孫永杰
高血糖大鼠藍斑核神經(jīng)原一氧化氮合酶的改變
孫永杰
目的觀察高血糖大鼠藍斑核NOS陽性反應(yīng)物的變化。方法用腹腔注射四氧嘧啶法建立高血糖大鼠動物模型。用酶組織化學(xué)和圖像分析方法觀察大鼠藍斑核NOS細胞的變化。結(jié)果高血糖大鼠藍斑核NOS細胞陽性反應(yīng)物減弱(P<0.01)。結(jié)論NOS陽性反應(yīng)物減少與高血糖的發(fā)生、發(fā)展有關(guān)。
高血糖;藍斑核;一氧化氮合酶;大鼠
一氧化氮是一種神經(jīng)遞質(zhì),也是一種重要生理功能的信使分子,既溶于水又溶于脂,是非?;钴S的化學(xué)物質(zhì),參與多種生理過程。一氧化氮系在一氧化氮合酶(nitric oxide synthase,NOS)催化下由L-精氨酸氧化產(chǎn)生,一氧化氮合酶是一氧化氮合成的關(guān)鍵因素[1],廣泛存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)。目前,已有許多研究表明,藍斑核所含去甲腎上腺素能神經(jīng)元群,通過上、下行投射,幾乎終止于全腦和脊髓灰質(zhì)各部,從而影響腦的整體活動,如:控制注意力水平;調(diào)節(jié)覺醒-睡眠周期;參與胃腸道和呼吸道反射;參與介導(dǎo)所在網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)的心血管、血壓和化學(xué)感受器反射,并對痛覺傳遞進行調(diào)制等[2]。但關(guān)于高血糖時藍斑核內(nèi)NOS的含量是否發(fā)生改變尚未見報道。
1.1 實驗材料 雄性Wistar大鼠(中國醫(yī)科大學(xué)動物室提供),NADPH-d、四硝基唑藍(NBT)、TritonX-100(購于 Sigma
公司);四氧嘧啶(購于Sigma公司);LUZEX-F顯微圖像分析儀(日本,松下公司);日立H-600透射電鏡。
1.2 實驗動物分組 本實驗選用雄性Wistar大鼠40只,體質(zhì)量260~300 g,隨機分成2組。正常對照組:20只。實驗組:20只。
1.3 實驗方法
1.3.1 高血糖大鼠模型制備 實驗動物禁食12 h。實驗組腹腔一次注射200 mg/kg四氧嘧啶,正常對照組注射等體積的0.9%氯化鈉注射液。6周后取材。
1.3.2 組化標本制備 對實驗動物用1%戊巴比妥鈉(40 ml/kg)腹腔麻醉后開胸,經(jīng)左心室70滴/min滴入1%肝素鈉的0.9%氯化鈉注射液500ml,同時剪開右心耳。繼用0.1 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS,pH=7.4)配制的固定液(含4%多聚甲醛)灌流固定。取出實驗動物的大腦組織,放入含4%多聚甲醛PBS的固定液中進行后固定大約2 h,之后將實驗動物的大腦組織切成薄片移入含20%蔗糖的PBS中。在4℃冰箱中存放,至組織薄片沉底,經(jīng)水包埋,恒冷箱連續(xù)橫切片,片厚20 μm。經(jīng)OCT包埋,恒冷箱連續(xù)切片,片厚16 mm,-70℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.3.3 尼氏染色 冰凍切片吹干,經(jīng)PBS漂洗5min×3次,將切片置入1%甲苯胺藍溶液中37℃孵育90min,取出后用蒸餾水沖洗,PBS漂洗5min×3次,梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察。
1.3.4 一氧化氮合酶組織化學(xué)方法 染色方法:NOS酶組織化學(xué)染色:在2 g/LTritonX-100磷酸緩沖液中預(yù)孵育5~10 min(室溫);在下列孵育液中反應(yīng)2 h(37℃):NADPH-d 10 mg,四硝基唑藍(NBT)5 mg ,TritonX-100 0.03 ml,用0.1 mol/L PBS新鮮配制成100 ml;用PBS終止反應(yīng)、漂洗;梯度乙醇脫水,二甲苯透明,中性樹膠封片,光鏡下觀察。
1.4 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS11.5軟件包進行統(tǒng)計分析,計量資料采用t檢驗。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。
2.1 尼氏染色結(jié)果 正常對照組大鼠藍斑核區(qū)的尼氏染色切片上,神經(jīng)元數(shù)量較多,排列緊密,形態(tài)完整,泡漿內(nèi)尼氏體豐富。實驗組,正常神經(jīng)元數(shù)量減少,細胞皺縮,有的溶解成碎片。
2.2 NOS酶組化結(jié)果 正常對照組和實驗照組NOS陽性反應(yīng)物分布于藍斑核,多為錐體細胞,陽性反映物呈深蘭色,分布在細胞質(zhì)及突起,胞核不著色。實驗組,NOS陽性細胞數(shù)量減少,其形態(tài)不同于正常NOS陽性細胞,細胞小,突起少,著色淺且大部分局限于細胞膜。見圖1。
圖1 高血糖大鼠藍斑核區(qū)單位面積NOS陽性物平均灰度值
目前已知NOS有二類:原生型NOS(cNOS)和誘導(dǎo)型(iN-OS)[3]。在生理狀態(tài)下cNOS參與各種活動的調(diào)節(jié),其作用時間短,生成的一氧化氮少。iNOS在正常生理狀態(tài)下表達較少,但在病理狀態(tài)下,經(jīng)某些細胞因子和內(nèi)毒素等的誘導(dǎo),表達增多,iNOS的作用時間長,可催化產(chǎn)生大量的一氧化氮。在實驗中,我們觀察到,大鼠藍斑核NOS酶反應(yīng)陽性細胞及纖維數(shù)量顯著減少,結(jié)果提示NOS可能參與高血糖的病理生理過程,可作為神經(jīng)元受損的標示物。
[1] Bolanos JP,Almeida A.Roles of nitric oxide in brain hypoxiaischemia.Biophys Acta,1999,1411:415-436.
[2] 柏數(shù)令.系統(tǒng)解剖學(xué).人民衛(wèi)生出版社,2008:345.
[3] Carthwoite J.Clutamate,nitric oxide and cell-cell signalling in the nervous system.Trends Neurosci,1991,14:60-67.
Investigation on the change of nitric oxide synthetase positive neurons in locus ceruleus of rats with hy-perglycemia
SUN Yong-jie.
Liaoning Health College of Vocational Technology Shen Yang 110101,China
ObjectiveTo observe the expression of nitric oxide synthetase(NOS)in Locus Ceruleusneurons with hyperglycemia.MethodsNADPH-d histochemical method was used.ResultsNOS positive neurons expressed in Locus Ceruleus and nomal neurons of 6 weeks old rats with hyperglycemia(DM)and normal rats(NC).There was significant difference in neurons between DM group and control group.ConclusionThere is a relationNOS positive neurons decrease in Locus Ceruleus of rats with hyperglycemia.
Hyperglycemia;Locus ceruleus;NOS;Rat
110101遼寧衛(wèi)生職業(yè)技術(shù)學(xué)院
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