗風毛菊、朱砂、麝香等組成，為藏藥常用處方，具有接骨、消炎、止痛的功效，用于骨折、骨髓炎［1］。其現(xiàn)行質(zhì)量標準中僅有理化和薄層鑒別，缺乏指標性成分的定量測定，難以有效地綜合評價其內(nèi)在質(zhì)量。秦皮為本方中主藥，現(xiàn)代研究證明，秦皮中的主要有效成分秦皮甲素和秦皮乙素［2-4］具有明顯的抗炎鎮(zhèn)痛作用［5］。麝香對非特異性炎癥亦具有顯著抗炎效果［6-8］。本實驗以方中主藥秦皮中的秦皮甲素和秦皮乙素以及麝香中的麝香酮為指標成分，分別建立基于HPLC和GC的定量測定法，以控制制劑質(zhì)量，取得了較為滿意的結果。

1 儀器與試藥

Waters 2695型高效液相色譜儀，2996 PDA檢測器;Agilent 7890A氣相色譜儀，氫火焰離子化檢測器(FID);METTLER TOLEDO AE240電子分析天平［梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司］;KQ-250B型超聲波清洗器(昆山市超聲儀器有限公司)。

八味秦皮丸(自制，0.25 g每丸)，秦皮甲素對照品(購于中國藥品生物制品檢定所 批號0740-200104，供定量測定用)，秦皮乙素對照品(購于中國藥品生物制品檢定所 批號110741-200506，供定量測定用)，麝香酮對照品(購于中國藥品生物制品檢定所 批號110719-200511，供定量測定用)。甲醇和乙醇為色譜純，水為重蒸水，其余試劑均為分析純。

2 方法與結果

2.1 色譜條件

HPLC條件:色譜柱為依利特C18柱(4.6 mm×250 mm);流動相甲醇-0.1%磷酸溶液(27∶73);體積流量1.0 mL/min;柱溫 室溫;檢測波長344.4 nm。

GC條件:采用HP-5毛細管柱(5%-二苯基聚硅氧烷共聚物色譜柱)30 m ×0.25 mm ×0.25 μm;載氣為氮氣(99.99%);檢測器溫度為250℃;進樣口溫度為220℃;分流比為40∶1;程序升溫150℃開始以10℃/min速度升溫至170℃保持4 min，然后以15℃/min速度升溫至230℃保持5 min。

2.2 溶液的制備

2.2.1 對照品溶液的制備 精密稱取秦皮甲素對照品10.01 mg、秦皮乙素對照品10.02 mg，置50 mL量瓶中，分別加甲醇溶解并稀釋至刻度，搖勻。精密量取秦皮甲素5 mL、秦皮乙素3 mL，置10 mL量瓶中，加甲醇至刻度，搖勻，即得秦皮甲素和秦皮乙素的混合對照品溶液［9］(含秦皮甲素0.100 1 mg/mL，秦皮乙素60.1 μg/mL)。精密稱取麝香酮對照品15.20 mg置于100 mL量瓶中，加無水乙醇溶解并稀釋至刻度，搖勻，即得麝香酮對照品溶液(0.152 0 mg/mL)。

2.2.2 樣品溶液的制備 精密稱取本品1.25 g，置50 mL蒸餾瓶中，精密加入甲醇25 mL，密塞，稱定質(zhì)量，水浴上加熱回流0.5 h，放冷，稱定質(zhì)量，用甲醇補足減失的質(zhì)量，搖勻，濾過，取續(xù)濾液作為HPLC測定樣品溶液。精密稱取本品5.04 g，加入無水乙醇15 mL，密塞，振搖，放置1h，濾過，取續(xù)濾液作為GC測定樣品溶液。

圖1 HPLC色譜圖A.秦皮甲素和秦皮乙素混合對照品 B.樣品 C.缺秦皮陰性樣品 1.秦皮甲素 2.秦皮乙素Fig.1 HPLC chromatogramsA.reference substances of aesculin and aesculetin B.sample C.negative sample without Fraxini Cortex 1.aesculin 2.aesuletin

