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        microRNA-24對人喉鱗癌Hep2細胞增殖及侵襲的影響

        2011-05-25 01:44:12郭艷尚超孫開來鐘鳴富偉能
        中國醫(yī)科大學學報 2011年7期
        關鍵詞:實驗檢測能力

        郭艷,尚超,孫開來,鐘鳴,富偉能

        (中國醫(yī)科大學1.口腔醫(yī)學院中心實驗室,沈陽 110002;2.基礎醫(yī)學院醫(yī)學遺傳學教研室,沈陽 110001)

        喉癌是原發(fā)于上皮的最常見的頭頸部惡性腫瘤,其中絕大多數(shù)組織類型是鱗狀細胞癌(laryngeal squamouscell carcinoma,LSCC)。盡管科研工作者從多個層面致力于喉鱗癌的研究,但其生存率和治療策略一直沒有顯著的提高。近年來,微小RNA(microRNAs,miRNAs)的發(fā)現(xiàn)為腫瘤治療靶點的研究帶來了新的曙光,它是一類長約22個核苷酸的非編碼小RNA,通過降解靶基因mRNA或抑制其翻譯而在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展過程中發(fā)揮著類似于癌基因和抑癌基因的功能[1]。Li等[2]應用 miRNAs芯片建立LSCCmiRNAs表達譜,發(fā)現(xiàn)微小RNA-24(microRNA-24,miR-24)表達水平顯著低于癌旁組織,且與淋巴結(jié)轉(zhuǎn)移相關,提示miR-24在LSCC發(fā)生、發(fā)展中可能發(fā)揮著抑癌基因的功能。因此,本研究中我們將以LSCCHep2細胞系為研究對象,體外生物合成miR-24前體(pre-miR-24),通過轉(zhuǎn)染、MTT 和 Transwell小室法進一步探討miR-24對LSCC細胞增殖、侵襲能力的影響,以期為miR-24介導的LSCC分子機制研究乃至LSCC有效分子靶標的開發(fā)提供依據(jù)。

        1 材料與方法

        1.1 細胞培養(yǎng)

        人LSCCHep2細胞系和鼠NIH3T3細胞系由本室保存,常規(guī)培養(yǎng)于RPMI 1640培養(yǎng)基(Gibco)中,取對數(shù)生長期的細胞用于后繼實驗。

        1.2 miR-24前體合成與細胞轉(zhuǎn)染

        miRNA-24前體(pre-miR-24)由 Ambion公司合成,cotrol miR為陰性對照。Hep2細胞于轉(zhuǎn)染前24 h接種于 24孔板中(4×104/孔),按照脂質(zhì)體 LipofectamineTM2000操作說明將50 nmol/L pre-miR-24和control miR分別轉(zhuǎn)入Hep2細胞中,單獨轉(zhuǎn)染脂質(zhì)體組為空白對照。37℃5%CO2培養(yǎng)箱中重新培養(yǎng)后進行相關檢測。

        1.3 熒光定量PCR檢測轉(zhuǎn)染效果

        用mirVana miRNA分離試劑盒(Ambion)提取總miRNA。QuantiMir反轉(zhuǎn)錄試劑盒(System Biosciences)逆轉(zhuǎn)錄成小RNA的cDNA。根據(jù)操作說明應用SYBR熒光染料(Ambion)檢測pre-miR-24的表達,U6-snRNA為內(nèi)參。miR-24特異性上游引物為:5′-TGGCTCAGTTCAGCAGGAACAG-3′,通用下游引物為:5′-CGAATTCTAGAGCTCGAGGCAGGCGACATGGCTGGCTAGTTAAGCTTGGTACCGAGCT CGGATCCACTAGTCC(T)25VN-3′。反應體系為 30 μL,反應條件為:95 ℃ 10 min,然后按 95 ℃ 15 s,60℃1 min進行40個循環(huán)。應用的儀器是ABI公司的7500熒光定量PCR儀,使用的軟件是7500 Software V2.0.5。3次獨立樣本經(jīng)過3次獨立實驗后得到的數(shù)據(jù)通過比較 CT 值法(2-ΔΔCT)進行相對定量分析。

