李 瑤 辛 穎
宮內(nèi)發(fā)育遲緩(IUGR),一般指出生體重低于同胎齡、同性別平均出生體重的P10或同胎齡、同性別平均出生體重2個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差以下的新生兒[1]。近10年來的流行病學(xué)調(diào)查結(jié)果顯示,出生體重與成年后的冠心病、高血壓和2型糖尿病有密切關(guān)系,其中2型糖尿病和高血壓是代謝綜合征的組分,與脂代謝異常、肥胖和胰島素抵抗密切相關(guān),而代謝綜合征的中心環(huán)節(jié)是胰島素抵抗[2]。本研究建立大鼠IUGR模型[3],采集IUGR模型鼠產(chǎn)下仔鼠不同時(shí)點(diǎn)胰腺、肝臟和骨骼肌組織,以RT-PCR和Western blot技術(shù)檢測(cè)胰島素受體底物1(IRS-1)和IRS-2表達(dá)水平,其中胰腺組織的相關(guān)檢測(cè)結(jié)果顯示,IRS-2 mRNA表達(dá)和蛋白水平顯著下降[4],提示IRS-2是調(diào)控胰島β細(xì)胞生長發(fā)育的主要受體物質(zhì);IUGR個(gè)體從出生后至成年期胰腺組織可能存在IRS-2信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)障礙。本研究進(jìn)一步檢測(cè)肝臟和骨骼肌組織的ISR-1和ISR-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平,探討外周組織是否存在胰島素信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)障礙,并與胰腺組織相關(guān)結(jié)果進(jìn)行比較,分析胰腺和外周組織胰島素抵抗的差異。
1.1 儀器、試劑和IUGR大鼠模型制備 本研究所使用的儀器、試劑以及實(shí)驗(yàn)動(dòng)物同文獻(xiàn)[4]。予大鼠孕期低蛋白飼料喂養(yǎng)制備IUGR模型,以模型鼠產(chǎn)下的仔鼠為IUGR組;以孕期予正常飲食的母鼠產(chǎn)下的仔鼠為對(duì)照組,具體方法參見文獻(xiàn)[4]。所有孕鼠均自然分娩,稱量新生仔鼠體重精確至0.01 g。IUGR仔鼠判斷標(biāo)準(zhǔn):新生鼠出生體重低于對(duì)照組平均出生體重的2個(gè)標(biāo)準(zhǔn)差[1]。符合IUGR的仔鼠保留。
1.2 標(biāo)本采集 兩組仔鼠以母乳喂養(yǎng),母鼠均飼以標(biāo)準(zhǔn)飼料。IUGR組和對(duì)照組仔鼠滿3周后斷乳,分籠飼養(yǎng),均飼以標(biāo)準(zhǔn)飼料,觀察兩組仔鼠的發(fā)育情況,記錄每周體重。兩組以出生后0、3和8周為觀察時(shí)點(diǎn),各選取8只仔鼠。于出生后(0周)立即處死并留取胰腺、肝臟和骨骼肌組織;3和8周時(shí)點(diǎn)采集標(biāo)本前禁食12 h,次日晨以摘眼球法采血,分離血清,隨后處死仔鼠并留取胰腺、肝臟和骨骼肌組織。均置于-70℃冰箱保存。
1.3 ISR-1和ISR-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平檢測(cè) 大鼠IRS-1,IRS-2和內(nèi)參照β-actin引物參照Gene Bank中的基因序列,用Primer Premier 5.0軟件設(shè)計(jì),由北京六合華大基因科技股份有限公司合成。分別稱取100 mg胰腺、肝臟和骨骼肌組織,用Trizol試劑抽提RNA,以RT-PCR法分析IRS-1、IRS-2 mRNA的表達(dá)水平。采用Western blot技術(shù)檢測(cè)IRS-1和IRS-2蛋白的表達(dá)水平。具體的操作步驟見文獻(xiàn)[4]。
1.4 空腹血糖和血清胰島素測(cè)定 ①空腹血糖:采用葡萄糖氧化酶-過氧化物酶法測(cè)定。②血清胰島素測(cè)定:按說明書要求處理試劑,配制洗液;加入100 μL的標(biāo)準(zhǔn)品于空白微孔中;分別標(biāo)記血清樣品編號(hào),加入100 μL的樣品于空白微孔中;在標(biāo)準(zhǔn)品孔和樣品孔中加入50 μL的酶標(biāo)記溶液;37℃恒溫水浴箱水浴60 min;洗扳機(jī)清洗5次,每次靜置10 s;每孔加入底物A、B液各50 μL,37℃恒溫避光孵育15 min,加入50 μL終止液終止反應(yīng),在450 nm波長下以酶標(biāo)儀讀取各孔A值,計(jì)算胰島素含量。
1.5 空腹胰島素抵抗指數(shù)(FIRI)計(jì)算公式如下:
其中FPG為空腹血糖,F(xiàn)INS為空腹胰島素。
2.1 孕期低蛋白對(duì)仔鼠生長發(fā)育的影響 IUGR組和對(duì)照組孕鼠平均孕期和產(chǎn)仔數(shù)無顯著差異。IUGR組出生體重顯著低于對(duì)照組,(3.92±0.22)gvs(4.94±0.32)g。3周時(shí)點(diǎn) IUGR 組平均體重仍顯著低于對(duì)照組,(27±4)gvs(35±4)g;8周時(shí)點(diǎn)IUGR組體重顯著高于對(duì)照組,(160±17)gvs(139±8)g。
2.2 胰腺、 肝臟和骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平比較 RT-PCR結(jié)果顯示, IUGR組胰腺、肝臟IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平與對(duì)照組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;IUGR組0、3和8周時(shí)點(diǎn)骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平均顯著低于對(duì)照組(P<0.01)(表1,圖1和圖2A)。 至8周時(shí)點(diǎn),骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平的下降幅度較胰腺和肝臟組織明顯。
