劉 苗 張勉之 譚小月 袁沙沙
糖尿病腎?。╠iabetic nephropathy,DN)是糖尿病的嚴(yán)重微血管病變并發(fā)癥之一,是導(dǎo)致終末期腎?。╡nd-stage renal disease,ESRD)的主要病因[1]。DN主要病理特征為腎小球肥大,腎小球和腎小管基底膜(glomerular basement membrane,GBM)增厚,細(xì)胞外基質(zhì)進(jìn)行性積聚,腎小球、小管間質(zhì)的纖維化。對(duì)其治療目前主要應(yīng)用血管緊張素轉(zhuǎn)換酶抑制劑、血管緊張素受體拮抗劑及降血糖藥以延緩其進(jìn)展,尚缺乏針對(duì)性抑制或逆轉(zhuǎn)纖維化的特異性治療措施[2]。五味子可以抗炎、抗氧化、清除氧自由基、增加周圍組織對(duì)葡萄糖的攝取,川芎、牡蠣均有抗氧化、清除氧自由基的作用,且三者有效成分大部分為脂溶性。本研究以五味子為主藥,輔以川芎、牡蠣合成復(fù)方五味子醇提液(SRC),通過(guò)構(gòu)建以鏈脲佐菌素(streptozotocin,STZ)誘導(dǎo)的C57BL/6小鼠DN模型,旨在探討SRC對(duì)DN的治療作用及其機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 雄性清潔級(jí)C57BL/6小鼠24只,6~7周齡,體質(zhì)量20~25 g,購(gòu)自南開(kāi)大學(xué)生命科學(xué)院實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心[3]。隨機(jī)分為正常對(duì)照組(對(duì)照組,6只)、DN模型組(模型組,9只)和SRC治療組(治療組,9只)共3組。
1.2 試劑與藥物制備 STZ為美國(guó)Sigma公司出品,用0.1 mol/L pH值為4.5的滅菌枸櫞酸-枸櫞酸鈉溶液配置成質(zhì)量濃度為12.5 g/L的溶液;SRC由五味子、川芎、牡蠣組成,與90%乙醇加熱回流3 h,提取2次,合并提取液,靜置過(guò)濾,減壓回收乙醇濃縮成浸膏,-20℃保存[4];所用抗體均由美國(guó)Santa Cruz公司生產(chǎn)。
1.3 動(dòng)物模型構(gòu)建 小鼠自由供給水和食物,適應(yīng)性喂養(yǎng)1周后,禁食15 h。模型組與治療組予STZ溶液125 mg/kg腹腔注射,對(duì)照組予等體積枸櫞酸-枸櫞酸鈉緩沖液;24 h后等量重復(fù)注射;1周后測(cè)晨起血糖,若≥16.7 mmol/L,且2周后尿白蛋白排泄率(UAER)增加,則納入實(shí)驗(yàn)。治療組每只用SRC 0.3 mL/d[相當(dāng)五味子生藥量5 g/(kg·d)]灌胃,模型組、對(duì)照組予等體積自來(lái)水灌胃。每天16:00給藥1次,連續(xù)給藥7周。因血糖未達(dá)標(biāo)或死亡原因剔除部分小鼠,至實(shí)驗(yàn)終點(diǎn)時(shí),模型組剩余小鼠5只,治療組剩余6只。
1.4 標(biāo)本收集與處理 試驗(yàn)結(jié)束前采用電子天平稱體質(zhì)量,經(jīng)剪尾取血后采用氧化酶法用血糖儀測(cè)定血糖(BS);代謝籠收集18 h尿,高效液相色譜法[5]測(cè)定尿白蛋白濃度并計(jì)算UAER=尿量(mL)×尿白蛋白濃度(mg/L)/18;采用戊巴比妥鈉腹腔注射麻醉小鼠,摘取左腎,切取部分于中性福爾馬林中固定24 h后脫水、包埋、切片(3 μm),余部分左腎立即置于液氮中,后置于-80℃冰箱保存供Western blotting檢測(cè)用;摘取右腎于電子天平稱其質(zhì)量。
1.5 腎組織形態(tài)學(xué)觀察 3 μm石蠟切片常規(guī)脫蠟至水,行Masson、天狼星紅(Sirius Red)染色,光鏡下觀察腎組織形態(tài)學(xué)改變。
1.6 α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α-SMA)、纖黏蛋白(FN)表達(dá) 采用免疫組化法檢測(cè)。用3 μm石蠟切片常規(guī)脫蠟至水,用新鮮配制的3%過(guò)氧化氫室溫孵育10 min以消除內(nèi)源性過(guò)氧化物酶;微波抗原修復(fù)20 min,牛血清白蛋白室溫封閉1 h,依次加一抗(小鼠α-SMA、FN多克隆抗體,濕盒內(nèi)4℃過(guò)夜),生物素標(biāo)記二抗工作液及辣根酶標(biāo)記的鏈霉素卵白素工作液,室溫下AEC顯色,蘇木素輕度復(fù)染,自來(lái)水沖洗,脫水、透明、封片。光鏡下觀察α-SMA、FN的表達(dá)。
1.7 E-鈣黏蛋白(E-cadherin)、α-SMA、纖溶酶原活化抑制因子-1(PAI-1)蛋白的表達(dá) 采用Western blotting檢測(cè)。取-80℃保存的各組腎組織,勻漿、離心后,蛋白定量、配樣,100℃、8 min變形后上樣,經(jīng)10%SDS-PAGE電泳分離,將目的蛋白轉(zhuǎn)移至硝酸纖維素膜上,脫脂奶粉封閉,TBST沖洗后加小鼠E-cadherin、α-SMA、羊PAI-1及β-actin的一抗,4℃孵育過(guò)夜,TBST液沖洗,加標(biāo)記辣根過(guò)氧化物酶的二抗孵育,洗膜后ECL顯色。以β-actin為內(nèi)參,檢測(cè)E-cadherin、α-SMA、PAI-1蛋白的表達(dá)。