        1.4 相差顯微鏡下觀察細胞生長情況

        Pre-miR-24轉(zhuǎn)染Hep2細胞36 h后,分別在相差顯微鏡下觀察各組細胞的生長情況并拍攝照片。

        1.5 細胞增殖檢測

        Hep2細胞轉(zhuǎn)染pre-miR-24及其對照control miR 1、3、5、7 d 后,細胞增殖檢測同參考文獻[3]。

        1.6 體外細胞侵襲能力檢測

        [3]。

        1.7 統(tǒng)計學分析

        所有實驗重復3次,應用SPSS13.0統(tǒng)計分析軟件對實驗數(shù)據(jù)進行t檢驗,結(jié)果表示為x±s,P<0.05為有統(tǒng)計學意義。

        2 結(jié)果

        2.1 熒光定量PCR驗證轉(zhuǎn)染效果

        為了確定pre-miR-24是否已經(jīng)成功導入Hep2細胞中,我們在轉(zhuǎn)染36 h后,用熒光定量PCR相對定量的方法檢測了miR-24的表達情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn),轉(zhuǎn)染36 h時,pre-miR-24轉(zhuǎn)染組中miR-24的表達較對照組明顯升高(圖1A、1B),該結(jié)果表明瞬時轉(zhuǎn)染成功,后繼實驗可以采用pre-miR-24轉(zhuǎn)染36 h的細胞進行分析。

        圖1 熒光定量PCR檢測miR-24表達結(jié)果。Fig.1 Result of miR-24 expression assayed by real-time quantitative PCR

        2.2 miR-24抑制LSCCHep2細胞增殖

        為了了解miR-24在LSCC Hep2細胞中的作用,我們在Hep2細胞中轉(zhuǎn)染pre-miR-24 36 h后,通過相差顯微鏡觀察pre-miR-24對Hep2細胞形態(tài)的影響,結(jié)果發(fā)現(xiàn)轉(zhuǎn)染pre-miR-24組Hep2細胞明顯變圓、細胞數(shù)量明顯減少(圖2A-2C),提示pre-miR-24能抑制Hep2細胞的生長;同樣MTT實驗表明,與轉(zhuǎn)染control組相比,pre-miR-24轉(zhuǎn)染組Hep2細胞增殖能力顯著降低(圖2D),進一步證實了miR-24具有抑制Hep2細胞增殖的能力。

        2.3 miR-24降低LSCCHep2細胞體外侵襲能力

        Hep2細胞轉(zhuǎn)染pre-miR-24 36h后,通過Transwell小室侵襲實驗觀察各組細胞侵襲能力的變化,結(jié)果顯示pre-miR-24轉(zhuǎn)染組的跨膜細胞數(shù)為(12.37±0.52),明顯低于control miR轉(zhuǎn)染組和空白對照組的跨膜細胞數(shù)[(32.48±0.95);(34±1.25)],差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),提示miR-24具有抑制Hep2細胞侵襲的作用。

        圖2 miR-24對Hep2細胞增殖能力的影響Fig.2 Effects of miR-24 on Hep2 cell proliferation

        3 討論

        miRNAs是一種廣泛存在的對基因表達進行轉(zhuǎn)錄后水平調(diào)控的分子,具有控制基因表達及細胞增殖、分化和凋亡等多種功能,幾乎在所有腫瘤的發(fā)生或發(fā)展過程中均可檢測到miRNAs的過表達或表達缺失,而且這些異常表達的miRNAs通常超過半數(shù)定位于癌基因或抑癌基因的相關遺傳區(qū)域,從而表現(xiàn)出類似癌基因或抑癌基因的作用[4,5]。研究表明,miR-24定位于染色體的EST區(qū)域,且該區(qū)域為染色體上的不穩(wěn)定區(qū)域,在頭頸鱗狀細胞癌(HNSCC)中經(jīng)常發(fā)生改變[6]。