2.3 胰腺、肝臟和骨骼肌IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平比較 表2顯示,IUGR組0、3和8周時(shí)點(diǎn),胰腺、肝臟IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平顯著低于對(duì)照組(P<0.05);骨骼肌IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平與對(duì)照組差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。肝臟IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平的下降幅度較胰腺明顯(表2,圖1和圖2B)。
2.4 兩組糖代謝的比較 兩組仔鼠3周時(shí)點(diǎn)的空腹血糖、胰島素水平及FIRI差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義;8周時(shí)點(diǎn)與對(duì)照組比較,IUGR組空腹血糖差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,胰島素水平和FIRI顯著升高(表3)。
GroupIRS-1mRNA0week3weeks8weeksIRS-1protein0week3weeks8weeksPancreasControl(n=8)1.04±0.081.03±0.081.03±0.08101±7104±8105±8IUGR(n=8)1.0±0.070.96±0.071.02±0.0799±7102±8104±8t1.0330.7540.40.520.50.25P0.10.40.50.50.50.5LiverControl(n=8)1.0±0.081.04±0.081.03±0.08124±9133±9125±10IUGR(n=8)1.0±0.051.03±0.081.01±0.08119±9129±8122±10t00.350.711.130.90.61P0.50.50.50.20.40.5SkeletalmuscleControl(n=8)1.1±0.071.05±0.071.09±0.08137±10135±10135±10IUGR(n=8)0.91±0.070.93±0.060.74±0.07111±12104±996±7t5.423.693.834.766.689.15P0.0010.0050.0020.0010.0010.001
GroupIRS-2mRNA0week3weeks8weeksIRS-2protein0week3weeks8weeksPancreasControl(n=8)1.13±0.081.11±0.091.08±0.06155±11151±11155±13IUGR(n=8)0.98±0.070.83±0.060.79±0.06138±10121±9110±8t47.369.933.3268.57P0.0020.0010.0010.0050.0010.001LiverControl(n=8)1.0±0.071.02±0.081.1±0.07171±10171±12174±12IUGR(n=8)0.85±0.070.73±0.060.69±0.05136±9126±9103±8t4.228.2116.667.187.1814.2P0.0010.0010.0010.0010.0010.001SkeletalmuscleControl(n=8)1.17±0.261.07±0.071.1±0.07115±8114±8113±8IUGR(n=8)1.0±0.0811.0±0.071.03±0.08112±8113±9104±8t1.821.840.750.230.74P0.10.10.10.40.50.4
表3 IUGR組和對(duì)照組不同時(shí)點(diǎn)空腹血糖、血清胰島素水平和FIRI比較
圖1 IUGR組和對(duì)照組不同時(shí)點(diǎn)胰腺、肝臟和骨骼肌的IRS-1、IRS-2 mRNA的表達(dá)
Fig 1 IRS-1 and IRS-2 mRNA expression in pancreas, liver and skeletal muscle of rats at 0, 3 and 8 week
Notes w: week; 1-6: pancreas; 7-12: liver; 13-18: skeletal muscle
圖2 IUGR組和對(duì)照組不同時(shí)點(diǎn)胰腺、肝臟、骨骼肌的IRS-1、IRS-2蛋白表達(dá)
Fig 2 IRS-1 and IRS-2 protein expression in pancreas, liver and skeletal muscle of rats at 0, 3 and 8 week
Notes w: week; A: IRS-1 protein expression; B: IRS-2 protein expression
近年來IUGR與成年期以胰島素抵抗為特征的代謝性綜合征的關(guān)系成為研究熱點(diǎn)[5]。胰島素抵抗可由胰島素受體缺陷所致。ISR蛋白是多種受體信號(hào)傳導(dǎo)蛋白的底物,胰島素受體底物與磷酸化的胰島素受體β亞基結(jié)合后,作為船塢蛋白,其酪氨酸殘基的磷酸化為下游的信號(hào)蛋白提供了一個(gè)高親和力的結(jié)合位點(diǎn),激活細(xì)胞內(nèi)的信號(hào)傳導(dǎo)通路促進(jìn)細(xì)胞攝取葡萄糖及促進(jìn)細(xì)胞的生長和增殖[6]。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果顯示,雌性大鼠孕期低蛋白飲食所致IUGR仔鼠8周時(shí)點(diǎn)體重顯著高于對(duì)照組,出現(xiàn)肥胖傾向,胰島素水平和FIRI顯著高于對(duì)照組,提示出現(xiàn)了胰島素抵抗。