1.8 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 用SPSS 17.0統(tǒng)計(jì)軟件處理,數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(±s)表示,組間比較采用單因素方差分析,兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 一般情況 模型組與治療組較對(duì)照組BS明顯升高,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),治療組與模型組BS差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;模型組與治療組體質(zhì)量均低于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),治療組與模型組體質(zhì)量差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;模型組右腎質(zhì)量和UAER明顯高于對(duì)照組和治療組,治療組UAER高于對(duì)照組(P<0.05或P<0.01),見(jiàn)表1。
表1 各組BS、體質(zhì)量、右腎質(zhì)量和UAER比較(±s)
表1 各組BS、體質(zhì)量、右腎質(zhì)量和UAER比較(±s)
**P<0.01
組別對(duì)照組(1)模型組(2)治療組(3)F P(1)∶(2)(1)∶(3)(2)∶(3)n656 BS(mmol/L)6.07±0.40 26.55±3.65 26.08±6.68 20.548**<0.001 0.001 0.889體質(zhì)量(g)26.97±0.84 17.56±1.27 19.35±2.70 23.446**0.001 0.002 0.266右腎質(zhì)量(g)0.132±0.008 0.165±0.018 0.145±0.012 11.642**0.002 0.125 0.024 UAER(μg/h)11.724±0.534 69.459±3.695 29.423±1.884 450.307**<0.001<0.001<0.001
2.2 腎組織形態(tài)學(xué)變化 Masson染色可見(jiàn)模型組部分腎小管管腔擴(kuò)張、部分腎小管萎縮(圖1A箭頭所示),間質(zhì)區(qū)纖維性物質(zhì)沉積(藍(lán)色),治療組纖維沉積明顯減少;Sirius Red染色可見(jiàn)模型組間質(zhì)區(qū)大量膠原沉積,治療組較模型組膠原沉積明顯減少,見(jiàn)圖1B。
2.3 Western blotting結(jié)果 模型組PAI-1表達(dá)高于對(duì)照組和治療組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),對(duì)照組與治療組差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;模型組E-cad?herin表達(dá)低于對(duì)照組和治療組,治療組低于對(duì)照組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01);模型組α-SMA表達(dá)高于對(duì)照組和治療組,治療組高于對(duì)照組,差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05或P<0.01),見(jiàn)圖2、表2。
2.4 免疫組化結(jié)果 對(duì)照組和治療組均僅見(jiàn)正常血管表達(dá)α-SMA,模型組可見(jiàn)腎小球系膜區(qū)及小管間質(zhì)區(qū)α-SMA表達(dá)明顯增加,見(jiàn)圖3;對(duì)照組可見(jiàn)腎小管基底膜及腎小球FN呈線性表達(dá),腎間質(zhì)無(wú)陽(yáng)性表達(dá),模型組腎小球、腎小管周圍間質(zhì)和腎小球系膜區(qū)FN表達(dá)增加,治療組較模型組FN表達(dá)明顯減少,見(jiàn)圖4。
圖2 3組PAI-1、E-caherin、α-SMA蛋白表達(dá)變化
表2 各組PAI-1、E-cadherin、α-SMA與β-actin蛋白印跡條帶光密度比值比較 (±s)
表2 各組PAI-1、E-cadherin、α-SMA與β-actin蛋白印跡條帶光密度比值比較 (±s)
*P<0.05,**P<0.01
組別對(duì)照組(1)模型組(2)治療組(3)F P(1)∶(2)(1)∶(3)(2)∶(3)656 0.014 2±0.003 1 0.271 2±0.078 0 0.018 8±0.002 4 19.672*0.012 0.928 0.013 0.782 5±0.088 3 0.224 1±0.083 1 0.556 5±0.010 0 32.002**0.004 0.049 0.018 0.047 1±0.061 6 1.222 1±0.141 8 0.551 5±0.200 3 32.560**0.004 0.041 0.019 n PAI-1/β-actin E-cadherin/β-actin α-SMA/β-actin
DN是導(dǎo)致ESRD的一大主因,雖然利用現(xiàn)代治療手段可以較好的控制血糖和血壓,但臨床上仍有很多患者相繼出現(xiàn)進(jìn)展性的腎臟損害[6]。因此,探索可以阻止DN進(jìn)展的新的治療措施極為重要。
蛋白尿不僅是糖尿病腎臟病變的反映,而且在其病變的進(jìn)展過(guò)程中也起著重要的作用。Kralik等[7]研究表明,尿蛋白與糖尿病腎小球損傷互為因果,且大量尿蛋白也可導(dǎo)致腎小管損傷。尿蛋白對(duì)腎固有細(xì)胞的直接刺激可產(chǎn)生多種細(xì)胞因子如血管緊張素受體Ⅱ、內(nèi)皮素-1及腫瘤壞死因子-α等,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)堆積。SRC可以顯著降低UAER,從而抑制因其引起的腎臟損害。