        關于miR-24異常表達與腫瘤生物學行為的關系目前仍然存在爭議。有的學者認為miR-24在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中發(fā)揮著類似于腫瘤抑制基因的功能,而有的學者認為miR-24發(fā)揮著癌基因的作用。如在宮頸癌Hela細胞中,miR-24表達下調(diào),細胞增殖能力明顯增強;在肺癌A549細胞中,miR-24表達下調(diào)導致細胞生長水平的下調(diào)[7]。盡管2種觀點存在矛盾之處,但2者一致性認為miR-24在腫瘤中發(fā)揮重要的功能,并且目前尚沒有關于miR-24與LSCC發(fā)生、發(fā)展及生物學功能的研究。本研究發(fā)現(xiàn),通過體外人為的上調(diào)miR-24的表達能明顯改變Hep2細胞形態(tài),使細胞數(shù)量明顯減少,細胞的增殖和侵襲能力明顯降低,證實miR-24能夠減慢LSCC的發(fā)展速度,抑制LSCC的細胞增殖和侵襲能力。另外,由于miRNAs在血液中穩(wěn)定性很好,而且輕微的miRNAs表達降低即可在患者外周血中檢測到很高水平的miRNAs表達變化[8],并且血液標本的采集損傷性小,進一步揭示血液中miR-24的表達變化亦可能成為臨床上極具價值的非侵入性LSCC診斷材料之一。

        但為什么miR-24在不同組織類型中的表達不一樣,并且發(fā)揮的作用也不盡相同,甚至完全相反呢?我們推測這一現(xiàn)象的主要原因在于不同類型細胞中的miR-24調(diào)控的靶基因存在差異,導致參與的細胞信號轉(zhuǎn)導通路差異,進而對細胞生長、增殖等生物學活性產(chǎn)生不同的調(diào)控效應。因此,在未來的研究中,我們將分析LSCC中miR-24的靶基因,進一步探討miR-24抑制細胞增殖和侵襲的分子機制。

        參考文獻:

        [1]Farazi TA,Spitzer JI,Morozov P,et al.miRNAsin human cancer[J].JPathol,2011,223(2):102-115.

        [2]Li L,Zhang ZM,Liu Y,et al.DNA microarrays-based microRNA expression profiles derived from formalin-fixed paraffin-embedded tissue blocks of squammous cell carcinoma of larynx [J].Zhonghua Bing Li Xue Za Zhi,2010,39(6):391-395.

        [3]郭艷,富偉能,尚超,等.HLA-B對喉癌Hep2細胞生物學行為的影響[J].山東醫(yī)藥,2011,51(11):21-22,33.

        [4]Lal A,Navarro F,Maher CA,et al.miR-24 Inhibits cell proliferation by targeting E2F2,MYC,and other cell-cycle genes via binding to"seedless"3′UTRmicroRNA recognition elements[J].Mol Cell,2009,35(5):610-625.

        [5]Sevignani C,Calin GA,Nnadi SC,et al.MicroRNA genes are frequently located near mouse cancer susceptibility loci [J].Proc Natl Acad Sci USA,2007,104(19):8017-8022.

        [6]Yu YH,Kuo HK,Chang KW.Theevolvingtranscriptome of head and neck squamous cell carcinoma:a systematic review [J].PLoSOne,2008,3(9):e3215.

        [7]Cheng AM,Byrom MW,Shelton J,et al.Antisense inhibition of human miRNAs and indications for an involvement of miRNA in cell growth and apoptosis [J].Nucleic Acids Res,2005,33(4):1290-1297.

        [8]Lin SC,Liu CJ,Lin JA,et al.miR-24 up-regulation in oral carcinoma:positive association from clinical and in vitro analysis [J].Oral Oncol,2010,46(3):204-208.

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