IRS-1主要在骨骼肌表達(dá),促進(jìn)肌肉攝取利用葡萄糖。IRS-2大量表達(dá)于肝臟和胰腺β細(xì)胞,促進(jìn)肝臟糖原合成和抑制肝葡萄糖輸出;作為調(diào)節(jié)β細(xì)胞功能的重要信號(hào)分子,IRS-2主要調(diào)節(jié)β細(xì)胞增殖、生長和存活[7]。本研究進(jìn)一步分析了IRS-1、IRS-2 mRNA和蛋白在胰腺、肝臟和骨骼肌組織的表達(dá),結(jié)果顯示IUGR組在出生后0、3和8周時(shí)點(diǎn)胰腺和肝臟組織IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平顯著低于對(duì)照組,骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平顯著低于對(duì)照組,提示IUGR個(gè)體從出生后至成年期不僅存在胰腺組織胰島素信號(hào)通路轉(zhuǎn)導(dǎo)障礙,還可能存在外周組織胰島素信號(hào)通路轉(zhuǎn)導(dǎo)障礙。
肝臟在機(jī)體能量平衡尤其糖脂代謝中發(fā)揮關(guān)鍵作用,肝臟胰島素抵抗在2型糖尿病中起主導(dǎo)作用[8]。肝臟發(fā)生胰島素抵抗時(shí),可導(dǎo)致糖異生和肝糖元輸出增加,引起空腹高血糖和高胰島素血癥;此外胰島素抑制內(nèi)臟和皮下脂肪動(dòng)員,促進(jìn)脂肪酸氧化的作用減弱,使得進(jìn)入肝臟的游離脂肪酸水平增加,作用于肝細(xì)胞內(nèi)的胰島素信號(hào)傳導(dǎo)途徑,而加重肝臟胰島素抵抗[9]。本研究結(jié)果顯示,肝臟組織ISR-2 mRNA和蛋白水平顯著低于胰腺和骨骼肌,提示肝臟在胰島素抵抗中可能發(fā)揮較大作用。
本研究IUGR大鼠在3周時(shí)點(diǎn),胰島素水平和FIRI較對(duì)照組無顯著升高,但已可觀測(cè)到胰腺、肝臟IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)水平,骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白表達(dá)水平的降低,提示可能出現(xiàn)胰島素抵抗的傾向。8周時(shí)點(diǎn)觀測(cè)到胰島素水平和胰島素抵抗指數(shù)的升高,提示出現(xiàn)胰島素抵抗,而該時(shí)點(diǎn)胰腺和肝臟中IRS-2 mRNA和蛋白水平、骨骼肌IRS-1 mRNA和蛋白水平均較低,進(jìn)一步證實(shí)了胰島素抵抗與IRS-1、IRS-2 mRNA和蛋白表達(dá)有關(guān)。
[1]Ying YQ(應(yīng)艷琴), Luo XP. 小于胎齡兒生長相關(guān)異常及生長激素治療. J Clin Pediatr(臨床兒科雜志), 2004, 22(8): 559-561
[2]Arends NJ, Boonstra VH, Duivenvoorden HJ. Reduced insulin sensitivity and the presence of cardiovascular risk factors in shortprepubertal children born small for gestational age(SGA). Clin Endocrinol(Oxf), 2005, 62(1):44-50
[3]Zhou GL(周根來), Chen CY, Wang T. Experimental animal model of intrauterine growth retardation. Chin J Comp Med(中國比較醫(yī)學(xué)雜志), 2003, 13(2):117-120
[4]Godfrey KM, Barker DJ. nutrition and adult disease. Am J Clin Nutr, 2000, 71(5 S):1344-1352
[5]Singhal A. Early nutrition and long-term cardiovascular health. Nutr Rev,2006,64(5 Pt 2):44-49
[6]Saltiel AR, Kahn CR. Insulin signaling and the regulation of glucose and lipid metabolism. Nature, 2001, 414(6865):799-806
[7]Ye H(葉華). 2型糖尿病患者及其一級(jí)親屬和非糖尿病者骨骼肌的胰島素信號(hào)傳導(dǎo). Clin J Diabetes(中國糖尿病雜志), 2003, 11(2):151-152
[8]Kim SP, Ellmerer M, Van Citters GW. Primacy of hepatic insulin resistance in the development of the metabolic syndrome induced by and isocaloric moderate-fat diet in the dog. Diabetes, 2003, 52(10):2453-2460
[9]Staehr P, Hother-Nielsen O, Beck-Nielsen H. The role of the liver in type 2 diabetes. Rev Endocr Metab Disord, 2004, 5(2):105-110