匡 勇,袁 嬌,夏石頭,黃志遠(yuǎn),孫一丹,趙炳然
(1.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)科學(xué)技術(shù)處,湖南 長沙 410128;2.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物安全學(xué)院,
湖南 長沙410128;3.湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)生物科學(xué)技術(shù)學(xué)院,湖南 長沙 410128;4.國交雜交水稻工程技術(shù)研究中心,湖南雜交水稻研究中心,湖南 長沙 410125)
水稻是我國最重要的糧食作物之一,兩系雜交水稻的推廣和應(yīng)用對我國乃至世界的糧食生產(chǎn)將產(chǎn)生極為深遠(yuǎn)的影響[1]。發(fā)掘和開發(fā)新的遺傳種質(zhì)以提高兩系雜交水稻的雜種優(yōu)勢是雜交水稻研究的重要課題。野生稻如小粒野生稻(Oryzaminuta,BBCC染色體組型)含有高產(chǎn)、病蟲抗性等基因,不僅耐逆能力強(qiáng),而且持久抗稻瘟病、稻飛虱等病蟲害,發(fā)掘、轉(zhuǎn)移這些基因是水稻育種中的一個(gè)重要方向,轉(zhuǎn)移遠(yuǎn)緣物種基因組DNA是一條不同于常規(guī)理化誘變的種質(zhì)創(chuàng)新途徑。對基因組DNA進(jìn)行直接操作,可能是利用遠(yuǎn)緣有利基因、培育超級雜交稻行之有效的技術(shù)途徑。目前,外源DNA導(dǎo)入水稻的途徑主要有“花粉管通道法”[2]及種苗“浸泡法”,前者結(jié)實(shí)率低,籽粒易產(chǎn)生霉變、發(fā)芽率較低,操作時(shí)間又受到花時(shí)的限制,后者DNA用量較多且轉(zhuǎn)化率較低。在Pena等[3]程序基礎(chǔ)上,國交雜交水稻工程技術(shù)研究中心趙炳然等[4]用自行改良的“穗頸注射法”創(chuàng)造出一系列新種質(zhì)材料。在此基礎(chǔ)上,作者以其中新種質(zhì)野威B及其受體親本V20B為材料,研究了小粒野生稻基因組DNA轉(zhuǎn)移對受體水稻的光合性狀的影響。
試驗(yàn)采用轉(zhuǎn)小粒野生稻基因組DNA水稻野威B及其受體親本V20B為材料,由國交雜交水稻工程技術(shù)研究中心提供。
試驗(yàn)在國家雜交水稻工程技術(shù)研究中心實(shí)驗(yàn)田中進(jìn)行。采取隨機(jī)區(qū)組設(shè)計(jì),重復(fù)3次,小區(qū)面積20.0 m2,密度20 cm×20 cm,插單本。小區(qū)呈長方形,重復(fù)和區(qū)間設(shè)走道,實(shí)驗(yàn)區(qū)周圍設(shè)保護(hù)區(qū)。田間管理同大田生產(chǎn)管理。
于始穗期(Ⅰ期)、齊穗期(Ⅱ期)、乳熟期(Ⅲ期)、黃熟期(Ⅳ期)、臘熟期(Ⅴ期)分別到田間各小區(qū)隨機(jī)取樣,用美國CID公司的CI203型葉面積儀測定葉片葉面積與長寬比,參照《植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù)》[5]用80%丙酮浸提法提取葉綠素,用分光光度法測定葉綠素含量。光合速率、氣孔導(dǎo)度、蒸騰速率等指標(biāo)的測定采用美國LICOR公司的LI6400光合測試系統(tǒng),采用開放式氣路,光通量密度為850 μmol/(m2·s),溫度為30℃。分別于9月1日(Ⅰ期)和9月18日(Ⅱ期)測定倒1(劍葉)、倒2、倒3葉光合性狀,測定時(shí)間為上午 9∶00~10∶00。
以V20B水稻親本作為野生稻(Oryzaminuta)DNA的受體材料,于田間選受體劍葉與倒2葉葉枕距1~5 cm的主穗,剝開部分倒2葉葉鞘以露出穗頸節(jié)下第1節(jié)間,然后將醫(yī)用微量進(jìn)樣器針尖傾斜(約30°)從穗頸節(jié)部位朝下插入穗頸節(jié)下第1節(jié)間注射DNA。每穗注入50μLOryzaminuta基因組DNA溶液(DNA為1×SSC溶液,濃度為300~600 μg/mL)。種子收獲后單粒繁殖,從260株D1植株中篩選出1株變異株,變異株繁殖后從D2代中選出優(yōu)良單株,D3代開始與V20A測交,D4代開始成對回交,經(jīng)多代回交和系選,選育成變異系野威B。