ECM是DN的另一標(biāo)志性特征,ECM的過(guò)量堆積引起腎小球、腎小管間質(zhì)的纖維化。肌成纖維細(xì)胞(myofibroblast,MF)是ECM的主要來(lái)源,α-SMA是MF的標(biāo)志蛋白,而FN是ECM的主要蛋白之一。腎間質(zhì)纖維化主要病理表現(xiàn)為腎間質(zhì)ECM累積、腎小管萎縮、腎間質(zhì)MF增多等。目前認(rèn)為,腎間質(zhì)MF主要來(lái)源為骨髓干細(xì)胞、腎小管上皮細(xì)胞-間充質(zhì)轉(zhuǎn)化(EMT)和腎間質(zhì)局部成纖維細(xì)胞活化。研究發(fā)現(xiàn),在慢性腎間質(zhì)纖維化疾病中通過(guò)EMT轉(zhuǎn)化而來(lái)的MF約占腎間質(zhì)新增MF的36%左右[8]。所以,EMT可能是導(dǎo)致腎間質(zhì)纖維化的重要機(jī)制。
本研究結(jié)果顯示模型組上皮細(xì)胞標(biāo)志蛋白E-cadherin低于對(duì)照組,經(jīng)7周治療后,E-cadherin顯著上調(diào);模型組MF標(biāo)志蛋白α-SMA高于對(duì)照組和治療組。治療組小管間質(zhì)區(qū)α-SMA、FN表達(dá)較模型組明顯減少;Masson及Sirius Red染色可見(jiàn)治療組纖維性沉積明顯少于模型組,表明SRC可通過(guò)阻抑小管上皮細(xì)胞向MF轉(zhuǎn)化而減少間質(zhì)ECM的合成,最終抑制小管間質(zhì)纖維化。
PAI-1可抑制纖溶酶原的活化,降低ECM的降解,促進(jìn)組織ECM的積聚。研究發(fā)現(xiàn),在腎小球纖維化區(qū)域也可檢測(cè)出PAI-1表達(dá)增高[9]。本研究結(jié)果顯示治療組PAI-1表達(dá)低于模型組,且與對(duì)照組比較差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,表明該藥可抑制PAI-1表達(dá)并增加ECM的降解,從而改善DN。
綜上,SRC可減少尿白蛋白排泄率,抑制小管間質(zhì)纖維化,從而顯著改善C57BL/6小鼠的DN,阻抑EMT及抑制PAI-1蛋白表達(dá)是其作用機(jī)制。
[1]Chow FY,Nikolic-Paterson DJ,Atkins RC,et al.Macrophages in streptozotocin-induced diabetic nephropathy:potential role in renal fibrosis[J].Nephrol Dial Transplant,2004,19(12):2987-2996.
[2]Zeisberg EM,Potenta SE,Sugimoto H,et al.Fibroblasts in kidney fibrosis emerge via endothelial-to-mesenchymal transition[J].J Am Soc Nephrol,2008,19(12):2282-2287.
[3]Qi Z,Fujita H,Jin J,et al.Characterization of susceptibility of in?bred mouse strains to diabetic nephropathy[J].Diabetes,2005,54 (9):2628-2637.
[4]Huang F,Xu L,Ganggang S,et al.Antioxidant isolated from schisan?dra propinqua(Wall.)Baill[J].Biol Res,2009,42(3):351-356.
[5]Osicka TM,Comper WD.Characterization of immunochemically nonreactiveurinaryalbumin [J].ClinicalChemistry,2004,50(12): 2286-2291.
[6]Svensson M,Sundkvist G,Arnqvist HJ,et al.Signs of nephropathy may occur early in young adults with diabetes despite modern diabe?tes management:results from the nationwide population-based Dia?betes Incidence Study in Sweden(DISS)[J].Diabetes Care,2003,26 (10):2903-2909.
[7]Kralik PM,Long Y,Song Y,et al.Diabetic albuminuria is due to a small fraction of nephrons distinguished by albumin-stained tubules and glomerular adhesions[J].Am J Pathol,2009,175(2):500-509.
[8]Iwano M,Plieth D,Danoff TM,et al.Evidence that fibroblasts de?rive from epithelium during renal interstitial fibrosis[J].J Clin In?vest,2002,110(3):341-350.
[9]Yang C,Patel K,Harding P,et al.Regulation of TGF-β1/MAPK-me?diated PAI-1 gene expression by the actin cytoskeleton in human mesangial cells[J].Exp Cell Res,2007,313(6):1240-1250.