2.2.3 陰性對照溶液的制備 取缺秦皮陰性樣品1.25 g，按照HPLC測定樣品溶液的制備方法制備缺秦皮的陰性溶液。取缺麝香陰性樣品5.23 g，按照GC測定樣品溶液的制備方法制備缺麝香的陰性溶液。

2.3 系統(tǒng)適應性實驗

按2.2項下操作，分別取秦皮甲素和秦皮乙素混合對照品溶液、樣品溶液及陰性對照溶液各10 μL，注入液相色譜儀，按色譜條件進行分析，結果在與對照品峰保留時間一致的位置上，樣品溶液的秦皮甲素和秦皮乙素峰峰形良好，理論板數(shù)按秦皮乙素計算不低于5 000，秦皮甲素和秦皮乙素與相鄰峰的分離度均大于1.5，陰性對照無干擾峰。色譜圖見圖1。

按2.2項下操作，分別取麝香酮對照品溶液、樣品溶液及陰性對照溶液各1 μL，注入氣相色譜儀，按色譜條件進行分析，結果在與對照品峰保留時間一致的位置上，樣品溶液的麝香酮峰峰形良好，理論板數(shù)以麝香酮峰計不低于3 000，與相鄰組分能夠達到完全分離，陰性對照無干擾峰。色譜圖見圖2。

圖2 GC色譜圖A.麝香酮對照品 B.樣品 C.缺麝香酮陰性樣品 1.麝香酮Fig.2 GC chromatogramsA.reference substance of muscone B.sample C.negative sample without moschus 1.muscone

2.4 線性關系考察

按2.2.1項下操作，精密量取秦皮甲素和秦皮乙素的混合對照品溶液 2、4、6、8、15、25 μL 注入高效液相色譜儀，記錄色譜圖。

按2.2.1項下操作，精密量取麝香酮對照品溶液1、2、4、6、10 mL 分別置于 10 mL 量瓶中，加無水乙醇稀釋至刻度，搖勻，分別取1 μL注入氣相色譜儀，記錄色譜圖。

分別以峰面積為縱坐標，進樣體積為橫坐標，將峰面積與進樣體積進行線性回歸，得各組分的回歸方程，見表1。結果表明該方法在較大范圍內(nèi)線性關系良好。

表1 線性關系考察Tab.1 Linear correlation

2.5 精密度試驗

按2.2.1項下操作，精密量取秦皮甲素和秦皮乙素混合對照品溶液10 μL，重復進樣5次，測得秦皮甲素峰面積的RSD為0.80%，秦皮乙素峰面積的RSD為0.47%。結果表明精密度良好。

按2.2.1項下操作，精密量取麝香酮對照品溶液1 μL，重復進樣5次，測得麝香酮峰面積的RSD為0.68%。結果表明精密度良好。

2.6 重復性試驗

取同一批樣品，精密稱取5份，按2.2.2項下方法制備樣品溶液，分別在高效液相色譜儀上進樣10 μL，記錄峰面積，計算質(zhì)量分數(shù)。結果秦皮甲素的平均質(zhì)量分數(shù)為0.399 3 mg/g，RSD 為0.86%;秦皮乙素的平均質(zhì)量分數(shù)為0.972 1 mg/g，RSD為1.21%，表明重現(xiàn)性良好。

取同一批樣品，精密稱取5份，按2.2.2項下方法制備樣品溶液，分別在氣相色譜儀上進樣1 μL，記錄峰面積，計算質(zhì)量分數(shù)。結果麝香酮的平均質(zhì)量分數(shù)為 95.837 4 μg/g，RSD 為 0.93%，表明重復性良好。

2.7 穩(wěn)定性試驗

取樣品溶液，室溫放置，分別在 0、2、4、8、12 h取樣10 μL在高效液相色譜儀上進樣，記錄色譜圖中秦皮甲素和秦皮乙素峰面積，計算其RSD分別為0.55%、0.30%。結果表明樣品溶液在12 h內(nèi)穩(wěn)定，滿足測定要求。