轉(zhuǎn)Oryzaminuta基因組DNA的野威B和親本V20B在株葉形態(tài)上有十分明顯的差異,野威B的株型較V20B松散,莖較V20B細(xì)小,倒3葉葉片較窄、較直立。在始穗期(Ⅰ期)、齊穗期(Ⅱ期)、乳熟期(Ⅲ期)、黃熟期(Ⅳ期)和臘熟期(Ⅴ期)分別到田間各小區(qū)隨機(jī)取樣,并用葉面積儀測定葉片的長、寬和葉面積(表1)后,發(fā)現(xiàn)在始穗期(Ⅰ期),轉(zhuǎn)O-ryzaminuta基因組DNA的野威B的倒1、倒2和倒3葉葉面積均顯著小于親本V20B,野威B的倒1、倒2和倒3葉的葉長、葉寬也小于親本V20B,且倒1和倒2的葉長、倒2葉葉寬與受體親本之間的差異達(dá)到了顯著水平。在齊穗期(Ⅱ期),野威B的倒1、倒2和倒3葉葉面積雖小于親本V20B的,但只有倒1葉的葉面積與受體親本之間的差異達(dá)到了顯著水平。而在乳熟期(Ⅲ期)、黃熟期(Ⅳ期)和臘熟期(Ⅴ期),野威B的倒1、倒2和倒3葉葉面積均顯著小于親本V20B,野威B的倒1、倒2和倒3葉的葉長、葉寬也小于親本V20B,有的差異達(dá)到顯著水平。進(jìn)一步的研究發(fā)現(xiàn)(圖1、圖2),隨著水稻成熟野威B的倒1葉和倒2葉,從始穗期(Ⅰ期)、齊穗期(Ⅱ期)到乳熟期(Ⅲ期)再到黃熟期(Ⅳ期)和臘熟期(Ⅴ期),其葉綠素含量逐漸降低,但其與受體親本V20B之間的差異未達(dá)到顯著水平。
表1 轉(zhuǎn)Oryzaminuta基因組DNA野威B水稻的葉面積、葉長和葉寬
圖1 不同時(shí)期倒1葉葉綠素含量變化
圖2 不同時(shí)期倒2葉葉綠素含量變化
圖3 不同時(shí)期倒3葉葉綠素含量變化
轉(zhuǎn)Oryzaminuta基因組DNA的野威B和親本V20B的光合性能和蒸騰速率如表2。由表2可知,在2個(gè)測定時(shí)期,轉(zhuǎn)Oryzaminuta基因組DNA的野威B的倒1、倒2和倒3葉片的光合速率均極顯著高于親本V20B的光合速率。除第Ⅱ個(gè)時(shí)期倒1葉的氣孔導(dǎo)度與親本V20B的氣孔導(dǎo)度沒有顯著差異外,其他時(shí)期野威B的倒1、倒2和倒3葉的氣孔導(dǎo)度均顯著高于親本V20B的。在第一個(gè)測定時(shí)期,野威B的倒1、倒2和倒3葉片的蒸騰速率均顯著高于親本V20B各對應(yīng)時(shí)期的蒸騰速率,但在第Ⅱ個(gè)時(shí)期,兩者之間的規(guī)律不明顯。
表2 轉(zhuǎn)Oryzaminuta基因組DNA野威B水稻的光合速率、氣孔導(dǎo)度和蒸騰速率
轉(zhuǎn)移遠(yuǎn)緣物種基因組DNA是一條不同于常規(guī)理化誘變的種質(zhì)創(chuàng)新途徑,對基因組DNA的直接操作,可能是一種利用遠(yuǎn)緣有利基因、培育超級雜交稻的行之有效的技術(shù)路線。外源DNA導(dǎo)入水稻的途徑,多是運(yùn)用“花粉管通道法”[2]及種苗“浸泡法”。在Pena[3]程序基礎(chǔ)上,趙炳然、周建林等[4-9]用自行改良的“穗頸注射法”,創(chuàng)造出包括野威B在內(nèi)的一系列新材料。而將3H-PBI121 DNA注入穗頸節(jié)下第一節(jié)間,放射性標(biāo)記迅速在穗頸導(dǎo)管中出現(xiàn),說明外源DNA通過導(dǎo)管運(yùn)輸[10]。
本文研究發(fā)現(xiàn),通過轉(zhuǎn)小粒野生稻(Oryza minuta)DNA而選育的變異系野威B,與親本V20B在株葉形態(tài)上有十分明顯的差異,野威B的株型較V20B松散,莖較V20B細(xì)小,倒3葉葉片較窄、較直立,而且野威B的倒1、倒2和倒3葉的葉面積均顯著小于親本V20B。從始穗期(Ⅰ期)、齊穗期(Ⅱ期)到乳熟期(Ⅲ期)再到黃熟期(Ⅳ期)和臘熟期(Ⅴ期),野威B和V20B的葉綠素含量逐漸降低,但兩者之間差異未達(dá)到顯著水平。野威B的倒1、倒2和倒3葉片的光合速率均極顯著高于親本V20B的光合速率。研究表明[11],作物生物學(xué)產(chǎn)量中,90%~95%的物質(zhì)來自光合作用的產(chǎn)物,只有5%~10%的物質(zhì)是來自根部吸收的營養(yǎng)物質(zhì)。從光合作用與物質(zhì)生產(chǎn)的角度看,水稻產(chǎn)量主要決定于光合面積、光合時(shí)間、光合速率和物質(zhì)分配。在一定產(chǎn)量水平下,其中某一因素起主導(dǎo)作用[12]。野威B的光合速率均極顯著高于親本V20B的光合速率,可為雜交水稻超高產(chǎn)育種,為進(jìn)一步提高雜交水稻品質(zhì)提供了新的種質(zhì)資源。
[1] 袁隆平.依靠科技創(chuàng)新發(fā)展雜交水稻,確保我國糧食安全[J].中國農(nóng)業(yè)科技導(dǎo)報(bào),2001,3(2):40-41,56.
[2] 周光宇,陳善葆,黃駿麒.農(nóng)業(yè)分子育種研究進(jìn)展[M].北京:中國農(nóng)業(yè)科技出版社,1993.
[3] Pena D L,Lorz H,Schell J.Transgenic rye plant obtained by injecting DNA into young floral tillers[J].Nature,1987,325:274-276.
[4] 趙炳然,夏紅愛,陽和華,等.遠(yuǎn)緣物種DNA導(dǎo)入水稻保持系及新創(chuàng)種質(zhì)的 SSR 研究[J].雜交水稻,2004,19(4):47-50.
[5]蕭浪濤,植物生理學(xué)實(shí)驗(yàn)技術(shù) [M].北京:中國農(nóng)業(yè)出版社,2006.
[6] 周建林,李陽生,李達(dá)模.稗草DNA導(dǎo)入水稻產(chǎn)生的變異體的耐鐵毒特性和RAPD分析[J].作物學(xué)報(bào),2001,27(4):529-532.
[7]Xing Q H,Zhao B R,Xu K,et al.Test of Agronomical Characters and Amplified Fragment Length Polymorphism Analysis of New Rice Germplasm Developed from Transformation of Genomic DNA of Distant Relatives[J].Plant Molecular Biology Reporter,2004,22(2):155-164.
[8] 趙炳然,賈建航,陽和華,等.水稻孕穗期莖注射野生稻DNA變異株系的 RAPD 分析[J].作物學(xué)報(bào),2000,26(4):424-430.
[9]Zhao B R,Xing Q H,Xia H A,et al.DNA Polymorphism among Yewei B,V20B and Oryzaminuta J.S.Presl.ex C.B.Presl.[J].Journal of integrative plant biology,2005,47(12):1485-1492.
[10]趙炳然,黃見良,劉春林,等.莖注射外源DNA體內(nèi)運(yùn)輸及雌不育變異株的研究[J].湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),1998,24(6):436-441.
[11]杜維廣,張桂茹,滿為群,等.大豆光合作用與產(chǎn)量關(guān)系的研究[J].大豆科學(xué),1999,18(2):154-159.
[12]孟 軍,陳溫福,徐正進(jìn),等.水稻劍葉凈光合速率與葉綠素含量的研究初報(bào)[J].沈陽農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2001,32(4):247-249.