取樣品溶液，室溫放置，分別在 0、2、4、8、12 h取樣1 μL在氣相色譜儀上進樣，記錄色譜圖中麝香酮峰面積，計算其RSD為0.84%。結果表明樣品溶液在12 h內(nèi)穩(wěn)定，滿足測定要求。

2.8 加樣回收試驗

精密稱取已測定秦皮甲素和秦皮乙素量的樣品約0.5 g，6份，分為3組分別精密加入對照品溶液秦皮甲素(0.201 6 mg/mL)+秦皮乙素(0.204 8 mg/mL)0.8 mL+2 mL、1 mL+1.5 mL、1.2 mL+3 mL，按上述樣品制備方法和色譜條件，制備加樣回收樣品溶液并注入高效液相色譜儀進行測定分析，計算回收率。結果見表2。

精密稱取已測定麝香酮量的樣品約2 g，6份，每兩份各分別精密加入麝香酮對照品溶液(0.152 0 mg/mL)1 mL、1.3 mL、1.5 mL，按上述樣品制備方法和色譜條件，制備加樣回收樣品溶液并注入氣相色譜儀進行測定分析，計算回收率。結果見表2。

2.9 樣品測定

取3批次樣品，按上述制備和測定方法進行進樣測定，每份平行測定3次，按標準曲線法分別計算秦皮甲素、秦皮乙素以及麝香酮的質(zhì)量分數(shù)，結果見表3。

表3 樣品測定結果(n=3)Tab.3 Determination result of samples(n=3)

3 討論

曾參照文獻［10］選用甲醇-水作為秦皮甲素和秦皮乙素HPLC測定法流動相，但秦皮甲素有雜質(zhì)峰干擾且秦皮乙素有拖尾現(xiàn)象，故選用文中流動相，能得到較理想的分離效果。對秦皮甲素和秦皮乙素對照品溶液進行光譜掃描，秦皮甲素的最大吸收波長在334 nm處，秦皮乙素在344.4 nm處。綜合考慮發(fā)現(xiàn)在344.4 nm處秦皮甲素和秦皮乙素的峰形均較好且無干擾，故選取344.4 nm作為檢測波長。

麝香酮是麝香的主要活性成分之一，在參考文獻［11-13］方法的基礎上，選用文中GC條件對麝香酮進行測定，結果較為理想?！吨袊幍洹芬徊俊镑晗恪表椣滤幉乃笧樘烊击晗闱乙?guī)定含麝香酮不能低于2.0%。本制劑中所用麝香為人工麝香，經(jīng)測定，其質(zhì)量分數(shù)均值為2.3%，符合藥典要求。

實驗結果表明，HPLC法同時測定八味秦皮丸中秦皮甲素和秦皮乙素以及GC法測定八味秦皮丸中麝香酮的方法簡便、準確、重現(xiàn)性良好，能夠為本品的質(zhì)量控制提供方法學基礎。

［1］中華人民共和國衛(wèi)生部藥品標準［S］.藏藥第一冊.1995:241.

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［4］劉麗梅，王瑞海，陳 琳，等.秦皮化學成分的研究［J］.中草藥，2003，34(10):889-890.

［5］方蓮花，呂 揚，杜冠華.秦皮的藥理作用研究進展［J］.中國中藥雜志，2008，33(23):2732-2736.

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［9］國家藥典委員會.中華人民共和國藥典:2010年版一部［S］.北京:中國醫(yī)藥科技出版社，2010:254.

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［11］冉 萍，喻 強，羅 佳.氣相色譜法測定小兒醒腦片中麝香酮的含量［J］.兒科藥學雜志，2005，11(2):52-53.

［12］唐洪梅，黃櫻華，李得堂，等.氣相色譜法測定人工麝香中麝香酮的含量［J］.中國實驗方劑學雜志，2007，13(9):4-5.

［13］周 銳，王 輝.氣相色譜法測定麝香祛痛搽劑中麝香酮的研究［J］.時珍國醫(yī)國藥，2010，21(7):1813-1814.